154046. lajstromszámú szabadalom • Eljárás prazinomicin előállítására

154046 Paradiesampaszta — zabliszt -^agáron a légi mioélium nedvzöld. A fonákja sárgászöld N+PieEs. Elesatő — malátakivoinatTagaron a légi mi­célium nedvzöld, a fonákja krémsárga. Oldható pigmentek nem képződnek. Szintetikus sós keményítős agáron a légi mi­oéliuim fűzöld, idővel sötét szürkészöldre válto­zik, a fonákja vörösesbarna. Oldható pigmen­tek nem képződnek. Á mikroorganizmus általános jellegzetességei a következők:: a spóra színe zöld, a spóratartók sarló alakúak: vagy primitív spirálisok, ós nem kromogén proteines táptalajon. E jeltegzetessé­gek névién Waksman viridus V sorozatába tar­tozik. A prazinomiidnnek (és valamennyi összetevő­jének) széleskörű aktivitása van granihpozitív baktériumokkal és Mycobacterium tuberculosis­sal szemben, és korlátozottan aktív gram-nega­tív baktériumokkal szemben. Az antibiotikumok termelésiére a mikroorga­nizmust 215 C°-on alámerített aerob viszonyok között vizes táptalajon asszimilálható szénihid­rát és nitrogén forrás. jelenlétében tenyésztjük. A fermentációt kb. I1&8 óra (hosszat folytatjuk, ennek az időnek: ,& végén az antibiotikumok ki­alakultak. A fermentáció befejeztével a prazino-micint metanollal extraháljuk a cmioéliumból vagy elő­nyösen a teljes fermentációs közegből, beállítva a közeg pIH-ját sósavval kb. 1,5'—3,0-ra eltávo­lítva az összes szilárd anyagot szűréssel és extrahálva a szűrőlepényt metanollal. A metanolos kivonatoikat 7,0 pH-ra semlege­sítjük, és vákuumban bepároljuk vizes szusz­penzióvá. A vizes szuszpenziót ásványi savval kezelve 1,5 pH-ra állítjuk be, majd kloro­formmal vagy butanollal extraháljuk. Ezután a. szerves fázist vízmentes nátriumszulfát fö­lött megszárítjuk, és kiis térfogatúra koncent­ráljuk. A koncentrátutmot 3—10 térfogat ace­bonnal hígítjuk, mire a nyers antibiotikum ki­csapódik. A nyers prazinomi-cin tovább tisztítható desz­tillált vízben :szuszipendálva és a pH-ját nát­riumhidroxid hozzáadásával kb. 8,5-re beállít­va. A bázikus vizes oldatot n-butanollal extra­háljuk a semleges anyag eltávolítása céljából. A vizes fázist sósavval megsavanyítva 1,5 pH-ra áHítjuk be, és n-butanollal extraháljuk. A butanolos kivonatot vákuumban bepárolva sö­tétbarna amorf terméket kapunk. A nyers prazinomicin előnyösen megtisztít­ható olymódon, hogy tízszeres mennyiségű víz­ben Sizuszpendóljuik, és a pH-ját nátriumhid­roxid hozzáadáséval kb. 8,5-re állítjuk be. A lúgos vizes oldatot n-butanollal mossuk a sem­leges anyag eltávolítására. A vizes fázist be­állítjuk 5,0 pHnra, és ismét mossuk n-butanol­lal. Eziután a vizes fázist 1,5—2|,0 pH-ra állít­juk be, és n-butanollal extraháljuk. A butano­los kivonatot nátriumíhidro'xiddal közÖTnbösít­jük, és a keveréket szárazra pároljuk. Ilymó­don a szabad savat kapjuk, és a nátriumiono­kat a nátriumsó vizes oldatának erős savas ionkicserélő gyantával való kezelése útján tá­volítjuk el. Az öt összetevőt az antibiotikumkeverékböl 5 nitrogénatrnoszféráiban végrehajtott ellenáramú megosztással vagy papírkromatográfiai úton vá­lasztjuk el. '"> találmányt a következő példákon szemlél­tetjük. 10 1. példa: Paradicsompép — zablisztes ferde agart be­oltunk Streptomyces prasinussal (ATCC 15285). 15 7—10 napig inkubáljuk, majd beoltunk vele 100 ml vizes szójaliszt táptalajt 500 ml-es Er­lenmieyer-lombikokban. A germinációs táptalaj összetétele: 20 szójaliszt 15 g szárított burgcnyapép 15 g glukóz 50 g CoeV2iH2 0, 0,06%-os oldat 10 ml 25 CaCO:! 10 g agar 2,5 g desztillált víz 1 liter A táptalajt 121 C°-on 20 percig sterilizáljuk. A gőznyomás 1 att. A lombikot 25 C°-on for-30 gó keverőgépben 72—96 óra hosszat inkubál­juk. A germinációs lombikok tartalmának 10%-át átvisszük 100 ml alábbi táptalajt tartalmazó 500 ml-es Erlenmeyer-lombikokba: 35 szójaliszt 60 g glukóz 50 g CaC03 10 g desztillált víz 1 liter A fermentációs lombikokat inkubáljuk, és 40 ugyanúgy keverjük, mint az előző germinációs lombikokat. 3 5 és 7 nap után mintát veszünk. E célból a micéliuimot kicentrifugáljuk, a fo­lyékony közeggel azonos térfogatú metanollal extraháljuk, és megelemezzük egy agar-diffu-45 ziós módszerrel. Az eredmények a következők: 50 55 Öra 72 120 168 Biológiai aktivitás (diffúzió-egység/ ml) 16,8 26,2 42,5 A próbára használt mikroorganizmus Stap­hylococcus aureus 209P volt. 2. példa: Egy 600 literes Sitreptómyces prasinus (ATCC 15 826) adagot a következőképpen fermentá-60 iunk. Oltóanyag készítése. Oltóanyagf orrás: Streptomyces prasinus (ATCC 15 825) kultúra, tejben való liofilizálás 65 útján eltartva. 2

Next

/
Oldalképek
Tartalom