197047. lajstromszámú szabadalom • Eljárás interferonok és az ezeket termelő gazdasejtek előállítására

21 197 047 22 összes védőcsoportjainak lehasftását ismert mód­szerekkel végezzük. Például a 2 - ciano - etil - cso­portot (R3) alkalikus kezeléssel hasíthatjuk, az R, monometoxi-triül-csoportot 80%-os ecetsavas re­akcióval, és az Rj 2-klór-fenil-csoportot tetrabutil - ammonium - fluoridos reakcióval hasítjuk. Hasz­nálhatunk az irodalomban ismert, más módszereket is. A szintézis egyes lépéseit a 2. ábrán mutatjuk be. Az előállított 13-tagű oligo-dezoxi-nukleotid prímért ismert kromatográfiás módszerekkel tisztít­juk. Például ügy járunk el, hogy DEAE-Sephadex kromatográfiát és/vagy nagy felbontású folyadék­­kromatográfiát végzünk. A prímért ügy jelöljük 5’­­P32-jelzéssel, hogy a következő hibridizációs eljárás során a hibridizált próbát detektálhassuk. A jelzést úgy végezzük, hogy a szintetizált prímért jelzett foszforilezőszerrel, például [gamma-P3J-]ATP-vel jelöljük, a jelölést T4 polinukleotid kinázzal végez­zük, előnyös pufferelegyben. A P32-jelzett prímért tartalmazó oldatot proteinmentesítésse! (például fenollal) és kromatográfiával (például Sephadex kromatográfiával) vagy poli-akrilamid gél-elektro­­forézissel tisztítjuk. Ha szükséges, a termék nukleo­­tid-szekvenciáját kétdimenziós homokromatográfi­­ával bizonyítjuk. Az ld) pontban megadottak szerint előállított LyIFN mRNS-re töményített poli-(A)-rlbonukle­­insavat használjuk templátként, egy IFN-a- és INF-ß-specifikus cRNS-próba előállítására. Úgy járunk el, hogy a cDNS szintézisére gyakor­latilag a 2a) pontban megadottakat ismételjük meg, azzal a különbséggel, hogy az oligo-(dT) helyett primerként 5’-jelzetf szintetikus oügo-dezoxi-nuk­­leotidot használunk. A jelzett cDNS terméket pél­dául fenollal proteinmentesítjük és etanolos kicsa­pással gyűjtjük össze. További tisztítást végezhe­tünk például a cDNS termék poli-akrilamid gél­­elektroforézisével. A terméket autoradiográfiával vizsgáljuk. Az indukált sejtekből izolált poli-(A)-ribonuk!e­­insavra specifikus egyszálú dezoxi-ribonukleinsav csíkot nem tudunk kimutatni abban a termékben, amelyet a nemindukált sejtekből származó poli­­(A)-ribonukleinsawal állítottunk elő és extrahál­tunk a gélről. A termék nagyságát például ismert hosszúságú jelzett dezoxi-ribonukleinsav kontroí­­lokkal összehasonlított relatív mobilitásából állapít­juk meg. Az előállított termék egy P32-jelzett hu­mán LyIFN-a és LyIFN-ß specifikus cDNS-próba. c) A lymphoblastoid IFN cDNS-í tartalmazó klánok izolálása A túlélő és tetraciklinnel kiegészített agaron (lásd 3e) pontot) növekvő telepeket lymphoblasto­id interferon cDNS-t tartalmazó kiónokra vizsgál­juk. Ezt ín situ, az előzőekben (4a/ pont) ismerte­tett telep-hibridizációs módszerrel végezzük. A transzformáns telepeket niirocellulóz szűrőkre jut­tatjuk, és további agarlemezekre replikázva kont­­rolltelepeket is növesztünk. A szűrőn levő telepe­ket lizáljuk, dezoxi-ribonykleinsavukat denaturál­juk, és in situ fixáljuk a szűrőkön. (36) A hibridizációs eljárás előtt a szűrőkön levő de­naturált dezoxi-ribonukleinsavat előnyösen idegen forrásból származó dezoxf-tibonukleirjsav-keverék­­kel előbibridizáljuk abból a célból, hogy gyengébb hátteret kapjunk, és hogy a nemspecifikus hibridi­­záiódó helyeket telítsük. Ezután az előzőekben (4b/ pont) megadott módon előállított, radioaktí­­van jelzett cDNS-molekuiákkai hibridizáljuk a szű­rőre kötött dezoxi-ribonukleinsavat, amelyeket előzőleg ásványi olajjal fedtünk be. Miután a szű­rőket megtisztítjuk az ásványi olajtól és más szeny­­nyeződésektől, a hibridizáció eredményeit X-sugár­­zásérzékeny filmet használva, autó radiográfiás ana­lízissel értékelhetjük. A röntgensugár-érzékeny fil­men pozitív eredményt adó telepeket a kontroll le­mezekről izoláljuk és tovább vizsgáljuk. Előnyösen úgy járunk el, hogy a transzformált telepek csak egy részét juttatjuk a nitroceliulőz szű­rőkre. A további telepeket az alábbiakban (4d/ pont) ismertetett eljárásokban használjuk további vizsgálatokhoz. A nítrocellulóz szűrőkön fixált de­­zoxi-ribonukleinsavat például olyan előhibridizáci­­ós eleggyel kezeljük, amely denaturált dezoxi-ribo­­nukleinsavat, például denaturált borjű-thymus de­­zoxi-ribonukleinsavat, marhaszérűm albumint, Fi­­coll-t és polivinil-pirrolidont tartalmaz, majd ez­után hibridizáljuk a 4b) pontban megadottak sze­rint radioaktívan jelzett cDNS-próbávai, mégpedig paraffinolaj alatt standard hibridizációs eljárással (36). A hibridizáció befejezését követően kloro­formmal, majd ezután náírium-dodecil-szulfátot és kis koncentrációban sót tartalmazó puffénál mos­suk a szűrőket, a paraffin olaj és a nemhibridizált cDNS eltávolítására. A szűrőket autoradiográfiás vizsgálatra röntgensugárzásra érzékeny filmmel fo­tózzuk. A hibridizált telepek pozitív foltot adnak, és a kontroll lemezekről izolálhatok. Az azonosított telepek a cDNS-próbára komple­menter rekombináns dezoxi-ribonukleinsav sza­kaszt tartalmaznak, azaz olyan dczoxi-ribonuklein­­sav-szegmenseket, amelyek megfelelnek a humán lymphoblastoid géneknek vagy fragmenseknek. Mivel a transzformált sejtek primer telepei eseten­ként többféle rekombináns dezoxi-ribonukleinsav­­molekulát tartalmaznak, a pozitívan hibridizálódó telepekből izoláljuk a hibrid plazmid dezoxi-ribo­­nukleinsavat, és E. coli HB 101 sejteket transzfor­málunk a 3s) pontban megadottak szerint eljárva. A hibrid plazmid dezoxi-ribonukleinsavakat példá­ul az alábbiak szerint eljárva izoláljuk. Először az azonosított telepeket megfelelő táptalajban, példá­ul triptont tartalmazó táptalajban tenyésztjük, a plazmidot nem tartalmazó sejtek eliminálására, tet­­raciklin jelenlétében. A túlélő sejteket összegyűjt­jük, megfelelő pufferban szuszpendáljuk és úgy tár­juk fel őket, hogy a kromoszóma a sejten belül ma­radjon. Részletesebben szólva, úgy járunk el, hogy lizozimot, etilén-diamin-tetraecetsavat és egy nem ionos detergenst, például Triton-t adagolunk. Ez­után a sejtíörmeléket és a kromoszómái'^ dezoxi­­ribonukleinsavat centrifugálássa! elkülönítjük. A felül úszót például fenollal proteinmentesítjük, és a ribonukleinsavat ribonukleázzal, például ribonukle­­áz A-vaí hasítjuk. A hibrid plazmid dezoxi-ribo­nukleinsavat a ribcnukleinsav-fragmensektől polie­5 10 15 20 25 30 35 40 x*5 50 55 60 55 12

Next

/
Oldalképek
Tartalom