203787. lajstromszámú szabadalom • Eljárás 2-keto-L-gulonsav előállítására

1 HU 203 787 B 2 Xanthomonas citri IFO 3835, Flavobacterium meningosepticum IFO 12 535, Micrococcus variáns IFO 3765, Escherichia coli IFO 3366. Ha bármelyik felsorolt baktériumot megfelelő táp­közegben 20-40 *C közötti hőmérsékleten 1-4 nap időtartamig tenyésztünk, a folyékony tenyészet oltó­kultúraként alkalmazható a keverendő mikroorganiz­mushoz. Általában oltóanyagként a Pseudoglucono­­bacter saccharoketogenes fajhoz tartozó oxidációs bak­tériumnak előnyösen 1/10-1/1000 részét alkalmazzuk. Ha tehát vegyes kultúrát készítünk a felsorolt keverő­­mikroorganizmusból és az oxidációs baktériumból a megjelölt arányban, ezzel elősegítjük az oxidációs bak­térium növekedését és ezáltal az L-szorbóz 2-keto-L- gulonsavvá történő oxidációja gyorsabban és nagyobb kitermeléssel megy végbe, mint amikor az oxidációs baktériumot egyedül alkalmazzuk. Lényeges, hogy a bekeverendő mikroorganizmus ne, vagy csak kismér­tékben asszimilálja az L-szorbózt, amely a jelen talál­mány kiindulási anyaga, vagy a 2-keto-L-gulonsavat, amely a találmány célvegyülete. A tenyésztés egyéb körülményei megegyeznek azzal, amikor az oxidációs baktériumot egyedül alkalmazzuk. A fent említett oxidációs baktériumokon kívül bizo­nyos más baktériumfajták sterilizált tenyészetét is haté­konyan alkalmazhatjuk mint a tápközeg egyik alkotó­részét. Ilyen baktériumokra példaként megemlítjük a Bacillus, Pseudomonas, Citrobacter, Escherichia és Er­­winia nemzetséghez tartozó baktéiriumokaL Pontosab­ban a következő baktériumokat nevezzük meg: Bacillus cereus IFO 3131, Bacillus subtilis IFO 3023, Bacillus pumilus IFO 12 089, Bacillus megaterium IFO 12 108, Bacillus amyloliquefaciens IFO 3022, Pseudomonas trifolii IFO 12 056, Citrobacter freundii IFO 12 681, Escherichia coli IFO 3546, Erwinia herbicola IFO 12 686. Ezeket a baktériumokat 20-40 *C közötti hőmér­sékleten 2-4 nap közötti időtartamig tenyésztjük egy tápközegben. A kapott tenyészetet sterilizáljuk és az említett oxidációs baktériumok táptalajához adjuk 0,5-5,0 térfogat% arányban, ezzel elősegítjük az oxi­dációs baktériumok növekedését. A táptalajban így előállított és felhalmozott 2-keto- L-gulonsavat ismert módon nyeljük ki és tisztítjuk. A 2-keto-L-gulonsavat izolálhatjuk, mint szabad sa­vat, vagy izolálhatjuk például nátrium-, kálium-, kalci­um- vagy ammóniumsóként is. Izolációs módszerként alkalmazhatjuk például azt az eljárást, amely szerint a baktériumsejteket a táptalajtól szűréssel, vagy szükség szerint centrifugálással vá­lasztjuk el és a fennmaradó oldatot adott esetben aktív szénnel történő kezelés után besűrítjük, a kivált kris­tályokat szűréssel elválasztjuk és átkristályosítás után kapjuk a céltermékeL Alkalmazhatunk ezenkívül oldó­szeres extrakciót, kromatográfiát, kisózást és hasonló eljárásokat. Ezeket az eljárásokat önmagukban vagy alkalmas kombinációjukban esetleg ismételve is alkal­mazhatjuk. Amikor a 2-keto-L-gulonsavat szabad sav formájá­ban nyerjük ki, átalakíthatjuk például nátrium-, káli­um-, kalcium-, ammónium- vagy hasonló sójává, ami­kor pedig sóként nyerjük ki, megfelelő módszerekkel átalakíthatjuk szabad savvá vagy egyéb sójává. A táptalajban előállított 2-keto-L-gulonsavat nagy teljesítményű folyadék kromatográfiával határozzuk meg a következő körülmények között: A nagy teljesítményű folyadékkromatográfiás mérés körülményei: HPLC: 655A rendszer (Hitachi Seisakusho, Japán terméke), Oszlop: SCR 101H (szulfonált polisztirolgén), 300*7,9 mm (Simadzu Seisakusho, Japán terméke), Áramlási sebesség: 0,8 ml/perc (nyomás 50 kg/cm2), Mozgó fázis: híg kénsav (pH-2,1), Detektor. UV (214 nm) és differenciáik refraktométer. Retenciós idő: 7,20 perc a 2-keto-L-gulonsavnál és 8,33 perc az L-szorbóznál. A továbbiakban néhány példán keresztül közelebbről is bemutatjuk a találmányt A példákban a táptalajra al­kalmazott %-ok tömeg/térfogat%-ot jelentenek, kivéve, ha másként adjuk meg. A kitermelés az L-szorbóz 2-keto­­-L-gulonsavvá történő moláris konverzióját jelenti. 1. példa 1. táblázat Ferde táptalaj (g/1) D-szorbit 25 Pepton 10 Élesztőkivonat 10 CaCOj 2 Agár 20 pH-7,0. 20 ml oltótáptalajt amelynek összetétele 2,0% D­­-glukóz, 1,0% pepton, 1,0% szárított élesztő és 2,0% CaCOj (Akadama, Shiraishi Calcium K. K., Japán ter­méke), 200 ml-es Erlenmeyer-lombikba helyezünk és 120 *C-on 20 percig autoklávban kezeljük azt. A lom­bikot egy kacsnyi Pseudogluconobacter saccharoketo­genes K591s törzzsel beoltjuk (IFO 14 464, FERM BP- 1130), amelyet előzőleg az 1. táblázat szerinti ferde táptalajon növesztettünk 30 *C-on 3 napon keresztül, és rázással (200 fordulat/perc) tenyésztünk tovább 30 ‘C- on 2 napon keresztül. A kapott 2 ml tenyészetet a fentebb már ismertetett tápközegbe visszük és azonos körülmények között tenyésztjük, így egy második oltó­tenyészetet kapunk. 25 ml fermentációs tápközeget, amelynek összetéte­le 2,0% CSL, 0,5% szárított élesztő, 0,3% ammónium­­szulfát, 0,05% Na2S203*5H20, 0,1% FeS0<*7H20, 0,005% CeClj*7H20,3,5% CaCOj (Akadama) és 9,5% L-szorbóz (amelyet külön sterilizáltunk), egy 200 ml­es Erlenmeyer-lombikba teszünk, és azt 120 'C-on 20 percig autoklávban kezeljük. 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 4

Next

/
Oldalképek
Tartalom