197044. lajstromszámú szabadalom • Eljárás streptomyces és E.coli sejtekben használható kimer klónozó vektorok előállítására

13 197 044 14 gyületeket határoznak meg, vagy olyan enzimeket, amelyek meghatározzák vagy fokozzák antibiotiku­mok vagy más termékek bioszintézisét. Azzal, hogy a találmány szerinti eljárással lehet­ségessé válik a fenti dezoxi-ribonukleinsav-szeg­­mensek beépítése, stabilizálása és bejuttatása Streptomyces és E. coli sejtekbe, lehetségessé válik Streptomyces sejtek által termelt antibiotikumok termelésének fokozása rckombináns genetikai ma­nipulációval. Ezenkívül, mivel az SCP2 vagy az SCP21 plazmid replikácids origója kisszámú máso­latot határoz meg, gyakorlatilag bármilyen dezoxi­­ribonukleinsav-szekvencia, még az is, amely nagy­számú másolatot meghatározd plazmidon kifejezve letális, könnyen klónozható a találmány szerinti vektorokba, s bejuttatható Streptomyces és E. coli sejtekbe. Az SCP2 és az SCP2* plazmidok forrása sor­rendben a Streptomyces coelicolor A3 (2) és a Streptomyces coelicolor M110. Ezek a törzsek különböző táptalajokon tenyészthetők. A táptalaj­ba szénforrásként például melaszt, glükózt, dextrinl és glicerint, nitrogénforrásként például szójalisztet, aminosavak keverékét vagy peptont adagolunk. A táptalajba szervetlen sókat is adunk, ezek például nátrium-, kálium-, ammonium-, kalcium-, foszfát-, klorid- vagy szulfátionokra, vagy más ionokra disz­­szociáló sók. Mint ahogy más mikroorganizmusok növekedéséhez és fejlődéséhez is szükséges, a táp­talajhoz nyomelemeket is adagolunk. A nyomele­mek a táptalaj egyéb összetevőiben általában szennyeződésként már jelen vannak. A Streptomyces coelicolor Ml 10 és S. coelicolor A3 (2) törzset levegőztetett fermentációs körülmé­nyek közötr tenyésztjük 5 és 9 közötti pll-érlékcn, 15 "C és 40 °C közötti hőmérsékleten. Az SCP2 és SCP2* plazmid nagyszámú másolatát tartalmazó sejtek előállítására azonban a tenyésztést 7,2 pK-n kezdjük, és a tenyészet hőmérsékletét 30 °C-on tartjuk. Ha a Streptomyces coelicolor M110 és S. coelicolor A3 (2) törzset a fenti körülmények között tenyésztjük, úgy olyan tenyészetet kapunk, amelyből az SCP2* és az SCP2 plazmidok ismert módszerekkel könnyen izolálhatok. Az alábbiakban a találmány szerinti eljárást pél­dákkal szemléltetjük I. példa Az SCP2X plazmid izolálása A) A Streptomyces coelicolor Ml 10 tenyésztése A Streptomyces coelicolor__ Ml 10 (NRRL 15041) törzs vegetatív inokulumának előállítására a törzset süllyesztett, levegőztetett fermentációs körülmények között tenyésztjük 50 ml, 35 g/1 Trypticase szóját tartalmazó, ionmentes vízzel ké­szült táptalajban. A Trypticase szóját a Difco Laboratories-től (Detroit, Michigan, USA) vásároltuk. A Trypticase. szójás inokulumot 48 órán át inku­­báljuk 30'C hőmérsékleten. Ezután homogenizál­juk az 50 ml térfogatú tenyészetet, majd 450 ml steril YEMES'j táptalajhoz öntjük. Ennek a tápta­lajnak az összetétele a következő: 0,3% élesztőkivonat 0,5% pepton 0,3% malátakivonat 1,0% dextróz 34,0% szacharóz 0,1% magnézium-klorid 0,1% glicin. A tenyészetet 40, de legfeljebb 65 órán át inku­­báljuk 30 *C hőmérsékleten. A tenyészet pH-ját nem állítjuk. Az inkubációt követően a Streptomy­ces coelicolor Ml 10 sejtekből összegyűjtésüket követően izoláljuk u plazmid dczoxi-ribonukleinsa­­vat. B) Plazmid izolálás 10 g centrifuganedves Streptomyces coelicolor Ml 10 sejtet izolálunk centrifugálással. A centrifu­­gálást 10 percen át 4 “C hőmérsékleten végezzük, percenként 10.00ü-ct forduló rotorban. Ezután 1 g nedves sejtre számolva 10 ml TES-puffert adago­lunk. A TES-puffer összetétele a következő: 0,01 mól trisz.-(hidroxi-metil)-amino-etán (trisz) 0,001 mól etilén-diarnin-tetraecetsav 25 % szacharóz, pH=8. A sejteket vortexezzük, majd 1 g centrifuganed­ves sejtre számolva 10 ml 0,25 mólos etilén-dia­­min-tetraeceísavat (pH=8) adagolunk, majd 1 g centrifuganedves sejtre számolva 5 ml TES-puffer­­ral készült lizozim-oldatot. Az oldat ml-enként 10 mg üzozimot tartalmaz. 15 percen át 37 *C hőmér­sékelten inkubáljuk a szuszpenziót, majd 1 g cent­rifuganedves sejtre számolva 1,5 ml 20%-os nátri­­um-iauril-szulfátot (BDH Chemicals Ltd., Poole, Anglia) adagolunk. A kapott elegyet 30 percen át szobahőmérsékleten hagyjuk állni, majd annyi 5 mólos nátriuiu-klorid-oldatot adagolunk, hogy a nátrium-klorid végkoncentrációja 1 inól/1 legyen. 15 percen át szobahőmérsékleten hagyjuk állni az elegyet, majd 2 órán át jégfiirdőbeu tároljuk. A 11- zátumot 20 percen át, 4 °C hőmérsékleten, percen­ként 17.500-at forduló rotorban centrifugáljuk, a felülúszdt összegyűjtjük és 0,64 térfogat izopropil­­alkoholial keverjük. A dezoxi-ribonukleinsav csa­padékot centrifugálással gyűjtjük össze. A centrifu­­gálásl 15 percen át 4“C hőmérsékleten végezzük, percenként 10.000-et forduló rotorban. Levegőn szárítjuk a csapadékot, majd 1 g nedves sejtre szá­molva 1 ml TE-pufferban szuszpendáijuk. A TE- puffer összetétele a következő: 0,01 mól trisz és 0,001 mól etilén-diarnin-tetraecetsav (literen­ként) Ezután 20 órán át 20 “C hőmérsékleten, percen­ként 50.000-et forduló rotorban cézium-klorid gra­diensen, propidium-jodid jelenlétében centrifugá­lunk a plazmid dezoxi-ribonukleinsav tisztítása cél­jából. A centrifugálást követően az SCP2* dezoxi­­ribonukleinsav csíkot eltávolítjuk, és a propidium­­jodidot ismert módon extraháljuk. A cézium-klo-5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 8

Next

/
Oldalképek
Tartalom