193835. lajstromszámú szabadalom • Mikrobiológiai eljárás szerves vegyületek előállítására

génforrást 0,1—5%, előnyösen 0,5—2%, a só­kat szokásos koncentrációban, előnyösen 0,001-0,5% koncentrációban alkalmazzuk, ahol a százalékos értékek tömeg/térfogat érté­keket jelölnek. A habzásgátlót 0,5% koncent­rációban alkalmazzuk. A tápközeg sterilizá­lását 100 140°C-on, előnyösen 120-130°C-on végezzük. A szaporodó tenyészet pH-ját előnyösen mintegy 6 és mintegy 8,5, különösen 6,5 és 8,0 közötti értéken kell tartani. A pH túl erős csökkenését a savas közegben megakadályoz­hatjuk egy szerves vagy szervetlen bázis, elő­nyösen kalcium-karbonát adagolásával. Amint az a fermentációs technikában szokásos, auto­matikus pH-szabályozás is végezhető úgy, hogy steril szerves vagy szervetlen savat, pl. kénsavat vagy steril lúgot, pl. nátrium-hidr­­oxidot permetezünk időnként a tenyészoldat­­hoz. Célszerű biztosítani azt, hogy a mikroorga­nizmusok oxigénnel, valamint a tápanyagok­kal megfelelően érintkezésbe kerüljenek. Ez a szokásos módszerekkel, mint például rázás­sal vagy keveréssel elérhető. A tenyésztési hőmérséklet mintegy 16°C és mintegy 42°C között, előnyösen 24°C és 32°C között, különösen előnyösen 28°C körül van. A tenyésztés ideje széles határok között változhat, ebben például szerepe van a táp­közeg összetételének és a tenyésztési hőmér­sékletnek. A mindenkori optimális körülmé­nyeket mikrobiológiai területen jártas szak­ember könnyen meghatározhatja. Ügy találtuk, hogy a tenyészközegben fel­­szaporodó találmány szerinti vegyület maxi­mális koncentrációját a tenyésztés kezdetétől számított mintegy 1 — 7, előnyösen 1—4 nap alatt eléri. Mint általában a mikrobiológiai eljárások­nál, a tápközeg befertőződését el kell kerül­ni. Ennek érdekében megtesszük a szokásos intézkedéseket, így a tápközeg, tenyésztő edé­nyek, valamint a levegőztetéshez szükséges levegő sterilizálása. A berendezések sterili­zálása történhet gőzzel vagy száraz sterilizá­lással. Amennyiben a tenyésztés során nem kívánt mennyiségű hab képződik, a szokásos kémiai habzásgátlók adagolhatok, így például folyé­kony zsiradékok és olajok, olaj-víz-emulziók, paraffinok, hosszabb szénláncú alkoholok, pl. oktadekanol, szilikonolajok, polioxi-eti­­lén-, illetve polioxi-propilén-származékok. A habzást a szokásos mechanikai berendezések segítségével (amelyek pl. a centrifugális erőt használják ki) is megszüntethetek. A találmány szerinti vegyületeket a te­­nyészközegből az általában szokásos fiz lka i­­-kémiai módszerekkel lehet elválasztani, így extrakcíóval, kicsapással és/vagy kromatog­­ráfiával. Az elválasztott vegyületeket az em­lített módszerekkel tovább lehet tisztítani. Sok esetben a tisztítás nem szükséges, mert az adott esetben jelenlevő szennyezés a vegyü­let hatékonyságát nem befolyásolja károsan. 4 5 Annak megállapítását, hogy a fent emlí­tett izolálási és tisztítási műveletekkel kapott frakciók melyikében vannak a találmány sze­rinti vegyületek a legnagyobb koncentráció­ban jelen, előnyösen az antibiotikus aktivitás meghatározásával végezzük. Tesztorganiz­musként előnyösen Staphylococcus aureus 1756, Bac. subtílis ATCC 6633 és Escherichia coli 14 használható. A találmány szerinti vegyületek izolálása és tisztítása vizes tápközeg esetén úgy végez­hető, hogy miután a vegyületeket a tenyész­tőközeg maradékában feldúsítottuk, a tenyész­­közeg szürletét és a micéliumokat a szokásos módszerekkel (pl. centrifugálással) elválaszt­juk. A találmány szerinti vegyületek a tenyész­­közeg szürletéből a szokásos extrakciós, ki­­csapásos és/vagy kromatográfiás eljárások­kal izolálhatok és adott esetben tisztíthatok. A kromatográfiát oszlopkromatográfia for­májában végezhetjük. Adszorpciós szerként a szokásos szervetlen vagy szerves adszorp­ciós szerek alkalmazhatók, így alumínium­­-oxid, szilikagél, magnézium-szilíkát, aktív­szén, cellulóz, cellulózszármazékok, műgyan­ták, mint pl. poliamidok, pl. acetilezett poli­­amidok vagy dextrángélek. Futtatószerként különböző oldószerek vagy oldószerelegyek alkalmazhatók, amelyekben a találmány sze­rinti vegyületek oldhatók. Előnyösen metanolt vagy kloroform és metanol elegyét (pl. 1:1 térfogatarányban) alkalmazzuk. A találmány szerinti vegyületek elválasztá­sát előnyösen kromatográfiás eljárással vé­gezzük, pl. nem- specifikus adszorpcióval hid­­rofób szorbenseken vagy géldiffuziós kroma­­tográfiával, amelyek a vízben rosszul oldódó természetes anyagok tisztításának ismert módszerei. A találmány szerinti vegyületek kereske­delmi méretekben történő előállítását előnyö­sen hidrofób hordozógyantán történő adszorp­cióval, majd azt követő deszorpcióval végez­zük. Hidrofób hordozógyantaként használ­ható például Lewapol, Bayer Ag. gyártmánya. A deszorpciót például rövidszénláncú alifás alkoholokkal végezhetjük, előnyös a meta­nol vagy az etanol alkalmazása. • Az így előtisztított frakciót a szokásos módszerekkel tovább tisztítjuk. Ezt előnyösen géldiffuziós eljárással végezzük. A Sephadex LH-20R felhasználásával végzett kromatográ­­fia megfelelően végbemegy. Az így nyert ter­mék tisztasága általában nagyobb, mint 50%. A találmány szerinti vegyületeket előnyö­sen a következőképpen izoláljuk és tisztítjuk: A micéliumokat a tenyészközegből előnyö­sen centrifugálással elválasztjuk, és vízzel elegyedő oldószerrel többször előnyösen két­szer extraháljuk. Oldószerként rövidszénláncú alkoholok, például etanol vagy izopropanol, valamint ketonok, ezek közül különösen ace­­ton alkalmazható. A vizes szerves oldószeres oldatot vákuumban, pl. a tenyészközeg mint-6 193835 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65

Next

/
Oldalképek
Tartalom