197937. lajstromszámú szabadalom • Eljárás plipeptidek mikrobiológiai gazdasejtekben való kifejezésére használható új klónozó hordozók előállítására

197937 Az EcoRI hasítási hely visszaállítására 1 pg SÍ-kezelt dezoxi-ribonukleinsavat elő­ször 240 pikomól foszforilezett EcoRI linker­­rel keverünk, és tompa-végligációt végzünk 4 egység T4-dezoxi-ribonukleinsav-ligázzal, 15 pl, 0,6 mmól adenozin-trifoszíátot tartal­mazó ligáz-pufferban, 12,5°C hőmérsékleten, 16 órán át. Az elegyet ezután 250 pl-re hí­gítjuk EcoRI-puffer adagolásával, és 10 per­cen át 60°C hőmérsékleten tartjuk. 100 egy­ség EcoRI restrikciós endonukleázt adagolunk és 1 órán át 37°C hőmérsékleten inkubáljuk a reakcióelegyet, a fölösleges linker moleku­lák eltávolítására, és EcoRI kohézív végek előállítására. Fenollal extraháljuk a reakció­elegyet és a dezoxi-ribonukleinsavat etanollal kicsapjuk. 0,3 pg plazmid dezoxi-ribonuklein­savat újra körré zárunk oly módon, hogy 0,8 egység T4 dezoxi-ribonukleinsav-ligázzal kezeljük 15 pl, 0,4 mmól/1 adenozin-trifosz­­fátot tartalmazó ligáz-pufferban, 12,5°C hő­mérsékleten, 7 órán át. 8 pl ligációs eleggyel E. coli JA221 (NRRL B-15014) törzset transz­formálunk. Egy éjszakán át 100 ml, 50 pg/ml ampicillint tartalmazó L-táptalajban tenyész­tünk három, ampicillinre rezisztens transz­­formánst, és izoláljuk a plazmid dezoxi-ribo­nukleinsavat. Meghatározzuk az EcoRI hasí­tási helyek dezoxi-ribonukleinsav-szekvenciá­­ját. Ezek egyikének bázis-sorrendjét a 14. ábra c. részén mutatjuk be, a plazmidot pKEN036 (A - 3) jellel jelöljük. A pKEN037 (A-l) transzlációs leolvasá­si fázisát a másik két leolvasási fázissá A-2 és A-3 változtatására a pKEN037 kisebb Xbal-EcoRI fragmensét a kisebb, a pKEN024 (A-2) vagy a pKEN036 (A-3) Xbal-EcoRI fragmensével cseréljük ki, ahogy azt a 15. ábrán bemutatjuk. Úgy járunk el, hogy 3 pg pKEN037 plazmidot először (ahogy azt a 15. ábra 131 helyén bemutatjuk) 6 egység Xbal restrikciós enzimmel kezeljük, 50 pl BamHI-pufferban, 37°C hőmérsékleten, 1 órán át. Az Xbal enzim inaktiválását követően a linearizált dezoxi-ribonukleinsav-fragmense­­ket 6 egység EcoRI restrikciós enzimmel ha­sítjuk, 100 pl EcoRI-pufferban, 37°C hőmér­sékleten, 1 órán át tartó reakció során. Aga­­róz gél-elektroforézissel izoláljuk a nagyobb Xbal-EcoRI fragmenst a kisebbtől. Az agaróz gélen lévő dezoxi-ribonukleinsav-fragmense­­ket 1 pg/ml etidium-bromiddal festjük, és a nagy fragmensnek megfelelő csíkot ki­hasítjuk. Fagyasztást követően eluáljuk ezt a csíkot a gélről. A dezoxi-ribonukleinsav­­-fragmensekről az etidium-bromidot fenolos extrakcióval távolítjuk el, és a dezoxi-ribo­­nukleinsavakat etanolos kicsapással izoláljuk. A szárított dezoxi-ribonukleinsav-frag­­menseket 20 pl vízben oldjuk, és 1 pl alikvot pKEN037 dezoxi-ribonukleinsav-fragmens­­-keveréket egyesítünk 0,1—0,1 pg kismére­tű, a pKE.N024 vagy a pKEN036 plazmidok­­ból származó Xbal-EcoRI restrikciós frag­­mensekkel (lásd a 15. ábra 132 helyét). Eze­37 20 két a fragmenseket az adott plazmidból Xbal és EcoRI kettős restrikciós enzimes ke­zeléssel, majd géltisztítással állítjuk elő, ahogy azt a 15. ábra 133 jellel jelölt helyén látjuk. Az Xbal-EcoRI fragmensek ragadós végeit 0,2 egység T4 dezoxi-ribonukleinsav­­ligázzal kapcsoljuk. Á reakciót 20 pl, 0,4 mmól/1 adenozin-trifoszfátot tartalmazó ligáz-pufferban végezzük, 12,5°C hőmérsék­leten, 7 órán át. A ligációs eleggyel E. coli JA221 (NRRL B-15014) törzset transzfor­málunk. Az ampicillinre rezisztens transzfor­­mánsok között olyan telepeket találunk, ame­lyek plazmid dezoxi-ribonukleinsava A-2 és A-3 leolvasási fázissal rendelkezik, ezeket, sorrendben pKEN039 és pKEN040 jellel je­löljük. Szerkezetüket a 15. ábra 134 helyén mutatjuk be. Az előzőekben ismertetett kísérleteket a pKEN039 (A-2) és a pKEN040 (A-3) első esetben való előállítására végeztük. A szak­emberek számára azonban érthető, hogy ezen plazmidok előállítására más módszereket is használhatunk. így például a pKEN037 (A-l) plazmid EcoRI hasítási helyének szom­szédságában lévő dezoxi-ribonukleinsav-szek­­venciát magát is módosíthatjuk a 13. ábra b. és c. vagy a 14. ábra b. és c. helyén meg­adottak szerint eljárva, amiután megkapjuk a pKEN039 (A-2) vagy a pKEN040 (A-3) plazmidokat. B) A B-típusú plazmidok (plN-1) előállítása A 16—21. ábrákon sematikusan szemlél­tetjük azoknak a rekombináns plazmidoknak az előállítását, amelyek a B-beépítési helyet tartalmazzák. Az ábrákat az alábbiakkal ösz­­szevetve kell vizsgálni. 1) A pKEN221 plazmid előállítása A B-helyet tartalmazó kifejeződő plazmi­dok előállításának első lépéseként egy olyan plazmidot állítunk elő, amely tartalmazza az Ipp gén fragmenseket, mégpedig úgy, hogy az rendelkezzen egy restrikciós hasítási hely­­lyel a szignál pepiid hasítási helyén, vagy annak közelében. A kiválasztott gén a Serratia marcescens lipoproteint határozza meg, és a szignál peptid 3’-végén egy Fnu4H-l restrik­ciós endonukleáz által felismerhető he'yet hor­doz. Az S. marcescens lpp gént felvevő plaz­­midként a pBR322 plazmidot választottuk. Ahogy azt 4 16. ábra 135 jellel jelölt részén látjuk, 2 pg pBR322 plazmid dezoxi­­-ribonukleinsavat 2 egység BamHI restrik­ciós endonukleá^zal teljesen emésztünk 50 pl BamHI-pufferban, 37°C hőmérsékleten, 60 percen át. A BamHI enzim inaktiválására a reakcióelegyet 10 percen át 60°C hőmér­sékleten tartjuk, majd 2 egység EcoRI-t és 100 pl EcoRI-puffert adagolunk. 60 percen át 37°C hőmérsékleten inkubáljuk a reakció­elegyet, majd a reakció leállítására fenolos extrakciót végzünk. A linearizált dezoxi-ribo­­nukleinsav-fragmenseket etanolos kicsapással izoláljuk. 38 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65

Next

/
Thumbnails
Contents