201803. lajstromszámú szabadalom • Eljárás maláriaellenes vakcina hatóanyagát képező polipeptidek előállítására

HU201803B raszűrés előtt felületaktív szert adunk a rend­szerhez, a találmány szerinti eljárással előállított polipeptidek oldatban tartására. A találmány szerinti eljárás egyik lényeges ele­mét az a felismerés képezi, hogy a találmány szerinti eljárással előállított bizonyos polipeptideket úgy vá­laszthat juk el igen nagy hatékonysággal az egyéb po­­lipeptidektől, ha a tisztított extraktumot a protein oldatban tartására adott detergens beadagolása után közel 80 "C-ra melegítjük. Azt tapasztaltuk, hogy ha az extraktumot 80 °C-on legalább 4 percen át melegítjük, csaknem az összes bakteriális poli­­peptid kicsapódik, anélkül, hogy a lényegében az is­métlődő egységekből álló, vagy az ismétlődő egysé­gek más, nem hőre denaturálódó szekvenciákhoz va­ló kapcsolódásából álló polipeptidek denaturálód­­nának. A denaturált bakteriális polipeptideket cent­­rifugálással tömöríthetjük és eltávolíthatjuk. Afen­­ti eljárás azRtet32, RG, RLA és Rtet86 polipeptidek tisztítására használható. Közelebbről, a fenti eljá­rást sikeresen alkalmaztuk az R16tet32, R32tet32, R48tet32, R64tet32, R48G, R32LA és R16tet86 tisztítására, amint azt a példákban ismertetjük, míg azRlóNSl ésR32NSl melegítése ezen polipeptidek kicsapódását okozta. A találmány szerinti eljárással előállított poli­­peptidet tovább tisztíthatjuk, például szelektív ki­csapószer hozzáadásával, majd egy kromatográfiás lépéssel, például ioncserélő kromatográfiával vagy fordított fázisú nagynyomású folyadékkromatográ­­fiával. A találmány szerinti eljárással előállított vakci­­nábana találmány szerin ti eljárással el őállítot t poli - peptid vizes, előnyösen fiziológiás pH-n pufféról t ol­datát közvetlenül használhatjuk. A találmány sze­rinti eljárással előállított polipeptidet - liofüizálás után vagy anélkül - különféle ismert adjuvánsokon is adszorbeálhatjuk vagy azokkal keverhetjük. A fenti adjuvánsok többek között alumínium-hidro­­xid, muramü-dipeptid vagy szaponinok, így Quil A lehetnek. További alkalmazási módként például a polipeptid mikrorészecskékbe - például liposzo­­mákba - való kapszilázását említhetjük. Úgy iseljár­hatunk, hogy a polipeptidet egy immunstimuláló makromolekulával - például elölt Bordatellával vagy egy tetanusz toxoiddal - kapcsoljuk össze. A vakcinák előállítását például a New Trends and Development in Vaccines, szerk. Voller és munka­társai, University Park Press, Baltimore, Maryland, Amerikai Egyesült Államok, 1978 irodalmi helyen ismertetik általánosan. A liposzomákba való kap­­szulázást például Fullerton (US-PS 4 235 877) is­mertette. Ä proteinek makromolekulákhoz kapcso­lását például Likhide (US-PS 4 372 945) és Armor és munkatársa (US-PS 4 474 757) írtak le. A Quü A használatát például Dalsgaard ésmunkatársai (Acta Vet. Scand. 18,349/1977/) munkájából ismerjük. A vakcina-dózisokban a polipeptid mennyiségét úgy választjuk meg, hogy azzal az immunprotektív válasz elérhető legyen, a szokásos vakcinák hátrá­nyos mellékhatásai nélkül. A fenti dózis az alkalma­zott specifikus polipeptidtől, valamint attól függ, hogy a vakcina adjuvánst is tartalmaz-e. Általában minden egyes dózis 1-1000 pg, előnyösen 10-200 pg polipeptidet tartalmazhat. Az egyes vakcinák op­5 timális dózisát szokásos módon, például az antitest­­titer meghatározásával vagy a kezelendő alany más válaszának mérésével határozhatjuk meg. Az első vakcinálást követően a kezelt alany előnyösen kb. 4 hét múlva újabb adagot kap, és ezt követően minden 6 hónapban megismételjük az adagolást, egészen a fertőzésveszély fennállásáig. A találmányt közelebbről - a korlátozás szándéka nélkül - az alábbi példákkal kívánjuk ismertetni. A CS-proteint kódoló szekvenciát James Webrtől (Walter Reed Army Institute for Research) kaptuk, egy standard E. coli klónozó vektorba, a pUC8-ba (Bethesda Research Laboratories, Inc., Gaithers­burg, MD, Amerikai Egyesült Államok) az Eco RI helynél illesztett XmPFl (Dame és munkatársai, fent idézve) 2337 bázispárból álló Eco Rí fragmens for­májában (lásd la. ábra). A kapott pUC8 származé­kot a továbbiakban pUC8 1. klóronnak nevezzük. 1. példa CS-protein származék 40 pg tisztított pUC8 1. klón plazmíd DNS-t 100 egység Stul 100 egység Rsal restrikciós endo­­nuldeázokkal emésztünk, 400 pl puffer-közegbcn (amelynek összetétele 50 mmól/l Tris, pH 7,5, 50 mmól/l NaCl, 1 mmól/l ditiotreitol (DTT) és 10 mmól/l MgCl2), 37 °C-on, 1,5 órán át. A kapott, a CS-protein első 18 aminosavját kódoló, 1216 bázis­ból álló fragmentumot 5% poli(akril-amid)-gélen elektroforézissel (PAGE) választjuk el. 10 pgpASl expresszi ós vektor 200 pl puffer-kö­­zegben 1,5 órán át, 37 °C-on 25 egység Bam Hl rest­rikciós endonukleázzal emésztünk. A szétvágott plazmidot ezután DNS-polimeráz nagy fragmen­tummal (Klenow, 5 egység; 20 mmól/l Tris-HCl, pH 7,5, 7 mmól/l MgCl2,60 mmól/l NaCl, 6 mmól/l 2- merkapto-etanol és 0,25 mmól/l a négy dezoxinukle­­otid-trifoszfát mindegyikéből; 25 °C, 15 perc kezel­jük, a Bam Hl helynél a vég betöltésére. A CS-gén fragmentum 1 pg-ját ezután 100 ng fenti vektorral kötjük össze, 30 pl ligáz-pufferben (50 mmól/l Tris, pH 7,5, 1 mmól/l DTT, 10 mmól/l MgCl2, 100 pmól/1 rATP), 1 egység T4-DNS lígáz segítségével, 16 órás reakcióidőt alkalmazva, 4 °C- on. A ligációs elegyet E. coli MM294CÚ törzsbe (Ann. N.Y., Acad. Sei. 478,233-248) transzformál­juk, ampicillin-rezisztens telepeket kapunk, és eze­ket vizsgáljuk a CS-gén fragmentum pASl-bc való beépülése szempontjából. Egy megfelelő szerkeze­tűnek talált plazmidot (pCSP) azonosítás után E. coli N5151 törzsbe transzformálunk (clts857) (Mol.Cell.Biol. 5(5), 1015-1024, 1985) és a teljes hosszúságú CS-protein expressziója szempontjából vizsgáljuk. (AproteinN-terminálisánála 18amino­­sav törlése az autentikus CS-protein hasított szig­­nál-peptidjének felelne meg.) Ä sejteket Luria-Ber­­tani tápközegben (LB) tenyésztjük 32 °C-on, amíg a tenyészet abszorpciója 650 nm-en (Aóso) eléri a 0,6 értéket, majd a hőmérsékletet 2 órán át 42 'C-on tartjuk, az expressziós plazmid PL-promoterc transzkripciójának beindítására és a CS-protein származék ezt követő transzlációjára. A sejttenyé­szetből 1 ml-es mintákat veszünk, tömörítjük, lizáló pufferben (10 mmól/l Tris-HCl, pH 7,8,25 térfogat% glicerin, 2% 2-merkapto-etanol, 2% nátrium-dode-6 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 4

Next

/
Thumbnails
Contents