201804. lajstromszámú szabadalom • Eljárás 2-keto-L-gulonsav előállítására mikrobiológiai úton

HU 201804B Bármely fenti törzset megfelelő közegben 20- 40 °C hőmérsékleten inkubálhatunk 1-4 napig, majd a kapott tenyészetet inokulumként alkalmaz­hatjuk a találmány szerinti eljárás során. Az inoku­­lum mérete általában 1/10-1/1000 között változik az oxidativ törthöz viszonyítva. Amennyiben a já­rulékos törzset ilyen mennyiségben inkubáljuk az oxidativ törzzsel, az oxidativ törzs növekedését oly módon javítja, hogy az oxidativ törzs tiszta kultúrá­jával összehasonlítva, a kevert tenyészet nagyobb koncentrációban, rövidebb idő alatt képes L-szor­­bózból 2-keto-L-gulonsavat előállítani. A járulékos baktériumként használt törzsek el­őnyösen olyanok, amelyek L-szorbózból 2-keto-L- gulonsavat kevéssé vagy egyáltalán nem tudnak elő­állítani. Különben ugyanolyan tenyésztési körülmé­nyeket alkalmazhatunk, mintha az oxidativ törzset önmagában használnánk. A fenti mikroorganizmusok tenyésztésére hasz­nált közeg szilárd vagy folyékony lehet, s olyan táp­anyagokat tartalmaz, amelyet az adott törzs haszno­sít. Azonban ipari méretű eljárás esetén a folyékony tápközeg előnyös. A közeg tartalmaz szénforráso­kat, nitrogén forrásokat, szervetlen sókat, szerves sav sókat, és nyomnyi mennyiségben olyan anyago­kat, melyeket általában használnak mikroorganiz­musok tenyésztéséhez. Míg a kiindulási anyagként használt L-szorbóz szénf orrásként szolgál, egyéb segéd -szénf orrásokat, például glükózt, glicerint, szacharózt, laktózt, mal­­tózt, melaszt stb. szintén alkalmazhatunk. Nitrogénforrásként például különböző szervet­len és szerves nitrogéntartalmú vegyületet vagy nit­rogénvegyületet, például ammónium-sókat (például ammónium-szulfátot, ammónium-nitrátot, ammó­­nium-kloridot, ammonium-foszfátot stb.) kukorica­­lekvárt (GSL), peptont, húsextraktumot, élesztő ext­­raktumot, szárított élesztőt, szójalisztet,gyapotmag lisztet, karbamidot stb. használhatunk. Szervetlen sóként kálium-, nátrium-, kalcium-, magnézium-, vas-,mangén-,kobalt-, cink-,réz-és/vagyfoszforsav sóit alkalmazhatjuk. Nyomnyi mennyiségű tápanyagként a koenzim- A-n kívül pantoténsavat, biotint, tiamint és ribofla­­vint alkalmazhatunk, melyek a fenti mikroorganiz­musok növekedéséhez feltétlenül szükségesek, de használhatunk olyan anyagokat is, melyek meggyor­sít ják a mikroorganizmus növekedését ill. üy módon az 2-keto-L-gulonsav képződést, például flavin mo­­nonukleotidot (FMN), flavin-adcnin dinuklcotidot (FAD), egyéb vitaminokat, L-ciszteint, L-glutamin­­savat, nátrium-tioszulfátot stb. vagy tiszta vegyüle­­tek, vagy ezeket tartalmazó természetes anyagok formájában, megfelelő mennyiségben. A tenyésztési módszert illetően bármely stacio­nárius, rázó, alámerítéses stb. eljárás alkalmazható. Ipari méretű eljárásra azún. alámerítéses tenyészté­si eljárás az előnyös. Természetesen a tenyésztési körülmények a bak­térium törzstől, a tápközeg összetételétől és egyéb faktoroktól függnek, és minden esetben úgy kell megválasztanunk őket, hogy a kívánt vegyületet a lehető legnagyobb hatékonysággal kapjuk. így például az inkubációs hőmérséklet előnyösen 9 25-35 *C lehet, és a közeg pH-ja kb. 5-9. Ha a tenyésztést a fenti körülmények között 10- 120 órán keresztül folytatjuk, a 2-keto-L-gulonsav a legnagyobb koncetrációban képződik. Mivel a kö­zeg pH értéke általában a kívánt vegyület képződésé­vel csökken, előnyös, ha egy bázikus anyagot, példá­ul nátrium-hidroxidot, kálium-hidroxidot vagy am­móniát adunk időről időre a tápközeghez, hogy a kö­zeg pH-ját optimális értéken tartsuk a 2-keto-L-gu­­lonsav termelés szempontjából, vagy a tápközeghez egy megfelelő puffert adunk, hogy a közeg pH-ját állandó értéken tartsuk. A fentiektől függetlenül, a közeg további kompo­nenseiként az oxidativ törzseken kívül a tápközeg előnyösen egyéb sterüezett baktériumot is tartal­mazhat. Ilyen baktériumokra példaként a Bacillus, Pseudomonas, Citrobacter, Escherichia, Erwinia nemzetségekbe tartozó törzseket említhetjük. Konkrét példaként a következő törzseket sorolhat­juk fel: 10 Bacillus cereus EF03131 Bacillus subtilis IFO3023 Bacillus pumilus IFO12089 Bacillus megaterium IFO12108 Bacillus amyloliquefaciens IFO 3022 Pseudomonas trifolii IFO 12056 Citrobacter freundii HO 12681 Escherichia coli IFO 3546 Erquinia herbicola IFO 12686 így ezeket a baktériumokat egy olyan közegben inkubáljuk, mely lehetővé teszi növekedésüket 20- 40 °C hőmérsékleten, 2-4 napon keresztül, és a ka­pott tenyészközeget sterüezzük, majd az oxidativ törzs közegéhez adjuk 0,5-5,0 térfogat/térfogat% arányban. így az oxidativ törzs növekedését meg­gyorsíthatjuk. A reakcióelegyben vagy tápközegben így képző­dött és felhalmozódott 2-keto-L-gulonsavat önma­gában ismert módon, a vegyület tulajdonságait fel­használva különíthetjük el és tisztíthatjuk. A 2- keto-L-gulonsavat a szabad sav vagy például nátri­um-, kálium-, kalcium-, ammonium- vagy hasonló sója formájában különíthetjük el. Bármely el j árás, amely a kívánt vegyület kinyeré­sére alkalmas, megfelelő. Például a tápközegből el­választhatjuk a sej teket, például szűréssel, centrifu­­gálással vagy aktív szénnel való kezeléssel, és az ol­datot bepároljuk. A kicsapódott kristályokat kiszűr­jük, és átkristályosítva a kívánt vegyületet kapjuk. Ezen kívül oldószeres extrakciót, kromatográfiát, kicsapást vagy kisózást, és egyéb módszereket is használhatunk megfelelő kombinációban és/vagy is­métléssel. Amikor a 2-keto-L-gulonsavat szabad sav formá­jában kapjuk, sóvá alakíthatjuk például nátrium-, kálium-, kalcium-, ammonium-vagy hasonló sójává ismert módon. Amikor a kívánt vegyületet sója for­májában nyerjük ki, a szabad savat képezhetjük vagy más sót képezhetünk belőle ismert módon. A találmány szerinti termék 2-keto-L-gulonsav­­val való azonosságát a kapott termék fizikai-kémiai konstansainak, például elemanalízis, olvadáspont, optikai forgatóképesség, IR abszorpciós spektrum, 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 6

Next

/
Thumbnails
Contents