168378. lajstromszámú szabadalom • Eljárás orgotein kromotográfiás elkülönítésére egy lépésben

13 168378 14 sos szűrőn szűrjük. így üledékmentes oldatot kapunk. A kapott tiszta oldatot' közvetlenül felvisszük DEAE-cellulózt tartalmazó ioncserélő oszlopra (mint­egy 40 g súlyú, méretei: 2,5 cm X40 cm, a DEAE-cel­lulóz típusszáma DE-23, szálas, gyártó cége: W. R. 5 Balston, Ltd., Hardstone, Kent, Nagy-Britannia). Az oszlopot először egy liter 0,005 mólos, pH 6 értékű foszfát-pufferrel mossuk — az oszlop átfolyási sebes­sége egyébként 200 ml/óra —, majd ugyanezen puffer­ból 4 literrel mossuk, azonban a pufferhez 0-tól lassan 10 7,5X10~~2 mólra növekvő mennyiségben nátrium­kloridot adagolunk. Az eluátum A2 6s és A 280 abszorpcióinak mérése és az eluátum réz- és cinktar­talmának atomabszorpciós spektrofotométerrel (Mo­del 353 számú típus, gyártó cég: Instrumentation 15 Laboratories, Inc., Lexington, Mass., Amerikai Egye­sült Államok) végzett állandó megfigyelése útján követjük a folyamatot. 1 liter nátrium-kloridot nem tartalmazó és 75 ml, nátrium-kloridot vagy kálium­kloridot növekvő mennyiségben tartalmazó eluátum 20 összegyűjtése után, amikor a molaritás elérte a mint­egy 0,018 mól értéket, az A26s és az A 28 o abszorp­ció-értékek alacsony értékre esnek, míg a réz- és cinktartalom hirtelen megnő. Az eluátumot ezután addig a pontig külön gyűjtjük, míg a réztartalom 25 megint a minimumra csökken és a molaritás eléri a mintegy 2,8X 10-2 mól értéket. Az így kapott 550 ml eluátum 240 mg kedvező tisztasági fokú orgoteint tartalmaz. Minél kisebbre választjuk a frakció térfo­gatát, annál nagyobb lesz az elkülönített orgotein 30 tisztasági foka, de viszont annál kisebb lesz az orgotein termelési hányada. Az így végzett eluálás a 2. ábrán követhető. Igen tiszta orgoteint tartalmaz az eluátum, ha ionerőssége mintegy 0,022 mól ( az összes eluátum- 35 mennyiség 950 ml-jénél). Ezen a ponton mind a réz, mind a cink abszorpciós görbéjén csúcs mutatkozik. Az eluátum 1300 ml-nyi frakciójának 750 ml, 0,04 ß) vezetőképességű vízzel szemben végzett dialízise, majd mikropórusos szűrőn (Millipore típusú, 0,22 /u) 40 végzett szűrés és steril körülmények között végzett liofilizálás, előnyösen a számított mennyiségű orgote­in mennyiségére vonatkoztatva kétszeres mennyiségű szacharózzal végzett összekeverés után, teljesen aktív, antigénként nem ható, injektálható orgoteint kapunk, 45 melynek minősége összehasonlítható a jelenleg az állatorvosi praxis céljaira kapható készítményekével. Az oszlop mosása az orgotein eluálása előtt a nem adszorbeálódott és a könnyen deszorbeálható fehér­jék eltávolítására végezhető konstans ionerősségű vagy 50 lépcsőzetesen vagy folyamatosan növekvő ionerősségű pufferrel, azaz az oszlop eluálható a mintegy 0,012—0,015 mól ionerősségű, fentiekben ismertetett pufferrel, míg az A265 és az A 2 so abszorpciós értékek a minimumot elérik, majd az orgotein eluál- 55 ható konstans, azaz mintegy 0,02 mól vagy lépcsőze­tesen vagy folyamatosan növekvő ionerősségű, azaz mintegy 0,018 mól és 0,028 mól közötti ionerősségű pufferrel. Az oszlop a még adszorbeálódva maradt fehérjéktől megtisztítható mintegy 0,1 mólig vagy 60 annál nagyobb értékig növekvő ionerősségű eluáló­szerrel. Az 1. példában ismertetett módon eljárva hasonló eredményeket kapunk, ha TEAE-cellulózt vagy dietil- 65 amino-etil-csoportokat tartalmazó térhálósított dext­rán gyantát (DEAE-Sephadex) használunk. Az 1. példában ismertetett módon eljárva hasonló eredményeket kapunk, ha kiindulási anyagként a szarvasmarha agyából, veséjéből, lépjéből, tüdejéből, magburkából, hasnyálmirigyéből, csecsemőmirigyé­ből, beleiből és izomszöveteiből, illetve malacok, lovak, juhok, vagy tyúkok hasonló szöveteiből elkülö­nített oldható fehérjéket használunk. 2. példa Orgotein elkülönítésére szarvasmarhamájból Az 1. példában ismertetett módon járunk el DE-52 típusú, mikroszemcsézett DEAE-cellulózt használva ioncserélő gyantaként. E gyanta előnye, hogy lehető­vé teszi az orgotein élesebb elkülönítését a többi fehérjétől, hátránya viszont, hogy alacsony az átfolyá­si sebesség használata esetén. Az orgotein frakció elkülönítéséhez használt eluáló gradiens 0,020 és 0,025 mól között mozog (85-110. számú mintavevő csövecskék, mindegyikük térfogata 10 ml), és így jó tisztasági fok orgoteinből 165 mg kapható. Előnyösen a frakciót 0,020 és 0,023 mól között különítjük el (85—100. számú mintavevő csövecskék) hisz a szűkebb frakció nagyobb tisztaságú orgoteint eredményez jelentéktelen orgotein vesztes­ség mellett. Még szűkebb frakció elkülönítése esetén (88—92. számú mintavevő csövecskék) még tisztább orgotein kapható csökkent termelési hányaddal. 3. példa Szarvasmarhamájból elkülönített előtisztított orge­tin Adott esetben az 1. példában ismertetett módon májból elkülönített oldható fehérjék előtisztítási frak­cionálásának vethetők alá ammónium-szulfáttal vég­zett kezelés útján. A mintegy 1600 ml térfogatú, 6,5—6,8 pH-értékét, az extraktum centrifugálása során kapott felülúszó fázis pH-értékű 3 n ammónium-hidr­oxiddal 7,5-re beállítjuk, majd 25 g/100 ml folyadék arányban szobahőmérsékleten keverés közben az ol­dathoz szilárd halmazállapotú ammónium-szulfátot adagolunk, így az oldat 40%-ban telített lesz. Közben a pH-értékét 7,5-en tartjuk, majd további 30 percen át keverjük az elegyet szobahőmérsékleten. A nagy mennyiségű csapadékot tartalmazó elegyet ezután centrifugáljuk (20 000 g) 0 C°-on két órán át, majd a felülúszó fázist dekán táljuk, és 4 C°-on pH 5,0 értékre titráljuk 10%-os kénsawal. Ezután az oldat­hoz 22 vagy 35 g/100 ml oldatarányban szilárd ammónium-szulfátot adagolunk, így az növekvő mértékben, vagyis 70%-ban vagy 80%-ban telített lesz. A nagy mennyiségű csapadékot tartalmazó elegyet ezután 0 C°-on mintegy 1 órán át centrifugáljuk (20 000 g). A kapott felülúszó fázist elöntjük, míg a csapadé­kot minimális mennyiségű, azaz 100 ml ionmentes vízben újra oldjuk. A kapott oldatot pH 6,0 értékű 0,005 mólos foszfát-pufferré dializáljuk, míg az nem tartalmaz szulfát-ionokat (körülbelül hatszor 4 liter pufferére van szükség). A kapott oldatot centrifugálás­sal (20 000 g) 0 C°-on tisztítjuk, majd a kapott felülúszó fázis pH értékét 6,0-ra beállítjuk. Az így kapott oldat azután az 1. példában ismertetett módon 7

Next

/
Oldalképek
Tartalom