203198. lajstromszámú szabadalom • Eljárás immungátló, monokin-, különösen interleukin-1-gátló hatású gyógyászati készítmények előállítására

1 HU 203 198 B 2 A lizátumot úgy állítottuk elő, hogy a mosott emberi monocitákból álló egysejt-réteghez 0,01% digilonint tartalmazó 0,3 ml vizet adtunk 1.4.bAzIL-l szintézisére és felszabadulására kifejtett hatás 50 pl homogenizátumot a közeggel 500 pl-re hígí­tottunk majd összeolvadó porcsejtekhez adtuk, hogy a fém-proteináz-indukáló hatást - amely az IL-1 tar­talom mértéke - ellenőrizzük Az IL-1 -tartalmat meghatároztuk továbbá a te­­nyésztőközegben, valamint a sejt-homogenizátumok­­ban és sejt-lizátumokban radioimmun-méréssel (a kö­vetkezőkben: RIA-méréssel) (lásd a fenti 1.3. pontot). E vizsgálat során a találmány szerinti eljárásban al­kalmazható vegyületek - különösen a D2 jelű vegyület - jelentősen csökkentették az IL-1 szintjét a felülúszó közegben, míg a sejt-homogenizátumokban és sejt-li­zátumokban jelenlévő DL-1-tartalom csak kevéssé csökkent vagy változatlan maradt. \J5.A monociták tapadására gyakorolt hatás Frissen gyűjtött, emberi egymagvú sejtekből a vizs­gálandó vegyület vagy vivőanyag jelenlétében mono­­citákat különítettünk el, majd 4 óra elmúltával a köze­get leszívtuk és az egysejt-réteget szokás szerint mos­tuk Ezt követően a tapadó monocitákat vizes digito­­n in-oldattal lizáltuk és meghatároztuk a DNS meny­­nyiségét, valamint az LDH citoszol enzim-aktivitását. E vizsgálat során a találmány szerinti eljárásban alkal­mazható vegyületek - különösen a D2 jelű vegyület - és a vivőanyag nem csökkentették a monociták tapa­dóképességét. 1.6.A monokinok elválasztására kifejtett hatás Az IL-l-en TNF-a-n és IL-6-on kívül két jól meg­különböztethető monokin létezik amelyek stimulált monocitákból szabadulnak fel. A fentebb leírt módon emberi monocitákból te­nyésztőközeget állítottunk elő, és a fentebb leírt RIA- méréssel meghatároztuk az IL-1 és TNF-a-tartalmat, valamint az alábbiakban leírt biológiai vizsgálattal meghatároztuk az IL-ó-tartalmat. E vizsgálat során a találmány szerinti eljárásban alkalmazható vegyüle­tek - különösen a D2 jelű vegyület - az IL-1 felszaba­dulását jelentősebb mértékben gátolták, mint az IL-6 és TNF-a felszabadulását. Az IL-6 biológiai meghatározása: Az emberi monocitákból származó IL-6 kondicio­nált közegekben történő mérése céljából 0,2 ml térfo­gatú, mülüiterenként 2,4 x 104 B 13.29 sejtet tartal­mazó közeget 96-üreges lemezeken tenyésztettünk 48 órán át olyan tenyésztőközeggel, amelyet 200 E/ml rekombináns IL-6-tal, 50 pM 2-merkapto-etanollal és antibiotikumokkal kiegészített, szérummentes, Is­­cove szerint módosított Dulbecco-közeggel hígítot­tunk. A burjánzás mértékét az utolsó 6 órában alkal­mazott 3H-timidin (üregenként lpC) beépülésével határoztuk meg. A beépült radioaktivitást tartalmazó terméket szűrőpapírra gyűjtöttük, aktivitását megha­tároztuk, és standard IL-6 készítményhez viszonyí­tottuk. 1 .7. A laktát-dehidrogenáz szivárgására és a lizozim elválasztására gyakorolt hatás A fentebb leírtak szerint emberi monocitákból te­nyésztő-közeget állítottunk elő. A lizozimet és a lak­­tát-dehidrogenázt (a továbbiakban) LDH) kinetikusán ellenőriztük egy személyi számítógéppel összekap­csolt Twinreader műszerrel (gyártója a Flow Labora­tories AG cég). 50 pl térfogatú mintákat az LDH meg­határozása céljából 200 pl szuszbsztrátum-keverék­­kel elegyítettünk, amely végkoncentrációban 50 mM foszfát-puffért (pH 7,5), 0,8 mM nátrium-piruvátot, 0,24 mM NADH2 -t és 0,04% szarvasmarha-albumint tartalmazott, és egyperces időközökben 11-szer mér­tük az abszorbancia változását 340 nm hullámhosz­­szon. A számítógép megadta azokat a kezdeti sebessé­geket, amelyeket az egységek meghatározásához hasz­náltunk. A lizozim meghatározása céljából 50 pl tér­fogatú mintákat 100 pl olyan szuszpenzióval elegyí­tettünk, amely mülüiterenként 1,2 mg M. lysodeikti­­cus-t, valamint 67 mM koncentrációban foszfát-puf­fért (pH 6,2) tartalmazott, majd 4-perces időközökben 11-szer mértük a zavarosság változását 492 nm hul­lámhosszon. Minden egyes mérési sorozathoz kalibrá­ciós görbét készítettünk kristályos tyúktojás-fehérje lizozim alkalmazásával [J. Exp. Med. 148, 435 (1978)1. Sem a kontroüból, sem a kezelt sejttenyésze­tekből végbemenő jelentős LDH-szivárgást nem fi­gyeltünk meg. A találmány szerinti eljárásban alkal­mazható vegyületek - különösen a D2 jelű vegyület - csupán elhanyagolható mértékben csökkentették a li­zozim felszabadulását, és ez a csökkenés nem esett a nem stimulált kontrollok szintje alá. 2. A csonfelszrvódás megelőzése (a szöveti kalcium-kiürülés kezelése) 4-5 napos Swiss albino egerek koponyacsontjának frontális és parietális részét (felezett koponyatető­­csont) rozsdamentes acélhálón BGJ csontszöveti te­nyésztőközegben tenyésztettünk, amelyet a közeg közbenső fázisában 1 mg/ml BSA-val és a nedves at­moszférában gázzal (95% levegő és 5% szén-dioxid ke­veréke) egészítettünk ki. A tenyésztést 37 °C hőmér­sékleten végeztük [lásd a következő helyen: Reynolds és munkatársai: „Organ Culture in Biomedical Re­search”, kiadók: Balls és Mamichendam, Cambridge University Press, 355-366. old; (1987)]. Meghatároztuk a vizsgálandó anyag különböző koncentrációinak befolyását a vizsgálati közegbe tör­ténő kalcium-felszabadulásra a kalcium-felszabadu­lást serkentő anyagok [PGE2, LPS és 1,25-dihidro- D3-vitamin] jelenlétében. Ebből a célból megmértük a kalcium-koncentrációkat olyan csonttenyészet-felül­­úszókban, amelyeket 72- és 144-órás tenyészetekből nyertünk, valamint mértük a kalcium-koncentráció­kat a koponyacsontok TCA-kivonataiban a tenyésztés végén spektrofotometriás módszerrel [Am. J. Clin. Pathol. 58,376 (1972)]. Meghatároztuk továbbá az N-5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 6

Next

/
Thumbnails
Contents