193585. lajstromszámú szabadalom • Eljárás mikroorganizmusok és makroorganizmusok sejtkultúráinak tenyésztésére alkalmas szilárd táptalajok előállítására

vizes nátrium-klorid oldatot, Ringer-Locke-, Earl-, Hanks-féle oldatot (összetételüket lásd: D. Pol: „Sejt- és szövetkultúrák", Medgiz kiadó, 1963, 96. old.), ill. 5%-os vizes glükóz­oldatot és folyékony tápközegként Hottinger­­-féle tripszin emésztőoldatot, Marten-féle húsleves tápközeget (összetételüket lásd: J. A. Kozlov: „Tápközegek az orvosi mikro­biológiában", Medgiz kiadó, 1950, 51-52. és 63. oldal), hús-pepton-húsleves tápközeget, pepton-víz-oldatot, kazeinhidrolizátumot, só­­keverékes- vagy 199-jelü tápközeget (össze­tételüket lásd: D. Pol: „Sejt- és szövetkultú­rák", Medgiz kiadó, 1963, 103. oldal) alkal­mazunk. Gonococcusok tenyésztése esetén a fizioló­giás oldatban megduzzasztott poliakrilamid­­-gélt célszerűen folyékony tápközegben kezel­jük, amely tápközeg inaktivált, sterilizált em­beri vérszérum és emberi vérből nyert vér­­készítmény, plazmol 1:1 arányú keveréke. Az ily módon előállított,szilárd táptalaj a gono­­coccus-kultúrák igen jó minőségű tenyészté­sét biztosítja, morfológiai, színezékkultúra és más biológiai tulajdonságai megtartása mellett. E szilárd táptalaj alkalmazásával növelhető a gonorrhea kimutatásának és bak­teriológiai diagnosztizálhatóságának lehető­sége, különösen annak krónikus és torpid (renyhe) lefutású formáinak esetében. E szi­lárd táptalaj előállítási ideje más, a gonococ­cusok tenyésztésére alkalmas, szilárd táptala­jok (pl. aszcites hús-pepton-agar, Baily-agar (összetételét lásd J. A. Kozlov fentiekben idé­zett könyve, 63. old.), szérum-agar) előál­lítási idejéhez viszonyítva jelentősen rövidebb és számos igen költséges komponens alkal­mazása kiküszöbölhető. A találmány szerinti, szilárd táptalajok felhasználási területének kiszélesítése érdeké­ben a poliakrilamid-gélt a kopolimerizáció során két lapos csíkban is kialakíthatjuk. Ezek közül az egyiken üregeket képezünk ki koaxi­ális vagy sakktábla-szerű elrendezésben, majd ezeket a csíkokat itatjuk át 15,0—20,0 : :0,019—0,132 tömegarányban összekevert akrilamid és N,N’-metilén-bisz-akrilamid ol­datokkal,és úgy hozzuk őket össze, hogy zárt üregek alakuljanak ki a mikroorganizmusok és sejtkultúrák tenyésztése számára. Az egy­másra nelyezett csíkokat addig tartjuk így, amíg egységes blokk alakul ki, majd olyan részekre választjuk szét, amelyek mindegyike legalább egy üreget foglal magába. Az így kapott darabokat fiziológiás oldatban duz­­zasztjuk, majd folyékony tápközeggel kezel­jük. Az ily módon előállított, zárt üregeket tar­talmazó darabok mint diffúziós kamrák mű­ködnek, és a poliakrilamid-gél előnyös tulaj­donságainak következtében jó szilárdságot, elasztikusságot és hőállóságot mutatnak. Könnyen reprodukálhatók, hosszú ideig tárol­hatók, sterilizálhatok. Ez a diffúziós kamra formájában előállított,szilárd táptalaj széles­3 körűen alkalmazható in vivo és in vitro fel­­használás során egyaránt, és valamely orga­nizmusba, például állatok hasüregébe való transzplantációjuk során atraumatikusak. Az organizmus számára inertek, amely tény a kamraüregbe bevitt objektumok és a külön­böző környezeti faktorok kölcsönhatásának vizsgálata során igen nagy fontosságú. A poliakrilamid-gél előnyös tulajdonságai, nak következtében a belőle előállított diffú­ziós kamrák igen jó diffúziós tulajdonságo­kat mutatnak, amely lehetővé teszi, hogy a kamrák üregében elhelyezett vizsgálandó sejt­­kultúrához a szükséges táp- és egyéb anyagok eljussanak, és otKa kívánt hatásukat kifejt­sék. További előnye ezen objektumoknak, hogy transzparensek, így a vizsgálandó sejtkultú­rák, ill. mikroorganizmusok mikroszkopikus úton megfigyelhetők. Mikroorganizmusok tenyésztésére alkal­mas, szilárd táptalajt a következőképpen ké­szítünk. Először elkészítjük a reakciókeveré­ket, amely a kiindulási monomereket fizioló­giás oldatban tartalmazza, és amelyben az akrilamid és N.N’-metilén-bisz-akrilamid tö­megaránya 15,0—20,0 : 0,019—0,132. Fiziológiás oldatként a monomerkeverék­hez 4:1—7, ill. I tömegarányban 0,85%-os vagy 0,9%-os nátrium-klorid oldatot, 5%-os vizes glükóz oldatot, Ringer-Locke-, Hanks­­vagy Earl-oldatot alkalmazunk. A kiindulási monomerkeverék és a fiziológiás oldat egy­máshoz viszonyított súlyarányát változtatva, különböző típusú poliakrilamid-géleket nye­rünk. Ezek mindegyike az ismert géleknél elasztikusabb, feldolgozásuk egyszerűbb és igen jómínőségű táptalajt szolgáltatnak. A kiindulási monomerek kopolimerizáció­­ját végezhetjük melegítéssel vagy anélkül, ismert iniciátorok alkalmazása mellett. Az alkalmazott reaktor anyaga lehet üveg, fém, kerámia vagy műanyag. A kopolimerizációs reakció során a képződő poliakrilamid-gél felvesszi a reaktor alakját. A kopolimerizáció után a képződött poliakrilamid-gélt fizioló­giás oldattal átmossuk, majd fiziológiás ol­datban tömegének 2,8—4,5-szörösére duz­­zasztjuk, majd a kapott gélt folyékony táp­talajjal kezeljük. Erre a célra alkalmazha­tunk tripszin emésztési Hottinger-féle oldatot, Marten-húslevest, hús-pepton-husleves olda­tot, pepton-víz oldatot, kazeinhidrolizátumot, sókeverékes és 199 jelű táptalajt. A találmány szerinti eljárás egy másik kiviteli alakjánál a fiziológiás oldattal átmo­sott poliakrilamid-gélt valamely fentemlített, folyékony tápközegben közvetlenül duzzaszt­­juk tömegének 2,5—3,5-szörösére, majd a meg­duzzadt poliakrilamid-gélt sterilizáljuk. Az így nyert szilárd tápközeg felhasználására kész és előnye, hogy a biomassza-kitermelés igen jó. Az alkalmazásra kerülő folyékony tápkö­zeg összetétele a mikroorganizmusok konk­4 3 193585 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65

Next

/
Oldalképek
Tartalom