169971. lajstromszámú szabadalom • Eljárás koleszterinoxidáz előállítására mikroorganizmusokból

7 169971 8 szénforrásként acetátot alkalmazunk, amikor ko­leszterin-szénforrásra térünk át, az ecetsavat ásványi savval helyettesítjük. Ebben a második növekedési stádiumban előnyösen sósavat használunk a pH-ér­ték szabályozására. Különösen célszerűnek bizonyult egy kétfoko­zatú, azaz két tartályban végrehajtott folyamatos tenyésztés, mivel ilyen módon a biomasszára vonat­koztatva optimális koleszterinoxidáz-aktivitások ér­hetők el. Ily módon sikerült 30 E/g szárazanyag­-aktivitást elérnünk. Ennél a kétlépcsős folyamatos tenyésztési eljárásnál a mikroorganizmusok átlagos tartózkodási idejét a két fokozatban célszerűen úgy állítjuk be, hogy az a második fokozatban 4—8-szorosa az első fokozatának. Ezt egyszerűen úgy valósíthatjuk meg, hogy állandó átfolyási se­besség mellett a második fokozat tartályának tér­fogata 4-8-szor nagyobb, mint az első fokozat tartályáé. A mindenkori legcélszerűbb tartózkodási idő mégis bizonyos mértékig ingadozik az egyes mikroorganizmusoknál, és speciális mikroorganiz­musokhoz célszerű azt előkísérletek útján meghat­tározni. Általában kedvezőnek bizonyul két sorba­kapcsolt tartályt alkalmazni, 0,25-0,30 térfogat/óra átfolyási sebességgel az első, és 0,055-0,065 tér­fogat/óra átfolyási sebességgel a második tartály­ban, a koleszterin-emulzió hozzáadása a második tartályban történik. A következő példák a találmány további meg­világítására szolgálnak. 1. példa 2 liter táptalajt - amely 0,5 súly% kazein pep­ton, 0,05súly% K2 HP0 4 0,2 súly% NH 4 H 2 P0 4 , 0,02 súly% magnéziumszulfát-heptahidrát, nyomnyi mennyiségű vasklorid és kalciumklorid káliumhidr­oxiddal pH 7,5-re beállított vizes oldata,- rázólom­bikban beoltjuk 200 ml, Nocardia erythropolis ATCC 25544 tenyészet inokulummal, és mágneses keverővel történő keveréssel erősen levegőztetjük. Az inokulumot a következőképpen állítjuk elő: 4C -os hűtőszekrényben tárolt ferde-agar mikro­organizmus-tenyészetet (standard 1, Merck, No. 7881) 50 ml bouillon-ra (standard 1, Merck, No. 7882) oltunk le, és a folyékony tenyészetet rázó­készülékben inkubáljuk, 10 és 24 óra között idő­tartamban, ami a tenyészet növekedésétől függ. Az inkubálást az optikai sűrűség mérésével követjük, és addig folytatjuk, míg az oldatból kivett minta 1 :20 arányú hígításban 0,400 értéket ér el (400-600 mju hullámhossztartományban). Ezután ezt a tenyészetet használjuk egy 200 ml-es, ugyan­ilyen táptalajt tartalmazó lombik beoltására, mi­koris a beoltást 20 ml tenyészettel végezzük, és az inkubálást ismét a 0,400 értékű optikai sűrűség eléréséig folytatjuk. A logaritmikus növekedési szakasz megindulása­kor - ami a zavarosság fellépésének fokozódásáról ismerhető fel - nedves őrléssel előállított sterilezett vizes koleszterin-szuszpenziót adunk hozzá folya­matosan a további tenyésztés folyamán oly módon, hogy 20 órán belül összesen 10 g koleszterint mé­rünk be a lombikba. A koleszterin nedves őrlése azért előnyös, mert az indukáló hatás finoman eloszlatott formában lényegesen jobb. 5 Az utolsó hozzáadás után 5 órával a sejtmasszát centrifugálással elválasztjuk, és így 4g baktérium­-szárazanyagot kapunk. Ultrahangos feltárás után 3E/g koleszterinoxidázt nyerünk. 1 E az enzim 10 azon mennyiségé, amely 1 perc alatt ljiM kolesz­terint oxidál, azaz 1/*M H2 0 2 -t képez. Az enzimaktivitás mérése a következőképpen történik: 15 2,31 ml pH értékű 0,5 mólos foszfátpufferhez, mely 1 mg/100 ml mennyiségnek megfelelő 2,2'-azi­no -d i-(3-etil-benztiázolin-szulfonát)-ot tartalmaz, 0,05 ml 0,37%-os butanolos koleszterinoldatot, va­lamint 0,6 ml butanolt, 0,02 ml (5 E-nek meg-20 felelő) peroxidázt (Boelvinges Mannh. gyártmány) adunk és a reakciót a megfelelő 0,02 ml térfogatú baktériumextraktummal indítjuk be. (a baktérium­extraktum előállítását lásd a 6. példa 1. bekez­désében). Az extinkcióváltozást percenként mérjük, 25 436 nm hullámhosszon, és a keletkezett H2 0 2 -ot standard görbével történő összehasonlítással állapít­juk meg. A reakció hőmérséklete 37 C . A további példákban az inokulum előállítása és 30 az enzim aktivitás mérése a fentiekben megadottak szerint történik. 2. példa 35 Alkalmas tenyésztőedényben az 1. példában leírt táptalaj 15 literét beoltjuk 0,5 liter jól kifejlett Nocardia erythropolis ATCC 17895 előtenyészettel 0,7 l/l/perc levegőztetés közben. Rögtön kezdetben 40 hozzáadunk 0,05% koleszterint. A logaritmikus nö­vekedés megindulásától kezdve (ennek kritériuma azonos az 1. példában leírttal) a további tenyésztés folyamán hozzáadunk sterilezett koleszterin-szusz­penziót úgyhogy 15 órás tenyésztési idő alatt 45 összesen 50 g koleszterint viszünk be a fermen­torba. 40 g baktérium-masszát kapunk, melyből ult­rahangos feltárással 7,1 E/g koleszterinoxidázt nye­rünk. 3. példa A 2. példában leírtak szerint Nocardia erythro­polis ATCC 25544 törzset 60 liter munkatérfogat-55 ban tenyésztünk. 25 óra múlva elkezdünk a te­nyésztőedénybe friss táptalajt adagolni és azonos mértékben kiveszünk a benőtt tápoldatból. A hígítás foka (átfolyási sebesség per munkatérfogat) eköz­ben 0,04. Egyidejűleg koleszterin-szuszpenziót ada-60 gólunk be a fermentorba, úgyhogy óránként 3g koleszterint mérünk be. Ilyen módon folyamatos tenyésztéssel 1,2-1,5 g/liter baktérium-száraz­anyagot kapunk, ugyanazzal a fajlagos aktivitással, mint amit a 2. példában leírt szakaszos eljárással 65 kapunk. 4

Next

/
Oldalképek
Tartalom