193507. lajstromszámú szabadalom • Eljárás interferonszerű polipeptidek előállítására

193507 dal transzformált F coli gazdák az ilyen an­tibiotikumot tartalmazó kultúrában jól fej­lődnek, az ily módon nem transzformált bak­tériumok kizárásával. Ezért a tetraciklin-tar­­talmú kultúrában történő tenyésztés lehető­vé teszi a rekombináns DNS-molekulával vagy reciklizált vektorral transzformált gazdák szelekcióját. 37°C hőmérsékleten történő 24 órai inku­­bálás után az egyes kolóniákat kiemeltük és a fentiekhez hasonló, tetraciklin-tartalmú LB közeg 100 pl-jében szuszpendáltuk őket, Dy­­natech-féle mikroliter-lemezek üregében. A lemezeket éjjelen át 37°C hőmérsékleten in­­kubáltuk, majd mindegyik üreg tartalmához 1 I pl dimetil-szulfoxidot kevertünk és a tál­cákat ragasztószalaggal lezártuk. Az így el­készített lemezeket —20°C hőmérsékleten tároltuk; ily módon egy 17 000 transzformált E. coli HB101 egyedi kiónt tartalmazó „könyv­tárat" állítottuk elő. Ez a „könyvtár" 270 fmol (128 ng) dT-farok-részű cDNS-betétből szár­mazik; ez utóbbiakat viszont 4,4 pg grádiens­­sel tisztított poli (A) RNS-ből szintetizáltuk. E „könyvtár" kiónjainak körülbelül 98%-a érzékeny volt karbenicilinnel (ez az ampicil­­lin egy stabilabb származéka) szemben. Ezért a „könyvtár" körülbelül 98%-a oly plazmi­­dot tartalmaz, amelynek a Pstl helyen a pBR322 P-laktamáz-génjéből betétje van és csupán 2% tartalmaz ilyen betét nélküli re­ciklizált vektort. Ez a 17 000 klón számos különböző rekom­bináns DNS-molekulát tartalmaz, amelyek a HuIFN-ß-termelö sejtekből származó po­li (A) RNS-ben levő mRNS-ek elegyének tel­jes vagy részleges kópiáit képviselik. Ezek többsége csupán egyetlen rekombináns DNS­­-moiekulákat tartalmaz. E rekombináns DNS­­-molekuiából csak néhány áll rokonságban a HuIFN-ß-val. így tehát ezeket a kiónokat még szűrésnek kell alávetni, hogy elkülönít­sük a HuIFN-ß-rokon kiónokat a többiektől. A HuIFN-ß cDNS-t tartalmazó klón ki­szűrése Különböző módszerek vannak a HuIFN-ß cDNS-t tartalmazó bakteriális kiónok kiszű­résére. Ilyen módszer például a DNS szelek­táló hibridizációja (vö.: Alwine és munkatár­sai fentebb idézett munkája), a differenciá­lis hibridizáció [T. P. St. John és R. W. Da­vis: „Isolation of Galactose-Inducible DNA Sequences from Saccharomyces Cerevisiae by Differential Plaque Filter Hybridization”, Cell 16, 443—452 (1979)], hibridizálás szin­tetikus mintával [B. Noyes és munkatársai: „Detection and Partial Sequence Analysis oi Gastrin mRNA by Using an Oligodeoxy­­nuclaotide Probe", Proc. Natl. Acad. Sei. USA, 76, 1770—1774 (1979)] vagy az olyan kió­nok kiszűrése immunológiai [L. Villa-Koma­­roff és munkatársai: „A Bacterial Clone Syn­thesizing Proinsulin", Proc. Natl. Acad. Sei. USA, 75, 3727—3731 (1978)] vagy biológiai [A. C. Y. Chang és munkatársai: „Phenotypic 2b 14 Expression in E. coli of a DNA Sequence Cod­ing for Mouse Dihydrofolate Reductase", Na­ture, 275, 617—624 (1978)] módszerekkel, amelyek a kívánt fehérjét termelik. A RNS­­-szelekciós hibridizálást választottuk, mint­hogy ez a legkényelmesebb és a leginkább eredményt ígérő módszer a primer szűrővizs­gálat céljaira. A) RNS-szelekciós hibridizálási vizsgálat 1. A kezdeti vizsgálat áttekintése Most a 2. ábrára utalva ismertetjük a re­kombináns DNS-molekulák elkülönítését a fent említett klón-könyvtárból származó kö­rülbelül 46 karbenicillinre érzékeny és tetra­­ciklinnel szemben rezisztens klón egyedi kul­túráiból („A” lépés; a 2. ábrán két klón két ele­­gyét mutatjuk be). A rekombináns DNS-mo­­lekulákat hasítottuk és olyan teljes RNS-sé hibridizáltuk őket, amely tartalmazza a fen­tebb leírt módon előállított HuIFN-ß mRNS-t („B" lépés). Valamennyi rekombináns DNS­­-molekula — teljes RNS hibridet elkülönítet­tük a nem hibridizált teljes RNS-től („C" lé­pés). A hibridizált teljes RNS-t kinyertük a hibridekből és tisztítottuk őket („D” lépés). A kinyert RNS-t a fentebb leírt módon vizs­gáltuk HuIFN-ß mRNS aktivitásra („E" lé­pés). Ha és csakis a rekombináns DNS-mo­lekulák elegye tartalmaz egy olyan rekom­bináns DNS-molekulát, amelynek van olyan beiktatott nukleotid-szekvenciája, amely ké­pes szigorú hibridizációs feltételek között a HuIFN-ß mRNS-re hibridizálni a teljes RNS- ben, akkor az e hibridből felszabadított mRNS HuIFN-ß képződését fogja oocitákban előidéz­ni, minthogy a bármely más rekombináns DNS -molekula — teljes RNS hibridből felszaba­dított mRNS nem mutat IFN-ß-rokonsägot. Ha egy 46 klónból álló csoport pozitív reak­ciót adott, akkor e kiónokat 6 alapcsoportba osztottuk (4 alcsoport 8—8 klónnal és 2 al­csoport 7—7 klónnal) és mindegyik alcsopor­tot újra vizsgáltuk a fenti módon. Ezt az el­járást addig folytattuk, míg egyetlen olyan kiónt tudtunk azonosítani, amely pozitív reak­ciót ad e vizsgálatban. Nincsen biztosíték arra, hogy akár a re­kombináns DNS-molekulák, akár az általuk transzformált baktérium-kultúrák, amelye­ket a fenti módon azonosítottunk, valóban tartalmazzák a teljes IFN-ß cDNS-szekven­­ciát, vagy akárcsak arra sem, hogy a DNS­­-szekvencia valóban kódol IFN-ß-ra vagy le­hetővé teszi, hogy a klón az IFN-ß immuno­lógiai vagy bakteriológiai aktivitását muta­tó peptideket exprimáljon. A rekombináns DNS-molekulák azonban bizonyára tartal­mazni fognak az IFN-ß mRNS-t kódoló szek­venciával komplementer terjedelmes nukleo­­tidokat. Ezért a rekombináns DNS-moleku­­la legalább forrásként használható olyan min­tához, amely más rekombináns DNS-mole­kulák és ezekkel transzformált kiónok gyors szűrővizsgálatára, hogy így azonosíthassuk további olyan klón-csoportokat, amelyek eset-26 5 13 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65

Next

/
Thumbnails
Contents