197867. lajstromszámú szabadalom • Eljárás tetrahidro-naftalin és indán származékok előállítására

197567 4 sen tozil-oxi-aniont képviselhet. A Q arilcso­­port előnyösen fenil- vagy helyettesített feni 1 - csoport (pl. p-tolil-csoport) lehet. A Horner-reakcióná! — azaz A helyén -CH(R3)-P(0) (OAlkil)2 általános képletű cso­portot vagy B helyén -CH(R2)-P(0) (OAIkil)2 általános képletű csoportot tartalmazó (III) általános képletű vegyületek alkalmazása ese­tén — a komponenseket szerves bázis segít­ségével és előnyösen inert szerves oldószer je­lenlétében (pl. nátrium-hidrid segítségével benzolban, toluolban, dimetil-formamidban, di­­metii-szulfoxídban, tetrahidrofuránban dioxán­­ban vagy 1,2-dimetoxi-etánban; vagy nátrium­­-alkoholát segítségével valamely alkanolban, előnyösen nátrium-metilát segítségével meta­nolban) 0°C és a reakcióelegy forráspontja közötti hőmérsékleten kondenzálhatjuk. Az „OAlkil” alkoxicsoport előnyösen I—6 szénatomos kis szénatomszámú alkoxicsoport (pl. metoxi- vagy etoxicsoport) lehet. Az A helyén -CH(R3l)MgHal általános képletű csoportot, illetve B helyén -CH(R21 )MgHal általános képletű csoportot tartalmazó (III) általános képletű vegyületek reagáltatását önmagukban ismert módon, a Grignard-reakciók szokásos körülményei kö­zött hajthatjuk végre. így pl. valamely éter­ben (Pl. dieti 1-éterben vagy tetrahidrofurán­ban) szobahőmérsékleten dolgozhatunk és az ezután következő vízlehasítást savas szerekkel (pl. szerves savakkal, mint pl. p-toluol-szul­­íonsavval) hajthatjuk végre. A fenil-gyűrűn amínocsoporttal helyette­sített — azaz R1 helyén aminocsoportot tar­talmazó — (I) általános képletű vegyiete­ket előnyösen a megfelelő nitro-vegyületeken keresztül állíthatjuk elő. Az (I) általános kép­letű vegyületekben levő nitrocsoportot önma­gukban ismert módszerekkel — pl. naszcensz hidrogénnel — alakíthatjuk aminocsoporttá. Az (I) általános képletű vegyületekben lévő aminocsoportot önmagában ismert módon mo­no- vagy di-alkilezhetjük pl. megfelelő alkile­­zőszerekkel (pl. alkil-halogeniddekkel vagy -szulfátokkal) történő kezeléssel vagy alde­hidekkel (pl. formaldehiddel vagy acetalde­­hiddel) és nátrium-ciano-bór-hidriddel végre­hajtott reduktív alkilezéssel. A Z csoportban levő karbonilcsoport redukcióját ugyancsak önmagukban ismert módszerekkel végezhet­jük el. így pl. a karbonilcsoportot redukálósze­rekkel (pl. nátrium-bór-hidriddel) történő ke­zeléssel redukálhatjuk hidroxilcsoporttá. Az (I) általános képletű vegyületek — mint már említettük — transz- vagy cisz-for­­mában lehetnek jelen. Az előállítás során álta­lában a transz-forma keletkezik. Az adott eset­ben képződő cisz-komponenseket kívánt eset­ben önmagukban ismert módszerekkel elvá­laszthatjuk. A (II) és (III) általános képletű kiindulá­si anyagok — amennyiben nem ismertek vagy előállításukat a továbbiakban nem ismertet­jük — ismert és a későbbiekben ismertetett 3 módszerekkel analóg eljárásokkal állíthatók elő. Az (I) általános képletű vegyületek gyó­­gyószatilag hatásosak és különösen anti-se­­borrheás, anti-keratinizáló-, anti-neoplaszti­­kus és anti-allergiás/gyulladásgátló hatást mutatnak. A fenti hatásokat az alábbiakban ismertetésre kerülő tesztekkel igazoljuk: A) Az anti-keratinizálódó hatást'az alábbi módszerrel rhinoegérmodellen határozzuk meg. A rhinoegér bőrére az jellemző, hogy szőr­tüszőkkel egyaránt érintkező, keratinnal töl­tött felhám utriculusok és szubkután ciszták vannak jelen. Retinoidok adagolása a felhám túlburjánzásához és az utriculi epitéliás ki­­türemléséhez vezet. A felhám megvasíagodá­­sa és az utriculusok nagyságának csökkenése a felhám réteg megváltozott szerkezetének nor­malizálódását eredményezi. A rhinoegér bőré­re naponta helyileg 0,1 ml/cm2 mennyiségben a teszt-vegyület 3% -os acetonos oldatát három héten át juttatva, illetve a hatóanyag arachis­­olajjal képezett oldatát 3 héten át orálisan be­adagolva a felhám szignifikáns burjánzása és a keratinnal töltött utriculusok markáns kíseb­­bedése figyelhető meg. B) Kémiailag indukált emlőtumorok meg­előzésére gyakorolt hálást az alábbi módszer­rel határozzuk meg. Nőstény Sprague-Daw­­ley patkányokat ellenőrzött és szabályozott hőmérsékleti és megvilágítási körülmények kö­zött tartunk. Az állatok szabadon kapnak ivó­vizet és táplálékot. Minden patkánynak 50 na­pos korban 15 mg dimetil-benz ja) antracén arachisolajjal képezett oldatát adjuk be gyo­morszonda segítségével. A teszt-vegyülettel történő kezelést egy nappal a karcinogén anyag beadása után kezdjük meg. A kísérleti állatok testsúlyát feljegyezzük és a tumoro­kat hetente palpáljuk és tolómércével megmér-D jük. A térfogatot a —>- d2 képlet alapján szá- 2 mítjuk ki, ahol „D" a tumorellipszoid nagyobb és „d” a kisebb átmérőjét jelenti. A kísérletet 11 hét után befejezzük és kiértékeljük. A kísér­letben 30 állatból álló kontrollcsoportot (nor­mál táplálékon tartott kontrollcsoportot) és a két alábbi kezelt csoportot alkalmazzuk: 1) 33 patkány; ezek táplálékába naponta 30 mg/kg teszt-vegyületet keverünk be. 2) 36 patkány; ezek naponta 90 mg/kg teszt-vegyületet tartalmazó tápot kapnak. C) A tumorokra kifejtett hatást patkányo­kon transzplantálható kondroszakómán az alábbi teszt segítségével határoztuk meg. A donor-állat szolid tumorját finoman aprítjuk és íoszfát-puffer/nátrium-klorid-oldat elegy­­ben szuszpendáljuk. 0,5 ml 30%-os tumorpé­pet Albinopatkányokba szubkutáns úton imp­­lantálunk. A transzpiantált patkányokat 8—8 állat­ból álló csoportokba osztjuk. A teszt-vegyü­­letet arachisolajban szuszpendáljuk és nyelő-3 5 W 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65

Next

/
Oldalképek
Tartalom