197766. lajstromszámú szabadalom • Eljárás szérumtól független sejtvonalak előállítására

vettenyésztő lombikok újraoltására. Azokat a sejteket, amelyek nem mozdultak,, ki ellát­juk friss RPMI-1640 tápközeggel. Ezen a mó­don 5 hónap teljes időtartam alatt a szérum­tól független Bowes II sejtvonal tenyészete létrejön. b.) Bowes II sejtvonal létrehozása Bowes I sejtekből gyűjtött kondicionált tápközeg nélkül 4 ml Bowes-RPMI 7272 szérum-függő me­lanoma sejtvonal fagyasztott tenyészetet, amely 15% borjúembrió szérumot és 10% DMSO-t tartalmaz, felengedtetjük és hozzá­adjuk 15 ml szérummentes, előmelegített DMEM-hez 75 cm2 * *-es szövettenyésztő lom­bikban. A sejteket egy éjszakán át inkubál­­juk 37°C hőmérsékleten nedves atmoszférá­ban, amely 5% széndioxiddal van kiegészít­ve. Ez után az idő után a teljes tápközeget, beleértve a nem tapadó sejteket is, eltávolít­juk és 15 ml szérummentes DMEM-mel he­lyettesítjük. Az inkubálást addig folytatjuk, amíg a sejtek szemcsézettnek tűnnek mikro­szkóp alatt (24—72 óra); ennél az időpont­nál a tápközeget eltávolítjuk és friss szérum­­mentes DMEM-mel helyettesítjük. Ezt az el­járást megismételjük minden 2—3 napon, ahogy szükséges (a sejtek mikroszkópos meg­jelenése, a tápközeg pH változása), fokoza­tosan növelve a tápközeg össztérfogatát 30 mi­re. Amikor 60—70% összefolyást érünk el (mintegy 3 hét), a sejteket két új, azonos mé­retű lombikba visszük át 0,02% EDTA-t al­kalmazva, hogy a sejtek a tenyésztő edény felületéről leváljanak. Az első átoltásnál a szérummentes DMEM tápközeget kiegészít­jük 40% olyan tápközeggel, amelyet a tenyé­szetből távolítottunk el az EDTA kezelés előtt. Ennél a pontnál a szérummentes vonal ki­alakul és a sejtek folytatják az osztódást kon­dicionált tápközeg távollétében is, ha megfe­lelően nagy sejtsűrűséget tartunk fenn, pl. legalább 30% összefolyásnál. 2. példa Bowes II sejtek tenyésztése süllyesztett tenyészetben Szövettenyésztő lombikban, szérummen­tes RPMI-1640 tápközegben összefolyásig nőtt Bowes II sejteket kimozdítjuk a lombik kézzel végzett erőteljes megcsapolásával, összegyűjtjük a sejteket, hogy 0,6 1 szuszpen­ziót kapjunk, amely 2.105 sejtet tartalmaz milliliterenként, .és ezt a szuszpenziót átvisz­­szük 3 1-es, gőzzel sterilezett üvegedénybe. A sejtszuszpenziót lassan kevertetjük mecha­nikus keverővei (40 fordulat/perc). A hőmér­sékletet szabályozzuk 37±0,l°C-ra és a tenyé­szetet ellátjuk oxigénnel felületi levegőzte­tés segítségével 0,2 1/perc sebességgel, az alkalmazott levegő 5% C02-t tartalmaz. A pH csökkenését 6,9 alá megakadályozzuk tisz­ta levegőre visszatérítéssel. A mintegy egy hetes kezdeti adaptációs periódus során friss, szérummentes tápközeget adunk, hogy meg-11 akadályozzuk a glükóz kimerülését. A vég­ső tenyésztő térfogat 1 liter. Amikor a sejt­­sűrűség eléri a 3—4.105 * sejt/ml-t, megkez­dődik a tenyészfolyadék periodikus kivoná­sa. Minden 2—4 napon a kevertetést 3 órá­ra félbeszakítjuk, hogy lehetővé tegyük hogy az élő sejtek leülepedjenek, és az elhasznált tápközeg felső 30%-át kivonjuk, és friss, szé­rummentes tápközeggel helyettesítjük. A te­­nyészfolyadékot 2000 fordulat/perccel (~300 g) 5 percig centrifugáljuk, hogy a tel­jes sejteket és a sejttörmeléket eltávolítsuk. A.z oldatot Triton X-100-zal stabilizáljuk, 0,1 % végső koncentrációt alkalmazva, és ecetsav­val savanyítjuk 5,5—6,0 pH értékre, mielőtt —20°C hőmérsékleten tárolnánk. 3. példa Bowes II sejtek tenyésztése szövettenyésztő lombikban és a tenyészfolyadékok összegyűj­tésére A Bowes II szérumtól független sejtvo­nalat 5.107 sejt/150 cm2 szövettenyésztő lom­bik (Costar) mennyiségében inokuláljuk 50 ml antibiotikumokkal kiegíszített RPMI tápkö­zegbe (lásd 1. példa) 37°C hőmérsékleten nedves atmoszférában, amely 95% levegő­ből és 5% C02-ből áll. Amikor a sejtek tapa­dóvá váltak, a tápközeget a sejtekből össze­gyűjtjük és friss, antibiotikumokkal kiegé­szített RPMI-1640 tápközeggel helyettesít­jük. A szérummentes tenyészfolyadék kieme­lését 24 órás időtartamonként ismételjük, amíg az egy-réteg összefolyása szükségessé teszi az átoltást. Az összefolyást mintegy 5 hét múlva érjük el. A tenyészfolyadékot úgy dolgozzuk fel, ahogyan ezt a 2. példában le­írtuk. 4. példa Megnövekedett TPA szint előállítására képes szérumtól független Bowes II sejtvonal mu­táns kiválasztása 5% borjúembrió szérumot adunk szérum­tól független Bowes II sejtvonal Petri-csé­­sze tenyészetéhez abból a célból, hogy növel­jük a sejtek növekedési sebességét és bizto­sítsuk, hogy több sejt legyen a fázisban egy adott időpontban. Amikor a sejtek gyorsan osztódó és exponenciálisan növekvő fázisban vannak, és amikor ezek mintegy 70%-os ösz­­szefolyásánál vannak, 0,1 mmól/1 N-metil­­-N-nitro-N’-nitroguanidint (MNNG) adunk a tenyészethez. Ez a koncentráció a sejtek 70—80%-ának pusztulását okozza. 36 óra múlva a megmaradó élő sejteket a Petri-csé­­széről tripszinezéssel eltávolítjuk. A sejte­ket újra átoltjuk 1.105 sejt/60 mm Petri-csé­­sze sűrűséggel. Két hét múlva sejtek telepe­it figyeljük meg a csésze fenekénél, minden telep egyedi sejtek utódait képviseli, amely sejtek túlélték a mutagenezíst. Ezeket a te­lepeket azután 1 ml fedő oldattal fedjük, amely az alábbiakat tartalmazza: 50 pl plazminogén (1 mg/ml), 300 pl 8% -os kazein izotóniás sóoldatban, 12 7 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65

Next

/
Oldalképek
Tartalom