171719. lajstromszámú szabadalom • Eljárás új antibiotikum előállítáásra

5 171719 6 tartozó mikroorganizmusok tenyésztéséhez szokásos tápközeget felhasználhatunk. Szükséges, hogy a tápkö­zeg egy vagy több asszimilálható szénforrást és nitrogén­forrást, valamint ásványi sókat tartalmazzon. Ezek a komponensek mind definiált alkotórészként, mind ösz­szetett keverék, főleg biológiai eredetű termékek alak­jában lehetnek jelen. Szénforrásként bármely szokásos szénforrás jöhet szóba, így például keményítő, melasz, savópor, dextrin, cukor (például szacharóz, maltóz, glükóz, laktóz, szorbit) és glicerin. Nitrogénforrásként bármely szokásos szerves vagy szervetlen nitrogénfor­rást alkalmazhatunk. Példaként az alábbiakat soroljuk fel: szójaliszt, gyapotmagliszt, lencseliszt, sárgaborsó­liszt, oldható és oldhatatlan növényi proteinek, a kuko­rica áztató leve, élesztőkivonatok, peptonok, húskivo­natok, valamint ammónium-sók és nitrátok, például ammóniumklorid, ammóniumszulfát, nátrium- és ká­liumnitrát. A tápközegben jelenlevő ásványi sók például az alábbi ionokat adják: Mg+ + , Na+, K+, Ca++, NH4+, Cl", S0 4 —, P0 4 , N0 3 ", valamint a szo­kásos nyomelemek, így réz, vas, mangán, molibdén, cink, kobalt és nikkel ionjait. Amennyiben a szén- és nitrogénforrások, illetve az alkalmazott víz ezeket a sókat és nyomelemeket nem tartalmazza kielégítő meny­nyiségben, a tápközeget célszerűen kiegészítjük. A táp­talaj összetétele általában attól függ, milyen anyagok állnak különösen előnyösen rendelkezésre. A találmány szerinti eljárás foganatosításakor elő­nyösnek bizonyulhat, hogy az Actinoplanes-törzsek te­nyésztésének elején az oldható tápanyagokat csak vi­szonylag kis koncentrációban alkalmazzuk, majd a te­nyésztés első három napja alatt gyakori adagolással ad­juk a tenyészethez az oldható tápanyagokat steril, vi­szonylag koncentrált oldatok alakjában. A növekvő tenyészetek pH értékét előnyösen 6,5 és 7,5 között tart­juk. Ha a pH érték a savas tartományba eltolódik, vala­milyen szerves vagy szervetlen bázist, előnyösen kalcium karbonátot adagolunk. A pH értéket a fermentációs technológiában szokásos módon automatikusan is sza­bályozhatjuk steril szerves vagy szervetlen sav, például kénsav, vagy steril lúg, például nátriumhidroxid szaka­szos injektálásával. A tenyésztés alatt célszerűen biztosítjuk, hogy a mik­roorganizmusok kielégítő mértékben érintkezzenek az oxigénnel és a tápanyagokkal. Ez általánosan ismert módon, így rázassál vagy keveréssel történhet. A tenyésztés mintegy 20 és 40 °C közötti, előnyösen 25 és 35 °C közötti, különösen előnyösen mintegy 28 °C hőmérsékleten végezzük. A tenyésztés időtartama külön­böző lehet, például a tápközeg összetételétől és a tenyész­tési hőmérséklettől függ. Az optimális feltételeket a mik­robiológiában járatos szakember könnyen állapíthatja meg. Kísérleteink során azt tapasztaltuk, hogy a tápközeg­ben feldúsuló antibiotikum a 2—12., főleg 5—8. napon eléri a maximális koncentrációt. Mint mikrobiológiai eljárásoknál általában, a kul­túraközeg idegen mikroorganizmusokkal való fertőzé­sének lehetőségét célszerűen kiküszöböljük. E célból a szokásos intézkedéseket tesszük, amilyen például a tápközeg sterilizálása, a használt edények és a levegőz­tetéshez használt levegő csíramentesítése. A sterilizálást gőzzel vagy száraz sterilizálásként végezhetjük. Ha a tenyésztés során nemkívánatos mennyiségű hab képződik, a szokásos habzás elleni anyagokat adagol­juk, így például folyékony zsírokat, olajokat, olaj—víz­emulziókat, paraffinokat, hosszabb szénláncú alkoholo­kat, így oktadekanolt, szilikon-olajokat és polioxietilén-, illetve polioxipropilén-vegyületeket. A habzást mecha-5 nikai úton (például a centrifugális erő kihasználásával) fékezhetjük, illetve megszüntethetjük. A találmány szerinti antibiotikumot a micéliumból és/vagy a tenyészetből ismert fizikai-kémiai módszerek­kel izolálhatjuk. Az elkülönítést például a szokásos 10 extrakciós, kicsapásos és/vagy kromatográfiai eljárások segítségével végezhetjük. Az antibiotikum további tisz­títását (finomtisztítását) szintén az említett módszerek segítségével végezhetjük. Sok esetben azonban a finom­tisztítás nem szükséges, mert az esetleg meglevő szeny-15 nyeződések az antibiotikum hatását nem rontják. Az el­különítés és tisztítás során arra kell ügyelnünk, hogy a pH érték 7,0 felett, előnyösen 7,0 és 9,0 között legyen. A pH érték beállításához szervetlen és szerves bázisokat, például ammónium-hidroxidot, alkáli- és alkáliföldfém-20 hidroxidokat, alkáli- és alkáliföldfémkarbonátokat és -hidrogénkarbonátokat, így káliumhidroxidot, nátrium­hidroxidot, nátriumkarbonátot, nátriumhidrogénkarbo­nátot, kalciumkarbonátot, trialkilaminokat, így trietil­amint, morfolint és piridint alkalmazhatunk. Az elkü-25 lönítés, illetve tisztítás során azt a frakciót, amelyben a találmány szerinti antibiotikum a legmagasabb kon­centrációban, illetve a legtisztábban van jelen, a szokásos fizikai-kémiai eljárások segítségével határozzuk meg, így például a 267 nm-nél fellépő sáv megmérésével, az 30 Rf értékek megmérésével, vagy előnyösen a mikróbaelle­nes aktivitás vizsgálatával. Az utóbbi esetben különösen előnyösen az Escherichia coli (például Escherichia coli ATCC 9637) elleni aktivitást vizsgáljuk meg a szokásos lemezpróbával (vö.: P. Klein, Bakteriologische Grund-35 lagen der chemotherapeutischen Laboratoriumspraxis, Springer kiadó, Göttingen [1957], 86. old.). Folyékony vizes tápközeg alkalmazása esetén a talál­mány szerinti antibiotikumot például az alábbiak szerint izolálhatjuk és tisztíthatjuk: a tenyészléhez valamilyen, 40 vízzel elegyedő oldószert adunk és az elegyet jól elke­verjük. Ezzel egyrészt a hatóanyagot extraháljuk a micé­liumból, másrészt gyakran a tenyészlé is tisztul. Vízzel elegyedő oldószerként például rövidszénláncú alkilalko­holokat, így metanolt, etanolt, n- és i-propanolt vagy 45 terc-butanolt, továbbá dimetilformamidot, tetrahidro­furánt, különösen előnyösen acetont alkalmazhatunk. Az oldószer mennyiségét széles határokon belül változ­tathatjuk. Célszerűen a tenyészlére számítva azonos térfogatú oldószert adagolunk. Alapos keverés után az 50 oldhatatlan részeket (micéliumot, kicsapódott proteine­ket stb.) szűréssel, centrifugálással, ülepítéssel stb. el­választjuk. A vizes-szerves oldatot célszerűen vákuumban például az alkalmazott tápközeg eredeti térfogatára bepároljuk. 55 Adott esetben bázissal, előnyösen nátriumhidroxiddal 7 feletti pH értéket, például 9-et állítunk be. Az így ka­pott oldatot a továbbiakban „I. oldat"-nak nevezzük. Az I. oldatból az antibiotikumot extrakcióval, kicsa­pással vagy kromatográfiás úton izoláljuk, majd adott 60 esetben tisztítjuk. Kromatográfiai módszerként az osz­lopkromatográfiát vagy a preparatív vékonyréteg-kro­matográfiát alkalmazzuk. Adszorbensként minden nem­savas szervetlen vagy szerves adszorbenst használha­tunk, például alumíniumoxidot, kovasavgélt, magné-65 ziumszilikátot, aktívszenet, cellulózt, cellulóz-származé-3

Next

/
Thumbnails
Contents