196456. lajstromszámú szabadalom • Eljárás permanens állati és humán sejtvonalak előállítására

26 196456 27 cites-sejtekból nyert CMV-frakcióval szusz­penzióban fuzionáljuk. Az igy kezelt sejteket 5 x 105/75 cm2 tenyészedény sejtsürüségé­­nek megfelelően szélesztjük, és szén-dioxid inkubátorban tenyésztjük. Ellenőrzés céljából a primer tenyészetekből származó endoteli­­um-sejtek egy aliquotját CMV-frakció nélkül PEG-oldattal kezeljük (álfúzió), és újra te­nyésztjük. Amint a sejtek a tenyészedény al­ján hiánytalan sejtréteget képeznek, trip­­szin-EDTA-oldat segítségével leoldjuk őket, és 1 : .3 arányban friss tenyészedényekbe visszük át őket (= átoltás). 7.2. Eredmények. A CMV-frakcióval fúzionált endotelium­­-sejtek a beoltás után 20-30%-os eredmé­nyességgel tapadnak meg, és 2-3 napon belül összefüggő sejtréteggé nőnek. Az álfúzionált sejtek körülbelül azonos ereményességgel ta­padnak meg, azonban alig szaporodnak, és - anélkül, hogy összefüggő sejtréteget képez­nének - körülbelül 21 napon beiül teljesen kipusztulnak. A teljesen kezeletlen endoteli­­um-sejtek legfeljebb a 3. átoltásban szapo­rodnak, azután leáll a növekedésük, a te­nyészedény aljái'ól legömbölyödve leválnak, és feloldódnak. Összesen 18 különböző köl­dökzsinórból származó endotelium-sejtekkel végzett 8 különböző kísérletben a CMV-vel kezelt sejtek problémamentesen kinőttek a 10. átoltáson túl is. A transzformált endoté­­lium-sejtek életképesség- és osztódási ké­pesség-veszteség nélkül tárolhatók folyékony nitrogénben. 7.3. Értékelés. Humán köldökzsinór-endotelium-sejtek a találmány szerinti transzformáló manipuláció nélkül a 3. átoltáson túl nem voltak te­nyészthetők, ami megerósitette az irodalom­ban közzétett próbálkozásokat [például Grim­­bone, M. A., Progress in Haemostasis and Thrombosis, Vol. 3; Maciag, T. et. el.; J. Cell Bioi. 91 420-426 (1981)]. Ehrlich-ascites-sej­­tekból származó mitokondrium-gazdag CMV­­-frakcióval való fúzióval az endotelium-sejtek tenyésztési tuladonságai úgy megváltoztak, hogy a kritikus 3. átoltáson túl probléma­­mentesen szaporíthatok voltak (és a 23. átol­­tásban sem mutattak .kifáradási jelensége­ket"). 8. példa. Emberi melanóraasejtek immortalizálása. 8.1. Anyag és módszerek. Melanómasejt-tartalmú szövetet egy csí­­pő-nyirokcsomó-áttétel sebészeti kimetszésé­vel nyertünk, steril körülmények között kis csikókra vágtuk, és a fúzióig folyékony nit­rogénben tároltuk. Az Ehrlich-ascites-sejtek­­böl származó CMV-frakciókat a 6.1. példában leírtak szerint állítottuk elő. A fúzió előtt a melanómasejt-tartalmú anyagot felolvasztottuk, és tripszin-kezelés segítségével egyedi sejt szuszpenziót készí­tettünk. A nagy, barnás-vörös pigmentáltsó­­gú melanómasejteket Ficoll-gradiens-centrifu­­gálással megszabadítottuk a kísérő limfoci­­táktól, és a 6.1. pontban leirtak szerint PEG­­-behatás alatt CMV-frakcióval fúzionáltuk (körülbelül 4 x 105 melanómasejtet körülbelül 1 x 106 Ehrlich-ascites-sejtból származó CMV-vel). Fúziókontrollként 4 x 105 melanó­­masejt szolgált, amelyeket CMV nélkül PEG-lal kezeltünk. A sejteket a fúzió utón 1 x 105 sejt/csepptenyészet-tálca sűrűségben RPMI 1640 + 20% FKS-ben szélesztettük, és 37 °C­­-on 5%-os szén-dioxid-atmoszférában te­nyésztettük. 8.2. Eredmények. A CMV-vel fúzionált melanómasejtek mind a 4 résztenyészetében a 28. naptól kezdve tipikusan pigmentált sejtek telepei nőttek félig össztapadó sejthalmazok formájá­ban, amelyek folytonosan nagyobbodtak. Az álfúzionált sejtek kontroli-tenyészetében nem került sor sejtszaporodásra, továbbá a sej­tek a 8. naptól kezdve fokozódó granuláló­­dást mutattak, és a 22. naptól már csak sejt­romok voltak a tenyészetben jelen. 8.3. Értékelés. Fagyasztással tartósított áttétel-szöve­tekből nyert humán melanóma-sejtek CMV-fú­­zióval in vitro tenyészthetők és szaporodás­képes sejtekké; transzformálhatok. Azonos eredetű álfúzionált melanómasejtek ezzel szemben egyébként azonos tenyésztési körül­mények között elpusztulnak. 9. példa. Eukariota-DNS-vektor bevitele immorta­­lizólt emberi endotelium-sejtekbe. 9.1. Transzficiált anyag kimutatása a sejtek­ben Hirt-felülúszók lenyomatolósával (Southern blotting). 9.1.1. Anyag. Z-pBR 322/RchrßG-A425 B plazmid [Dierks, P. et ah; Proc. Natl. Acad. Sei. USA 78, 1411-1415 (1981)] egy 2.070 bá­zispár (Bp) házinyúl-á-globin-gén-frag­­menst tartalmaz. A pBR 322 Cla-Pvu I­­-fragmensét egy 3.039 Bp Hpa I-BamHI­­-fragmenssel pótoltuk, amely a korábbi gén egész részletét és az SV 40 későbbi génje részletének kezdetét tartalmazza [Tooze, J. (1980), .DNS tumor vírusok", J. Tooze kiadása, 2. kiadás, Cold Spring Harbor Laboratory és B. Wieringa et al.; Cetus-UCLA Symposium on Gene Regula­tion, 1982]. 9.1.2. Módszerek. Emberi endotelium-sejteket a 7. példá­ban leirtak szerint immortalizálunk és tenyésztünk. 106-106 sejtet 6 wg pBR 322 RüG SV 40-nel és 4 ug ultrahanggal 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 15

Next

/
Thumbnails
Contents