203583. lajstromszámú szabadalom • Eljárás bakteriális fertőzések ellen védő emberi monoklonális antitest-készítmények és ezeket tartalmazó gyógyszerkészítmények előállítására

HU 203583B felülúszót elemzünk a fenti módszerrel, és ez egy olyan üreg (4F10) azonosítását eredményezi, amely aktivitással rendelkezik S. marcescens szerotípus lemezen, de nem rendelkezik aktivitással E. coli vagy kontroll lemezen. Meghatározzuk egy ezt kö- 5 vető, egyedi S. marcescens szerotípusokkal végzett ELISA vizsgálattal, hogy ez az üreg 015 és 018 sze­­rotípusú S. marcescenssel reaktív antitestet tartal­maz, de ez nem reaktív a húsz ismert S. marcescens LPS szerotípus bármelyik további tagjával. 10 Ajelen szabadalmi bejelentés benyújtása előtt 4F10-nek azonosított folyamatos transzformált sejtvonalat letétbe helyeztünk az American Type Culture Collection-nál (Rockville, Maryland), AT­­CC CRL 9007 letéti számon. 15 2. A klónozott 4F10 sejtvonalból származó anti­27 testet megvizsgáljuk további nemzetségek közti ke­resztreaktivitásra a standard immun-foltképző technika módosításával. Részletesebben, a K. pneu­moniae, E. aerogenes és E. cloacae baktériumokra való kereszt-reaktivitást vizsgáljuk olyan módon, hogy baktériumokkal foltokat képzünk egy hálózat­tal ellátott nitrocellulóz papír lemezen, a baktéri­umokat tartalmazó lemezt az említett antitesttel re­­agáltatjuk, és az antitest reakciókat alkálikus fosz­­fatáz/nitrokék-tetrazólium enzim rendszerrel kifej­lesztjük. Ezekben a kísérletekben a 4F10 antitestről meg­­figyeljük, hogy további nemzetségek közötti ke­reszt-reaktivitással rendelkezik. Ez az antitest a kö­vetkező szerotípusokkal reagál: 28 K. pneumoniae S. marcescens E. areogenes K3,12,29,31,68,72 015,18 Klinikai izolátumok így a 4F10 humán monoklonális antitest a S. marcescens, K. pneumoniae és E aerogenes fajokra tatozó baktériumokra nemzetségek közötti kereszt- 25 reaktivitással rendelkezik. 3. Az immun-folt technikát alkalmazva pozitív reakciókat figyelünk meg az összes olyan nyomon, amely az itt leírt baktériumok dezoxikolátos extrak­­tumait tartalmazza. Ezekben a nyomokban a 4F10 30 antitest úgy tűnik, felismeri vagy komponensek szé­les csíkjait, vagy szabályos térközű molekuláris egy­ségek sorozatát, létraszerű elrendezést hozva létre. Ez a profil teljesen egybevág azzal, amely a szénhid­rát részek poliakrilamid gélelektroforetikus elem- 35 zésében látható, ez vagy gyakran ismétlődő speciális cukorszekvenciáknak tulajdonítható erőteljes mo­lekulasúly heterogenitást demonstrál, vagy a zO- antigén oligoszacharid oldallánc egység/molekula számával ekvivalens súlygyarapodás szerint külön- 40 böző LPS molekuláknak tulajdonítható (Vimr E. R. és munkatársai: „Use of Procaryotic-Derived Pro­bes to Identicy Poli /Sialic Acid/ in Neonatal Neuro­nal Membranes” /Prokarióta eredetű vizsgáló min­ták alkalmazása poli (szialinsav) azonosítására új- 45 szülött neuron-membránokban/, Proc. Natl. Acad. Sei. 81,1971-1975/1983/; Holden K.B. és munka­társai: „Gel Electrophoresis of Mucous Glycopro­teins I. Effect of Gel Porosity" /Nyál glikoproteinek gélelektroforéziseLAgél porozitásúnak hatása/, Bi- 50 ochemistra, 10,3105-3109/1971/). Ezek az adatok azt jelzik, hogy a 4F10 olyan antigén determináns ellen irányul, amely egyaránt részt vesz a S. marces­cens, K. pneumoniae és E. aerogenes bizonyos sze­­rotípusain található szénhidrát molekulákban. 55 A K proteinázos kezelés után megfigyelt immun - folt-elrendezés azonos azokkal az elrendezésekkel, amelyeket a kezelés nélkül figyelünk meg, ez pedig azt sugallja, hogy az 4F10 antitesttel reagáló anti­gén nem fehérje természetű. 60 Hogy speciálisan megcélozzuk, vajon a 4F10 rea­gál-e szénhidrát epitóppal, az elektromos úton átvitt dezoxikolátos mintát szelíd perjodátos oxidációnak vetjük alá, mielőtt a nitrocellulóz papírt reagáltat­­nánk az antitesttel. Az ilyen módon kezelt, elektro­mos úton foltokat alkotó dezoxikolát extraktumok tovább már nem reaktívak a 4F10 monoklonális an­titesttel. Ezek az adatok erőteljesen jelzik, hogy az ez által az antitest által felismert epitóp szénhidrát rész, amely az itt leírt baktériumok molekuláin van jelen. 4. A 4F10 monoklonális antitest izotípusát EL­ISA eljárással határozzuk meg a fajlagossági vizsgá­latokhoz hasonlóan, az I. példában leírtak szerint, azzal a különbséggel, hogy az antigén lemez PLL-lel immobilizált S. marcescens 015 és 018 szerotípusok gyűjteményét tartalmazza. A 4F10 monoklonális antitest pozitív reakcióját csak az anti-IgM rea­genssel figyeljük meg S. marcescens szerotípusok­­nál, ez azt demonstrálja, hogy a monoklonális anti­test IgM izotípusú. Azok, akik a szakterületen járta­sak, méltányolni tudják, hogy ha ennek a példának az eljárását többször ismételjük és az így kapott nemzetségek között kereszt-reaktív monoklonális antitesteket meghatározzuk, további izotípusokat is találhatunk, pl. IgM és IgG izotípusokat. 5. A 4F10 monoklonális antitest in vitro funkcio­nális aktivitását opszonofagocitás vizsgálatban vizsgáljuk, amely összehasonlítja az antitest bakte­­riocid aktivitását mind humán neutrofilek, mind humán komplement jelenlétében és távollétébcn. Az itt használt bakteriális szerotípusok csak 4F10 monoklonális antitest, egy aktív komplement­forrás, és humán neutrofilek jelenlétében inaktivá­lódnak (3. Táblázat). Amikor ezt a kísérletet megis­mételjük több nem-4F10 reaktív bakteriálsi szero­­típussal, a baktériumok elroncsolódása nem követ­kezik be (adatokat nem mutatunk be), így ez a 4F10 monoklonális antitest funkcionális fajlagosságát demonstrálja, valamint azt a képességét, hogy op­­szonizálja a baktériumokat és elősegíti fagocitózi­­sukat. 15

Next

/
Thumbnails
Contents