191849. lajstromszámú szabadalom • Eljárás gyógyászati hatású vegyületek és ezeket tartalmazó készítmények előállítására új hromobacterium violaceum törzs felhasználásával

5 191849 6 amely két hét alatl fejeződik be. (c) Fiziológiai jellemzők (a tenyésztés hőmér­séklete minden esetben 27 °C volt, ettől eltérő hőmérséklet esetén azt külön meg­jelöljük) (1) nitrát redukció: nitrátból nitrit-kóp­­zódés (2) denitrifikáció (módszer: Komagata és mtársai szerkesztésében Takeharu Ha­­segawa;) Classification and Identifica­tion of Microorganisms, 223. oldal, To­kyo University Kiadó, 1975); pozitív, gázképződés nincs (3) MR-teszt: pozitív (0,5* glükóz, 0,7* pepton és 0,5* NaCl összetételű kö­zegben pH=7,5) (4) VP-teszt: negatív (közeget lásd (3) pontnál) (5) indol képződés: negativ (6) hidrogén-szulfid képződés [TSI (Triple Sugar Iron Agar) Agar Medi­um,/ Eiken, Japán gyártmány]: nega­tív (7) keményítő hidrolízis: negatív (8) citromsav felhasználós: pozitív, Kóser citrát/ és Christensen/ agar közegen (9) szervetlen nitrogénforrás felhasználás (nátrium-szulfát, ammónium-szulfát és nátrium-glutamát): bármilyen szervet­len nitrogénforrás felhasználható a tenyésztésnél (10) pigment-képződés (King A és King B közeg, Eiken gyárt.): igen csekély mennyiségű sárga pigment képződik mindkét közegen (11) ureáz (Uria közeg, Eiken gyártm.): negatív (12) oxidáz: pozitív (13) kataláz: pozitív (14) tenyésztés hőmérséklete és pH tar­tománya: hőmérséklet: 12° és 37° kö­zött, különösen előnyösen 27° és 37° között, pH: 5,0 és 8,6 pH érték kö­zött, különösen előnyösen 6,0 és 7,8 pH érték között (15) oxigénszükséglet: aerob (esetleg ana­erob) (16) O-F teszt: fermentativ (Hugh és Leifson módszere szerint) (0,2* pep­ton, 0,5* KzH.PO«, 0,03* agar és 0 0,008* brómtimol kék tartalmú közeg­ben, pH=7,l) (17) sav és gázképződés szacharidokból (Hugh és Leifson kultúra): sav kép­ződik: D-glukozból, D-fruktózból és trehalózból, nem képződik sav: L-ara­­binózból, D-xilózból, D-mannózból, D­­-galaktózból, maltózból, szacharózból, laktózból, D-szorbitból, D-mannitból, inozitból, glicerinből, keményítőből, adonitból, cellobiózból, dulcinból, inu­­linból, melibiózból, melezitózból és raffinózból. Egyik szacharidból sem képződik gáz. (18) kazein hidrolízise: a mikroorganiz­musokat kazein-agar szalag tenyé­szetben tenyésztettük (pH 7,4), ame­lyet úgy készítettünk, hogy húsle­­ves-agarhoz fölözött tejet adtunk 5* koncentrációban, majd a keveréket megszilárdítottuk. 24 óra elteltével a kazein elemésztődótt és hidrolízise a tenyésztés 8. napján teljesen befeje­ződött. (19) bibor pigment mérése a látható spektrumban: a húsleves-agar ferde tenyészetben tenyésztett bibor sejte­ket etanollal extraháltuk, és meghatá­roztuk az extraktumok abszorpciós spektrumát a látható tartományban: abszorpciós maximum: 573 nm, abszorpciós minimum: 430 nm. A pigmenteket 10X-os etanol-szulfát­­ban oldva zöld színű oldat képződik, amelynek abszorpciós maximuma 693 nm. Ez azt mutatja, hogy a bibor pigment violacein pigment (lásd Bér­­gey's Manual of Determinative Bacte­­rology, 8 kiadás, /p 354. oldal/). összegezve a fentiekben felsorolt jellem­zőket, azok azt mutatják, hogy a BMG361-CF4 Gram-ne gatív, fakultative anaerob baktérium, poláris és laterális flagellákkal. A kolóniák bibor pigmentet tartalmaznak, amelyekről a látható spektrumban végzett méréssel kimu­tattuk, hogy az violacein. A fenti tulajdonsá­gok meghatározását a Bergey's Manual of Determinative Bacteriology 8. kiadás alapján végeztük, és az eredmények azt mutatják, hogy a BMG361-CF4 törzs a Chromobacterium nemhez tartozik. Ez a nem két fajt foglal magában, nevezetesen a C. violaceum-ot és a C. lividum-ot. A BMG361-CF4 törzs tulajdon­ságai nagyon hasonlóak a C. violaceum faj törzseihez. Pontosabban a BMG 361-CF4 törzs tisztán megkülönböztethető a C. lividumtól, 37°-os tenyésztési hőmérséklete, szachari­dokból való savképzése (savat képez treha­lózból, nem képez savat arabinózból és xilóz­­ból) kazein hidrolízise, stb. alapján. Ennek megfelelően a BMG361-CF4 törzset Chromo­­bacterium violaceum BMG361-CF4 törzsként azonosítottuk. A találmány szerinti eljárásnál az Arpha­­menine-termelő mikroorganizmusok tenyészté­se során az ismert tápanyagokat alkalmazhat­juk. így például szénforrásként bármely ke­reskedelmi forgalomban beszerezhető szén­forrás használható, igÿ például zsírok és szénhidrátok, mint glicerin, glükóz, láktóz, szacharóz, keményítő, maltóz, vagy melasz. Nitrogénforrásként alkalmazhatunk peptont, hús-extraktumot, kukoricalekvárt, gyapot­­mag-lisztet, földimogyoró-lisztet, szójabab­lisztet, kukorica-sikér-lisztet, hal-lisztet, éle8ztó-extraktumot, N-Z-amint/ (gyártó: Wa­­ko, Osaka, Japán), kazeint, nátrium-nitrátot, ammónium-nitrátot és ammónium-szulfátot. Szervetlen tápforrásként nátrium-klorid-5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 4

Next

/
Thumbnails
Contents