201775. lajstromszámú szabadalom • Eljárás interferon tisztítására

Hü 201775 B lasztásoknál alkalmazott gyanták és használatuk sorrendje a következő: 1) anioncserélő gyanta; 2) kationcserélő gyanta; 3) molekula szita. A kromatográfiás elválasztásokon felül a követ­kező eljárások alkalmazása hasznos: kicsapás, szű­rés, koncentrálás és dializálás. Egyik előnyös eljárásban a gamma interferont tartalmazó keveréket az alábbi kezeléseknek vetjük alá: 1) nukleinsav eltávolítás polietilén-iminnel való kicsapással; 2) a negatív töltésű proteázok és szennyező sejt proteinek eltávolítása gyengén bázisos anioncseré­lő gyanta használatával; 3) a pozitív töltésű proteázok és szennyező sejt proteinek eltávolítása gyengén savas kationcserélő gyantával; 4) a hasadt és aggregálódott interferon és a sejt fragmentumok eltávolítása molekula szita segítsé­gével. Hasznos kiegészítő eljárások: szűrés minden lé­pés után, a 3. és/vagy 4. lépés után koncentrálás, az 5. lépés után dialízis. Ezzel az új eljárással rendszeresen termelünk legalább 95% tisztaságú gamma interferont 5%-ot meghaladó kitermeléssel. A jelen találmánynak egyik fontos sajátossága az új tisztítási séma, amely minden esetben használha­tó gamma interferonra, a számos módszer közül bármelyikkel is volt előállítva, akár szövet tenyé­szetben szaporított humán sejtekből, akár vérmin­tákból gyűjtött leukocitákból, akár az ezen a szak­területen jól ismert klónozási módszerekkel. A tisz­títási séma különösen az E. coli sejtekből nyert rekombináns gamma interferon tisztítására alkal­mas. A sejteket a standard módszerek egyikével inaktiváljuk, ilyen a kémiai elölés módszere, példá­ul klór-hexidin-glukonáttal. Az inaktivált sejteket lecentrifugáljuk, pufferben reszuszpendáljuk és homogenizáljuk. A gamma interferon tartalmú sej­tek homogenizálására alkalmas módszer a nagy nyí­róerővel való feltárás Manton-Gaulin homogenizá­­torban. Az elroncsolt sejtek komponenseit centri­­fugálással csapadékra és felülúszóra különítjük el. Az itt kapott felülúszó megfelelő forrása az interfe­ronnak, ahonnan a jelen találmány szerint izoláljuk és tisztítjuk. A lizált sejt szuszpenzió proteineket, lipideket, szénhidrátokat, nukleinsavakat és oldhatatlan sejt törmelékeket tartalmaz. Szokásos eljárásokkal a sejt vízben oldhatatlan alkotórészeit a sejt vízben oldódó frakcióitól elkülönítjük, ezek a felülúszóban maradnak. Néha előnyös, ha a gamma interferonnak a sej­tekből való kivonása előtt bizonyos előzetes feldol­gozási lépéseket alkalmazunk, például olyan mód­szereket, amelyek csökkentik az interferon degra­dálódását az eljárás folyamán. Bármilyen ilyen el­őzetes eljárás alkalmazható, feltéve, ha ezek nem zavarják az itt leírt tisztítási sémát. A soklépéses tisztítási sémával a tiszta interfe­ront nagyobb kitermeléssel állítjuk elő, biológiai aktivitásának megtartása mellett. Az elválasztási 11 lépések szekvenciája nagyon lényeges és meghatá­rozó abból a szempontból, hogy a találmány szerint kívánt eredményeket elérhessük. Az interferont tartalmazó keverékből a követke­ző sorrendben távolítjuk el a szennyezéseket: a) nukleinsavak eltávolítása; b) a negatív töltésű proteázok és szennyező sejt proteinek eltávolítása; c) a pozitív töltésű proteázok és szennyező sejt proteinek eltávolítása; d) a kis és nagy molekulatömegű szennyező anyagok, az interferon törmelékek és interferon aggregátumok eltávolítása. Jelenleg nem ismerjük az okát, de a szennyező anyagoknak a megállapított sorrendben való eltá­volítása határozza meg, hogy nagy kitermelést ér­jünk el a tisztított gamma interferonnál amellett, hogy biológiai aktivitását is megőrzi. A különböző típusú szennyező anyagok eltávolítására használt egyedi lépések rutin módszerek és a szakterületen ismertek. Mivel durva feldolgozási körülmények között a gamma interferon hajlamos inaktív for­mákká való átalakulásra, egyrészt a molekula hasa­dása, másrészt aggregálódása következtében, azok a tisztítási lépések az előnyösek, amelyeket kíméle­tes feldolgozási módszerekkel lehet végrehajtani. A találmányban ezenkívül olyan specifikus fel­­dolgozási lépéseket és körülményeket is leírtunk, amelyekről azt találtuk, hogy minimálisra csökken­tik az interferon degradációját, azonban el kell is­merjük, hogy más hagyományos feldolgozási lépé­sekkel is lehet helyettesíteni a találmányban emlí­tetteket, feltéve, ha a szennyezések eltávolításának sorrendje ugyanaz marad, ahogy leírtuk. Ha az ezután következő leírásban másként nem állítjuk, az adott pH-értékektől való eltérés általá­ban ± 0,5 lehet, előnyösebb a ± 0,25, de legelőnyö­sebb a ± 0,1 eltérés. A vezetőképesség méréseknél az eltérés általában ± 5 mS lehet, de előnyösebb, ha a ±3 mS tartományban marad. A műveleteket 2- 15 °C hőmérsékleti tartományban végezzük. A feldolgozási séma első lépése a nukleinsavak eltávolítását foglalja magába. Az eltávolítást úgy lehet könnyen keresztülvinni, hogy a lizált sejtek keverékének centrifugálás után kapott felülúszójá­­hoz polietilén-imint adunk. Egy másik megoldás szerint a polietilén-imin oldatot, ha kívánt, a homo­­genizálás előtt is hozzá lehet adni a sejtekhez. A polietilén-imint lassan, keverés közben adagoljuk, legfeljebb 0,8% maximális koncentrációig. Ezután a keveréket megfelelő ideig, általában 30-90 percig ülepedni hagyjuk. A keveréket ezután lecentrifu­gáljuk és a felülúszót felfogjuk. Kiváló eredménye­ket kapunk, ha a polietilén-imint 10%-os (térf/térf.) vizes oldatként adagoljuk és ez a koncentráció elég ahhoz, hogy a polietilén-imin tartalmú oldat végső koncentrációja körülbelül 0,7-0,8%-os (térf/térf.) legyen. Az oldat pH-ja 8as0,5, előnyösen ±0,1 és a hőmérsékletet 2-15 °C között tartjuk. Ennél a lé­pésnél meghatározzuk a felülúszó protein koncent­rációját a standard coomassie blue módszerrel és az előálh'tás minden további szakaszánál ugyanígy járunk el. Egy másik eljárás a nukleinsav eltávolítására hidroxilapatiton vagy immobilizált PEI-n való kro-12 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 7

Next

/
Oldalképek
Tartalom