203257. lajstromszámú szabadalom • Eljárás monoklonális anti-urokináz antitestek előállítására, valamint urokináz tisztítására és vizsgálatára

1 HU 203 257 B 2 A találmány egyik tárgyát képező tisztítási eljárás­ban alkalmazható monoklonális antitest kiválasztása problémájának jobb megvilágítása érdekében bemu­tatjuk a következő táblázatot. Ez a találmány szerinti kitüntetett - 5B4-nek nevezett - monoklonális anti­test és egy, Salemo et al. által leírt (Proc. Natl. Acad. Sei. 81, p. 110,1984)ésmAB 105.1F 10-zel jelzett (az 5B4-éhez hasonló affinitási állandóval rendelkező) monoklonális antitest összehasonlításának eredmé­nyeit mutatja be. I. táblázat Az 5B4 ésal05.1F10 monoklonális antitest (mAB) affinitási állandói mAB Ka(ljnól-1) 105.1F 10 4,92 xlO6 5B4 1,42 xlO7 Ez a két monoklonális antitest - amely azonos osz­tályhoz (mindkettő IgGj) tartozik - azonos mennyi­ségben azonos mennyiségű aktivált agarózhoz kap­csolva (Affi-gel R10) lényegesen eltérő eredményeket ad urokinázkészítmények tisztításában. Közelebbről: ha azonos tisztaságú (897 észteroliti­­kus egység) urokinázkészítményeket vezetünk át a két különböző immunadszorbensen, a megkötött frakció mennyisége a 105.1F 10 esetében 10%-nál alacso­nyabb és az mAB 5B4 esetében 70%-nál magasabb (azaz 77,5%). A találmány szerinti monoklonális antitestek - az antigén iránti affinitásuk és specifikusságuk folytán - előnyösen alkalmazhatók a vizsgálati vagy meghatáro­zási eljárásokban. Különböző markerekkel (pl. fluo­reszkáló festékekkel, radioizotópokkal és enzimekkel) jelölhetők és felhasználhatók az immunfluoreszcenci­ában, radioimmunvizsgálatokban vagy az enzimes im­munvizsgálatokban. A találmány egy további tárgya ezért a humán uro­­kináz vagy ennek egy prekurzora enzim-immunvizs­gálata, a találmány szerinti monoklonális antitestek segítségével. A humán urokinázt rendszerint fibrinolitikus vagy észterolitikus módszerrel határozzuk meg. Az első módszer egy vérrög lízisén alapul, amely annak ered­ményeként keletkezett, hogy az urokináz aktiváló ha­tására a plazminogén plazminná alakult át. A második módszer alapját az képezi, hogy az urokináz közvetle­nül hidrolizál egy szintetikus szubsztrátumot, az ace­­til-lizin-metil-észtert (ALME). Ezért ezek a módsze­rek csak az enzim aktív alakját mutatják ki. Az uroki­náz inaktív prekurzorai - pl. a preprourokináz vagy a prourokináz - vagy az inhibitor-enzim komplexek ily módon nem határozhatók meg. Azok az immunológiái vizsgálatok viszont, amelyek a molekula antigén tulaj­donságain - és nem az aktivitásán - alapulnak, lehető­vé teszik mind az enzim aktív, mind inaktív alakjának meghatározását. Egy nagyon célszerű immunmeghatározási mód­szer - amely az urokináz vagy egy „inaktív” prekurzo­ra (pl. egy urokináz zimogén vagy a prourokináz) ki­mutatására vagy meghatározására használható fel, a „kettős antitest szendvics” eljárás, amely a követke­zőkből áll: a) egy kísérleti oldatot, amely az antigént tartalmazza, reagáltatunk egy 1. anti-urokináz antitesttel - ame­lyet szilárd fázisú hordozón rögzítettünk - az anti­génnek a szilárd fázishoz kötése érdekében; b) a megkötött antigént érintkezésbe hozzuk egy, a 2. anti-urokináz antitestet tartalmazó oldattal, amelyhez előzetesen egy meghatározható markert kapcsoltunk (ennek során az 1. és a 2. antitest közül az egyik a találmány szerinti monoklonális anti­test); c) kimutatjuk vagy meghatározzuk az antigént annak alapján, hogy a meghatározható marker milyen mértékben kötődött a szilárd fázisú hordozóhoz. Az 1. antitestet előnyösen a következők közül vá­lasztjuk ki: anti-urokináz antiszérum, anti-uroki­­názzal tisztított immunglobulin G (IgGj) és egy mo­noklonális antitest, amelyről ismert, hogy az antigén egy olyan helyéhez kötődik, amely nem azonos a 2. antitest kötődési helyével (és nyilvánvalóan nem be­folyásolja a 2. antitest kötődését). A „meghatáro­zandóoldat” bármely olyan oldat lehet, amelyről fel­tételezhető, hogy tartalmazza a találmány szerinti monoklonális antitest által megköthető antigént. Ilyen pl. valamely biológiai folyadék, a fermentlevek, amelyeket pl. génsebészeti úton kapott mikroorga­nizmusokkal állítottunk elő, valamint a sejttenyésze­tek folyadéka és kivonatai. A 2. antitest előnyösen egy, a találmány szerinti monoklonális antitest, egy megfelelő, meghatározó ligandumhoz kapcsolva, amilyen pl. egy enzim, egy fluoreszcens festék vagy egy radioaktív csoport. Kitüntetett meghatározó marker egy enzim, és a kitüntetett „marker” a tor­­ma-peroxidáz. A találmány szerinti kitüntetett mo­noklonális antitest az előbbiekben leírt 5B4 jelű mo­noklonális antitest. Ha mind az 1., mind a 2. antitest monoklonális - amelyek közül az egyik a találmány szerinti monoklo­nális antitest, míg a másik egy további, humán uroki­náz elleni monoklonális antitest, amely az antigénnek nem ugyanahhoz a helyéhez kötődik, mint a talál­mány szerinti antitest és amelynek a kötődése nem befolyásolja a találmány szerinti monoklonális anti­test kötődését, ezek általában az előbbiekben leírt meghatározási eljárásban felcserélhetők. Más sza­vakkal: a két monoklonális antitest közül bármelyik lehet az 1., és a fennmaradó 2. antitest és vica versa. Ezzel szemben olyan vizsgálat esetében, amelyben az egyik „antitest” egy szokásos antiszérum, ezt csak­nem kivétel nélkül az 1. antitestként alkalmazzuk, mi­vel ebben az esetben a rendszer hatékonysága na­gyobb, mint a fordított esetben. A monoklonális antitestnek az enzim markerhez való kapcsolását ismert módszerekkel végezzük. Ki­tüntetett kapcsoló reagens a glutáraldehid. Ha a meg­határozható marker egy enzim, színfejlesztő, kromo­­gén enzimszubsztrátumot alkalmazunk; ez a jelölő en­zim ismert szintetikus szubsztrátuma, amely az en­5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 6

Next

/
Thumbnails
Contents