202275. lajstromszámú szabadalom • Eljárás funkciónális humán VIII. faktor előállítására

9 HU 202275 A 10 ban hibridizálunk: 6xSSC, 50 mM nátrium­­-foszfát (pH=6,8), 5x Denhardt-oldat, 0,1 g/1 forralt, ultrahanggal kezelt lazacsperma DNS és 20% formamid. A hibridizálást 42 °C-on végezzük a módszereknél leírtak szerint. A hérom foltot lxSCC-t és 0,1% nátrium-dode­­cil-szulfátot tartalmazó oldatban mossuk a le­mez felett feltüntetett hőmérsékleten. Az egyes lemezek egyes oszlopai a következő feltárt töredékekre vonatkoznak: 1. számú oszlop - EcoRl IX; 2. számú oszlop - EcoRl 4X; 3. számú oszlop - Bamlll IX; 4. számú oszlop - BamHl 4X; M. jelzésű oszlop - a vé­gén jelzett, lambdaHindllI és HaelII-vel emésztett $X174 marker töredékek. Az ábra jobb oldalán egy nitrocellulóz szűrő látható a 8.3. vizsgáló mintával hibri­­dizált lambda/4X könyvtár átvizsgálásából. A nyilak két független, a Vili. faktorra pozitív kiónt jeleznek. A könyvtár átvizsgálása és mosása úgy történik, mint fentebb a Sou­­thern-foltképzésnél leírtuk, s a mosást 37 °C-on végezve. A 4. ábra a humán VIII. faktor génjének térképét mutatja be. Az áb­ra felső sorában a VIII. faktor génben lévő 26 fehérjekódoló tartomány (A-Z exonok) helyzetét és viszonylagos hosszúságát jelez­zük. Az átirás iránya balról jobbra van. A második sorban a térkép méretaránya látható kilobázispár (kb) egységekben. A Vili. faktor gén térképezéséhez használt 10 restrikciós enzim felismerési helyeinek elhe­lyezkedését az ezt kővető vonalsorok mutat­ják be a 4. ábrán. Az üres téglalapok azok­nak a humán genomikus [ez alatt a további­akban genomiális értendő) DNS-eknek a ki­terjedését mutatják, amelyek az egyes lamb­da fág (lambda 114, lambda 120, lambda 222, lambda 482, lambda 599 és lambda 605) és kozmid (p541, p542, p543, p612, p613, p624) kiónokban jelen vannak. Az ábra alsó sora a genomikus átvizsgálásokhoz használt és a le­írásban imertetett vizsgálóminták elhelyezke­dését mutatja: 1) 0,9 kb nagyságú EcoRI/BamHI töredék a p543-ból; 2) 2,4 kb nagyságú EcoRI/BamHI töredék a lambda 222 fágból; 3) 1,0 kb nagyságú Ndel/BamHI töredék­­triplett a lambda 120-ból; 4) 8.3 oligonukleotid vizsgálóminta; 5) 2,5 kb nagyságú StuI/EcoRI töredék a lambda 114 fágból; 6) 1,1 kb nagyságú EcoRI/BamHI töredék a lambda 482 fágból; 7) 1,1 kb nagyságú BamHI/EcoRI töredék a p542-böl. A 46,XY és 49,XXXXY genomikus DNS Southern folt analízise nem tár fel észreve­hető különbségeket a VIII. faktor génjének felépítésében. Az 5. ábra a pGcos 4 kozmid vektort szemlélteti. A pGcosl plazmid kialakításához a lambda C 1857S7 (Bethesda Research Láb.) 403 bázispárból álló összeforrasztott Hindi töredékét, amely a cos helyet tartalmazza, klónozzuk a pBR322 Aval és PvuII közötti részére. Az mp33dhfr plazmid előállítása cél­jából a pBR322 AhalII helyre klónozzuk a pFR400 (49n) 1624 bázispárból álló, PvuII és Nael közötti töredékét, amely egy SV 40 ori­gót és promoLort, egy mutáns dihidrofolát reduktáz gént és hepatitisz B felületi anti­gén terminációs szekvenciát tartalmaz. Há­romrészes ligálást és klónozást végzünk a pGcosl 1497 bázispárból álló Sphl és Ndel közötti töredéke, az mp33dhfr 3163 bázispár­ból álló Ndel és EcoRV közötti töredéke, va­lamint a pKT19 376 bázispárból álló EcoRV és Sphl közötti töredéke között, és ilyen módon létrehozzuk a pGco63 kozmid vektort. A pKT19 a pBR322 olyan származéka, amelyben a tetraciklinnel szembeni rezisztenciát bizto­sító génben levő BamHl hely nitroguanozinos kezeléssel mutálva van. A pGcos4 kialakításá­ra a pGcos3 EcoRl helyébe klónozunk egy szintetikus 20-raert terméket: 5’ AATTCGATC­­GGATCCGATCG. A 6. ábra a pESVDA térképét mutatja be. Korábban már leírták az SV40 vírus 342 bázispárból álló, PvuII HindlII közötti töre­dékét, amely átfogja az SV40 replikációs ori­gót, és az EcoRl helyekhez való kapcsolással módosított [Crowley és munkatársai, Mol. Cell. Bioi., 3, 44 (1983)]; a hepatitisz B (HBV) felü­leti antigén (49n) poliadenilezési helyét, amely egy 580 bázispárból álló, BamHl és Bglll közötti töredéken helyezkedik el; vala­mint a pBR322 plazmid pML származékát [Lusky és munkatársai, Nature, 293, 79 (1981)]. Az SV40 korai proraotorát követő EcoRl hely és a HBV BamHl helye közé il­lesztjük a PvuII-HindlII töredéket (az ábrán az adenovirus 2, 16,63-17,06 koordinátákkal), amely az első késői vezető donor összefonó­dási helyét (helyzete 16,65) tartalmazza, s ezt közvetlenül az adenovirus 2 840 bázis­­párból álló HindlII-SacI töredéke (helyzete 7,67-9,97) követi, (49 j), amely az Elb akcep­­tor összefonódási helyet tartalmazza 9,83 ér­tékű helyzetnél. A donor és az akceptor he­lyek kozott helyezkedik el egy egyedi Bglll és a HindlII hely a genomikus DNS töredékek beillesztéséhez. A 7. ábra a pESVDA vektorból történő ribonukleinsav átirások analízisét mutatja be. Összefolyó COS-7 sejteket tartalmazó, 10 cm átmérőjű lemezeket [Gluzman, Cell, 23, 175 (1981) átfertőzünk 2 pg plazmid DNS-val, a módosított DEAE-dextrán módszer [Sompayrac és munkatársai, Proc. Natl. Acad. Sei. USA, 78, 7575 (1981)] alkalmazásával a következő szakirodalmi helyen leírt módon [Crowley és munkatársai, Mol. Cell. Bioi., 3, 44 (1983)]. Az átfertózés után 4 nappal ribonukleinsavat készítünk a citoplazma kivonatokból (49n), és eleklroforézisnek vetjük aló denaturáló for­­maldehid-agaróz géleken. Nitrocellulóz szű­rőkre visszük át, és az utóbbiakat hibridi­­záljuk a megfelelő 32P izotóppal jelzett DNS-5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 7

Next

/
Oldalképek
Tartalom