193504. lajstromszámú szabadalom • Eljárás lúgos foszfatáz géneket tartalmazó rekombinált plazmidok előállítására és alkalmazására

-(- A 0,2% kazaminosavval dúsított LP táp­talajt (K. Kreuzer et al., Genetics 81., 459— 468., 1975) 5%-nyi mennyiségben beoltjuk a plazmidot tartalmazó megfelelő törzs tenyésze­tével és 23 órán át 37°C-on rázatjuk a tenyé­szetet (E5oo=7,0). Ezután 1 ml fermentlevet 20 percen át 37°C-on 0,01 ml toluollal ráza­­tunk. A toluollal kezelt sejtszuszpenzióban Kreuzer et al. szerint meghatározzuk a lúgos foszfatázt. A foszfatáz-aktivítást egység/ml fermentlé értékben adjuk meg. 1 egység az az enzim-mennyiség, amely a kísérleti körülmé­nyek között percenként E410=1,0 extinkció-nö­­vekedést idéz elő.-)-+ Az E. coli HB101 más vektorok nélkül, vagy azokkal együtt ugyanezt a foszfatáz-ak­tivítást mutatja. A találmány szerinti eljárással előállít­ható rekombinált plazmidok új, szerkezetüket illetően egyértelműen meghatározható vegyi anyagok. A találmány szerinti plazmidok ezenkívül különösen előnyösen alkalmazhatók plazmid­­-vektorként eukarióta fehérjék kifejlesztésé­re E. coli-ban és más baktériumokban annak következtében, hogy fúziós fehérjéket képez­nek lúgos foszfatázok N-terminális rész-szek­venciáival. Az alábbiakban még részletesebben rámutatunk arra, hogy milyen előnyöket nyúj­tanak más plazmid-vektorokkal szemben. A DNS in vitro, plazmid- vagy fág-vekto­­rok alkalmazásával végzett rekombinációjára irányuló eljárás, és az ennek során keletke­zett hibrid molekulák transzformáció vagy kereszt-fertőzés révén megfelelő gazdasejtek­re való átvitele lehetővé teszi, hogy maga­sabb eukarióta sejtekből származó DNS-t is átvigyünk, szaporodásra képes alakban, bak­tériumokra (K.N. Timmis, Progress in Mole­cular and Subcellular Biology, F.E.Hanh ed., Vol.6., 1.1.—58., Springer Verlag, 1978). Az így transzformált baktériumsejtek azonban általában nem képesek az átvitt eukarióta DNS-ben található géneknek megfelelő fehér­jék előállítására. Magasabbrendű eukarióta sejtekből szár­mazó gének baktériumokban való kifejlesz­tése csak különleges plazmid-vektorok alkal­mazásával válik lehetségessé, amelyek olyan szerkezetűek, hogy az eukarióta gén beépül­het a plazmidban jelenlevő bakteriális gén­be, amely önmagában képes eredményezni egy megfelelő, jól jellemezhető bakteriális fehérje szintézisét. Ha az eukarióta DNS a megfelelő orientációval és a megfelelő trip­­lett-rácsba épül be, az egy ilyen hibrid mole­kulával való transzformáció segítségével elő­állított baktériumsejtek olyan fúziós fehér­jét termelnek, amely az amino-terminálís ré­szen a bakteriális aminosav-szekvencia egy részével kezdődik, és a karboxil terminális irányában a beépült eukarióta DNS-nek meg­felelő aminosav-szekvenciával folytatódik. A fúziós fehérjéből megfelelő enzimológiai vagy proteinkémiai módszerekkel — pl. a kapcsoló­7 dási helyen jelenlevő metionin brómcianiddal végzett elbontásával — az eukarióta fehérje nyerhető ki. Egy ilyen polipeptíd-szintézisre az első példát a (14 aminosavból álló) szomatoszta­­tiri peptid-hormon mikrobiológiai úton végzett előállítása szolgáltatta, amelyet egy bakteriá­lis enzimmel, a beta-galaktozidázzal alkotott fúziós fehérje alakjában kaptak meg (K- Ba­kura et al., Science 198., 1056—1063., 1977). Rövidesen hasonló módon sikerült az emberi inzulin A és B láncának mikrobiológiai szin­tézise, amelynek során — a szomatosztatin esetéhez hasonlóan — teljesen szintetikus DNS szekvenciákat vittek rá egy beta-galak­­tozidáz génre (28 48 051, 28 48 052, 28 48- 053 sz. NSZK-beli nyilvánosságrahozatali irat). Egy további példa olyan baktériumtör­zsek előállítása, amelyek patkány-inzulint (a bakteriális beta-laktamáz enzimmel képe­zett fúziós fehérje alakjában) (L. Villa-Koma­­roff et al., Proc.Natl.Acad.Sci.USA 75., 3727— 3731., 1978) és egy beta-galaktozidáz szek­venciával rendelkező ovalbumin szerű fehér­jét (O. Mercereau-Puijalon et al., Nature 275., 505—510., 1978) termelnek. Ennek a mikro­biológiai polipeptid szintézis módszernek al­kalmazhatnak kell lennie más eukarióta pep­­tidek és fehérjék előállítására is, amelyek más módon részben csak nagyon nehezen férhe­­tők hozzá (amilyen pl. az emberi növekedési hormon, az interferon, az aktív immunizá­láshoz szükséges vírusfehérjék, specifikus antitestek stb.) A rekombinált DNS alkalmazásával vég­zett mikrobiológiai polipeptid-szintézisek sike­re igen jelentős mértékben függ az alkalma­zott vektorok tulajdonságaitól. Az előbbi pél­dákban olyan plazmid vektorokat alkalmaz­ik, amelyeknél az idegen DNS beta-galak­tozidáz vagy beta-laktamáz génekbe épült be. Ez a két bakteriális fehérje mint fúziós partner azonban hátrányos is lehet az idegen DNS kifejlesztése szempontjából. A beta-ga­­laktozidázokkal fúziós fehérjék — az eredeti enzimhez magához hasonlóan — megfelelő összetételű táptalajban (beta-galaktozidáz indukció) aránylag nagy mennyiségben ( 105 molekula/sejt) állíthatók elő, a fehérjéket azonban a sejtek pl. nem választják ki a közeg­be és ezért ezek csak a sejt feltárása után kü­löníthetők el. A beta-laktamáz és az ezzel kép­zett fúziós fehérjék a szintézis során a sejt­membránon keresztül a periplazmatikus tér­be továbbítódnak, ami egyszerű elkülönítést tesz lehetővé (nincs ugyanis szükség sejt-fel­tárásra), a kitermelés azonban itt ismét ala­csony (kb. 100 molekula/sejt). A találmány tárgyát képezi olyan plazmid­­-vektorok előállítása is, amelyek lehetővé te­szik az idegen DNS-nek a lúgos foszfatáz gén­be való beépülését. Az ilyen plazmid-vekto­rokkal képezett hibrid-plazmidok vagy -fágok segítségével transzformált sejtek ezután olyan fúziós fehérjéket állítanak elő, amelyek ami­­nosav-szekvenciáját egyrészt az alkálikus 8 5 193504 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65

Next

/
Thumbnails
Contents