195619. lajstromszámú szabadalom • Eljárás hepatitis-B vírussal szemben orális vakcinák előállítására

3 195 619 4 ratories, (1982)]. A beépíthető idegen DNS maxi­mális hosszúságának biztosítására a virális genomból törölhető két nélkülözhető régió, az adenovirus 5. tí­pusú virális genomjának a korai 1. régiója (El) vagy a korai 3. régiója (E3), vagy mindkettő. A AEl-ct egy plazmid és egy módosított adcnovírus-DNS közötti in vivo rekombinációs folyamattal állíthatjuk elő. (A leírásban ismertetett összes plazmidot E. coliban szaporítjuk.) A plazmidot úgy állítjuk elő, hogy az adcnovírus-DNS 0 és 17 géntérkép-egységek közé eső szekvenciáit a pBR322-be illesztjük, majd ezt köve­tően restrikciós endonukleázos emésztést és kapcso­lást alkalmazva töröljük az 1,4 és 9,1 géntérkép-egy­ségek közötti szekvenciát és egy Xbal restrikciós he­lyet illesztünk be erre a helyre. Az így kapott plazmi­dot pAC-nak jelölik a szakirodalomban. A 4,0 gén­­térkép-koordinátánál egy egyszerű Xbal restrikciós helyet tartalmazó módosított adcnovínis-DNS-t az alábbiak szerint állítjuk elő. Az Xbal négy helyen ha­sítja a vad típusú Ad5 DNS-t: a 4, 29, 79 és 85 gén­tér kép-egységeknél. A 29, 79 és 85 helyeket nem tar­talmazó módosított DNS-t úgy izoláljuk, hogy az Ad5 DNS-t Xbal-lal hasítjuk, a DNS-t transzfektáljuk és a 29 és/vagy 79 helyzetben Xbal helyeket nélkülöző módosított adenovírust izoláljuk. A fenti eljárást meg­ismételjük, ily módon olyan módosított adenovírust izolálunk, amely csak a 4 helyzetben tartalmaz Xbal helyet. Ilyen módosított adenovírusokat oligonukleo­­tid-irányított mutagenezis módszert alkalmazva is egyszerűen szerkeszthetünk [Smith M. és Gillam S.: Genetic Engineering, Sctlow J. K. és Hollander A. szerkesztők, 3. kötet 1—32. oldal, Plenum, New York, (1982)]. E módszer szerint az Xbal restrikciós helye­ket kémiailag szintetizált oligonukleotidokkal semmi­sítjük meg, amelyeket úgy terveztünk, hogy a meg­felelő Xbal restrikciós endonukleáz helyek által meg­határozott aminosavakat kódoló régiókban néma vál­tozásokat hozzanak létre. A AE3 vektort az E3 régió­szekvencia törlésével szerkesztjük meg. A fenti eljárás­sal két módosított adenovírust (5. típus) állítunk elő. Az egyik nem tartalmaz Xbal helyeket, a másik csak a 29, 79 és 85 géntérkép-koordinátáknál tartalmaz Xbal helyeket. Az Xbal helyeket egyáltalán nem tar­talmazó mutáns DNS-énck bal felét a csak 79 és 85 Xbal helyeket tartalmazó mutáns DNS-ének jobb felé­vel egyesítve olyan módosított adenovírust nyerünk, amely csak a 79 és 85 géntérkép-koordinátáknál tar­talmaz Xbal helyeket. Az így kapott DNS-t Xbal-lal hasítva, majd újrakapcsolva olyan AE3 vírus-DNS-t kapunk, amelyből a 79 és 85 géntérkép-koordináták közé eső E3 régió törölve van, és helyébe egy egy­szerű Xbal klónozó hely van beépítve. A AE1AE3 vektort hasonló módon állíthatjuk elő, mindkét régió törlésével. Az 5. típusú adenovirus AE1, AE3 és AE1AE3 vektorainak előállításához hasonló módon megszer­keszthetjük a 4. és 7. típusú adenovírusok vektorait is. Például a 7. típusú adenovírusban az E3 régiót a 80,5 géntérkép-koordinátánál lévő Xbal hely és a 85 koordinátánál lévő EcoRl hely között töröljük. 6X sorozatba tartozó plazmidok (HBsAg és VP7 rotavirus számára) Szerkeszthetők olyan piazmidok, amelyekkel a hepatitis B felületi antigént kódoló DNS-ből az adeno­virus 2 késői promoter ellenirányú szála, majd az SV40 kapcsoló jelek beépíthetők. Ezek mindegyikét Xbal helyek határolják, az adenovirus AE1, AE3 vagy AE1E3 vektorokba való beépülés biztosítására. a) p6XH A 6XH plazmid az Ad2 fő késői promoterjének —400. bázispárjánál egy Xbal-kötőt tartalmaz, és az első adenovirus késői vezetőjének vége előtt 8 bázis­­párral, a + 33 bázispárnál egy EcoRl helyet tartal­maz. Ezt egy EcoRl kötő követi, a HBsAg ATG-jét megelőző 26. bázispárnál, majd egy 678 bázispárból álló lllisAg szekvencia követi, a 809. bázispárnál lévő másik EcoRl kötőig. Ezt követi az SV40 géntérképen a 2753-tól 2516. bázispárig terjedő SV40 szekvencia. Ezek a szekvenciák mind Xbal kötők segítségével il­leszkednek a pBR 322 nagy Bam Hl — EcoRl frag­­mensébe. c) Plazmid szekvencia bevitele a virális DNS vektorba és rekombináns adenovirus előállítása A promoter-idegen gén-terminátor kazetta adeno­­vírusba való bevitelét vagy az alábbiak szerint végez­zük. vagy in vivo rekombinációs módszert alkalma­zunk (lásd alább a részletes példát). A tisztított ade­novirus vektor DNS-t restrikciós endonukleázzal ha­sítjuk, majd borjúból lúgos foszfatázzal kezeljük az ön-kötődés megakadályozására. A plazmidból szár­mazó szekvenciákat a p6XH Xbal-lal való hasításával kapjuk. Ezeket azután az adenovirus vektor DNS-hez kötjük. Ezután vagy 293 sejteket [Graham és munka­társai, Gen. Virol., 86, 10 (1978)], HeLa sejteket, /agy Wi38 sejteket transzfektálunk a ligációs eleggyel, is agarral felülrétegezzük. 7—10 nap múlva a plakko­­kat kiválogatjuk és vírusraktárt készítünk. Expressziós vizsgálatok A hepatitis B felületi antigén kifejeződésének meg­állapítására háromféle vizsgálatot végzünk, az aláb­biak szerint. a) Indirekt immunfluoreszcencia A HBsAg-t DNS-szekvenciát tartalmazó rekombi­­náns AEI és AE3 vírus-készlet expressziójának kimu­tatására vagy egér mouoklonális antitesteket vagy nyúl antiszérumot használunk. Az ellenfestést kecske anti-egér vagy anti-nyúl FITC-vel végezzük. 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 3

Next

/
Oldalképek
Tartalom