163848. lajstromszámú szabadalom • Eljárás prosztaglandinok előállítására

3 163848 4 Találmányunk tárgya eljárás prosztaglandinok előállítására alifás észterből lipáz enzimekkel (EC. 3.1.1. alosztály). Elvégezhetjük az eljárást állati vagy gomba eredetű lipáz­zal. Előnyösen alkalmazhatunk homogén, kereskedelmi lipáz készítményeket, melyekkel a prosztaglandionk metilészterei vizes szuszpenzióban kvantitatív elbonthatok. Találmányunk szerint különösen célszerűnek találtuk az alábbi enzimek alkalmazását: mikróbiális eredetű, 30-35 Desnuelle egység fajlagos aktivitású Lipase „Saiken" A (Nagase) (EC.3.1.1.3.), vagy állati eredetű, 25 Desnuelle egység fajlagos aktivitású pancreas lipáz. (EC. 3.1.1.3). 1 Desnuelle egység az enzim fajlagos aktivitása 1 mg-ra vonatkoztatva, ha 1 mg enzim pH-7,4 értéken 1 mikromól olajsavat szabadít fel 40%-os pálmaolaj szuszpenzióból 1 perc alatt (P. Desnuelle. A duances in Enzymology, 23j 129, 1961). Az alábbi kísérletet végeztük számos észteráz hatású enzimmel, melyek részben a találmány szerinti eljárás során alkalmazott lipáz típusú enzimek, részben pedi^. a 1.937.678. sz. NSZK-beli közzétételi iratban fellelhető enzimek: 10 mg (dl) PGE, - metilészter ; és 10 mg különböző eredetű (a 3. minta esetében enzimrendszert) enzimet tar­talmazó mintákat 1,5%-os etanolos (pH=7,5) pufferben 125 percig 25° C-on nitrogén atmoszférában reagáltattunk. A minták jelzése: 1.) Bacillus subtilis neutrális proteáz, 2.) Bacillus subtilis alkalikus proteáz, 3.) Streptomyces fradiae proteáz, 4.) Rhizópus extracelluláris lipáz, 5.) Sertés pancreas lipáz, 6.) Nagase „Saiken" A lipáz, 7.) Kimotripszin, 8.) minta enzim nélkül. Azt találtuk, hogy az alkalmazott enzimek közül csak a lipázok hatásosak) l.ábra4,5,6 sz. minta, PGE,-metil-észter Rf=0,4: PGE, -szabad sav Rf=0,19), holott irodalmi tény,hogy mikróbiális eredetű proteázok rendelkeznek észteráz akti­vitással (The Enzymes, ed. P. Boyer and Myrb'áck, il. kötet, Proteolytic Fn7vmes). Az elbontandó észter az I., II., III., IV., általános képletek valamelyikével jellemezhető, mely képletekben R jelentése -(CH2 ) é -COOR, gyök, vagy -CH 2 -(CH=CH)-(CH2 ) 3 -COOR, gyök és térállása vagy a, vagy 0, és R, jelentése 1-4 szénatomot tartalmazó alkilcsoport. Az I. képlethez tartozó vegyületek elnevezése PGE; ha R jelentése -(CH,)4 -COOR,, akkor PGE,, ha -CH 2 -(CH=CH)-(CH3 ),- COOR,, akkor PGE,. Hasonló­képpen a (II) képletű vegyületek a PGA, és PGA,, a (III) képletű vegyületek a PGB, és PGB,, a (IV) képletű vegyü­letek a PGF,, és PGF,( ül. az utóbbi a és <J változatai a 9-)H térállása szerint) -, néven szerepelnek a továbbiakban. A prosztaglandinok alifás észtereit kémiai totálszintézissel állítjuk elő. Az intermedierek és végtermékek azonosítása vékonyrétegkromatográfiával, tömegspektrográfiás-, infra-, NMR-, gázkromatográfiás- mérésekkel történik. Ezen mérések eredményei az irodalomban már ismertetett adatokkal azonosak. Eljárásunkat előnyösen az alábbiak , szerint fogana­tosítjuk: Az anyagát vizes szuszpenzióban pH kontroll alatt szoba­hőmérsékleten nitrogénáramban vagy argonáramban kar­boxiészter-hidroláz hatású enzimkészítménnyel hidrolizáljuk. A hidrolízist vékonyrétegkromatográfiával, illetve automatikus lúgadagolással követjük. A hidrolízis befejezése után a reakcióelegyet vízzel nem elegyedő oldószerrel extraháljuk a szennyezések eltávo­lítására. A vizes fázist kén savval pH = 3,5-3,0- értékre savanyítjuk, és az így felszabadított prosztaglandin szabad savakat vízzel nem elegyedő szerves oldószerben rázzuk át. A szerves fázist víztelenítjük, bepároljuk és a maradékot meg­felelő oldószerből átkristályosítjuk. Közismert, hogy a PGE- származékok-vizes oldatban csak pH=3 és pH=8 között stabüisak, pH=2 alatt PGA es pH=8 fölött irreverzibilisen PGB származékokká alakulnak át. Ezért az észterhidrolízist az adott pH határokon belül, ül. gyakor­e latilag semleges pH mellett kell végezni. A találmány tárgyát képező eljárást célszerűen az ismert un. pH-sztátban végezzük el, melynél egy érzékeny pH mérő két elektródja a reakcióedénybe merül, melyben a hidrolízist végezzük. A szubsztrátum és az enzim vizes oldatának 10 bemérése után automatikus bürettából megfelelő töménységű nátriumhidroxiddal a pH-t tetszés szerinti pH értékre állítjuk, (pl. pH = 7,40). Ezután a gép automatikusan - a hidrolízis Ütemének megfelelően - a felszabaduló savat közömbösíti, úgy, hogy a pH-t az előre beállított (pH = 7,40) értéken tartja. A lúgfogyast az idő függvényében irómű regisztrálja. A hidrolízis befejezését az automatikus lúgadagolás megszűnése jelzi. Az elméleti lúgfogyástól való eltérés - a prosz­taglandinok pK-értékének figyelembevételével - az anyag 2o tisztaságát is jelzi az adott reakciókörülmények közt. Az eljárás a szubsztrátumok hatóanyag-tisztaságának meg­állapítására is alkalmazható. A hidrolízis pH-értékének megválasztásánál figvelembe vesszük az enzim működésének pH - optimumát, a prosz-25 tagiandin- származék pK értékét és pH stabilitását. Eljárásunk preparatív . jellegű felhasználás mellett előnyösen alkalmazható pl. prosztaglandinok elválasztására is. A prosztaglandinok anyagkeverékét ismert eljárás szerint diazometánnal metilezzük, majd a prosztaglandin-metü-30 észtereket kromatografáljuk [J. Chromatog. 48/1970/ 542-544] és az egyes metiésztereket enzimes eljárásunkkal kvantitatíve savvá alakítjuk vissza. Az eljárás során az enzimet megfelelő szilárd hordozón is alkalmazhatjuk, mikoris a folyamat folytonossá tehető az 35 enzim regenerálásával. Szüárd enzimkészítmények néhány előállítási lehetősége: -a) diazotált poliaminostirollal térhálósítást végzünk; b) CM-Cellulose- hoz, vagy CM-Sephadex-hcz kapcsoljuk az enzimet, úgy, hogy a cellulóz-származékot előzőleg 40 savaziddá alakítjuk; c) poliakrilamid gél kapszulákba zárjuk be az enzimet. -Eljárásunk részleteit a példákban ismertetjük: 45 Példák 1) Az alábbi két oldatot készítjük elő: A) 20 mg (5,4.10"s mol) természetes 1-PGE, metilésztert 60 (melyet természetes 1-PGL,- bői diazometanos reakció újtán kaptunk) feloldunk 0,4 ml 95%-os etanolban és 15 ml desztillált vizet adunk hozzá. Az emulziót óvatosan pH 7,40 értékre állítjuk és 15 percig nitrogént buborékol­tatunk át rajta (az elnyelt széndioxid kiűzésére. 56 B) 20 mg Nagase „Saiken" Lipaze A-t (melynek aktuális aktivitása 650 Desnvelle egység) feloldunk 5 ml desztillált vízben, a pH-t 7,40 értékre állítjuk. 30 percig kevertetjük szobahőmérsékleten. A hidrolízist 0,01 n nátriumhidroxiddal követjük pH -60 7,40-en, az A és B oldatot pH-sztát rendszerbe helyezve nitrogén-áramban. 25+1 C°-on. A reakció lefutását a lúgfogyás befejeződése illetve az elméleti lúgfogyás meg­közelítése jelzi. Vékonyrétegkromatográfiásan, - az automa­tikus lúgadagolás leállása után, - észternyomok nem mutat-65 hatók ki. Ez egyben a hidrolízis végét is jelenti. A lúgfogyás: 5.3 ml 0,01 n nátriumhidroxid. A PGE,-sav pK értékét figyelembevéve (elméleti fogyás 5.4 ml) az elért hidrolízis hatásfoka 98%. Reakcióidő: 30 perc. A reakció lefutása után az elegyet 0-5 C° közé hűtjük és 70 0,1 n kensawal a pH-t 3,5 értékre állítjuk, ezután hideg etilacetáttal többször kirázzuk. Az etilacetátos fázist víz­telenítjük, csökkentett nyomáson bepároljuk, a kivált kris­tályokat etilacetát-hexán keverékéből átkristályosítjuk. A kristályokat szárítjuk. Op: 114-115 C. 18,5 mg PGE,-savat 75 kapunk. Termelés: 92,5%. 2

Next

/
Oldalképek
Tartalom