169145. lajstromszámú szabadalom • Eljárás linkomicin előállítására

13 169145 14 (az 5. táblázat folytatása) Vizsgált jellemző, Ül. reagens S. pseudogriseolus chemovar. linmyceticus NRRL 3985 S. variabilis chemovar liniabilis NRRL 5618 Légmicélium szürke — fehér — vörös szürke — fehér Melanin negatív negatív Spóraláncok rövid — középhosszú, egyenes — - nyíltspirálos - spirális rövid - középhosszú, hajlékony -nyíltspirálos Spórák ovális - oblát. ovális — oblát Spórafelület kissé tüskés — sima sima — kissé bolyhos Kalcium-malát-agar a malátot nem szolubilizálja a malátot szolubilizálja Lefölözött tej-agar a kazeint a növekmény alatt szolubilizálja a kazeint szolubilizálja Tirozin szolubilizálja szolubilizálja Xantin szolubilizálja szolubilizálja Tápkeményítő hidrolizálja a növekmény környezetében A linkomicin előállítása során a fenti jellemzők­kel rendelkező új mikroorganizmust vizes tápta- 30 lajon szubmerz aerob körülmények között te­nyésztjük. Kisebb mennyiségű antibiotikum előállí­tására felületi tenyésztést is alkalmazhatunk. A mikroorganizmust szénforrást (például valamely asszimilálható szénhidrátot) és nitrogénforrást (pél- 35 dául valamely asszimilálható nitrogénvegyületet vagy fehérje-anyagot) tartalmazó táptalajon te­nyésztjük. Szénforrásként elsősorban glükózt, nyers (barna) cukrot, szacharózt, glicerint, keményítőt, kukoricakeményítőt, laktózt, dextrint, melaszt és 40 hasonlókat használhatunk fel. Nitrogénforrásként előnyösen kukoricalekvárt, élesztőt, sörélesztő­-autolizátum és tej-szárazanyagok keverékét, szója­bablisztet, gyapotmaglisztet, kukoricalisztet, tej-szá­razanyagokat, pankreász-enzimmel lebontott ka- 45 zeint, cefre-szárazanyagokat, állati peptont, hallisz­tet, húslisztet, csontlisztet és hasonlókat alkalmaz-" hatunk. A felsorolt szén- és nitrogén-forrásokat keverékek formájában is felhasználhatjuk. Nyom­elemeket, például cinket, magnéziumot, mangánt, 50 kobaltot, vasat és hasonlókat rendszerint nem kell a fermentációs közeghez adnunk, mert a fermen­tációs közeg előállításához általában csapvizet és tisztítatlan komponenseket használunk fel, amelyek már megfelelő mennyiségben tartalmazzák a szűk- 55 séges nyomelemeket. A találmány szerint a linkomicin-termelés során a mikroorganizmust körülbelül 18—45 C°-on, elő­nyösen körülbelül 20—45 C°-on tenyésztjük. Az 60 optimális linkomicin-hozamot általában 2-10 nap alatt érjük el. A fermentlé végső pH-értéke az adott esetben jelenlevő pufferanyag mennyiségétől és minőségétől, valamint a kezdeti pH-értéktől füg­gően változik. 65 hidrolizálja Ha a tenyésztést nagy fermentorokban végezzük, a túlzott mértékű üledékképződés és az ezzel járó kapacitáscsökkenés elkerülése érdekében oltóanyag­ként a mikroorganizmus spórái helyett célszerűen a mikroorganizmus vegetatív formáit használjuk fel. Egy előnyös módszer szerint tehát először vegetatív inokulumot állítunk elő úgy, hogy az oltótenyészet táptalaját talajon vagy ferde tenyészetben tenyész­tett mikroorganizmussal oltjuk be. Az így kapott friss, aktív vegetatív inokulumot aszeptikus úton visszük át a nagy fermentorokba. Az oltótenyészet­hez felhasznált táptalaj a linkomicin-termeléshez felhasználttal azonos vagy attól eltérő' lehet, alap­vető követelmény azonban, hogy a táptalaj a mik­roorganizmus növekedése szempontjából kedvező feltételeket biztosítson. A találmány szerinti eljárássá termelt linkomi­cint a 3 086 912 sz. Amerikai Egyesült Államok­-beli szabadalmi leírásban ismertetett módon külö­nítjük el. A linkomicint előnyösen a következőképpen kü­lönítjük el a fermentációs közegtől: Első lépésben a fermentációs közeg szilárd komponenseit, azaz a micéliumot és az oldhatatlan szilárd anyagokat szokásos módon, például szűréssel vagy centrifugá­lással eltávolítjuk. Az így kapott szűrt vagy centri­fugált fermentlevet ezután valamely sztirol-divinil­benzol alapú nem-ionos makroporózus kopolimer gyantán bocsátjuk át. A felhasználható gyantatípu­sokat a 3 515 717 sz. Amerikai Egyesült Államok­-beli szabadalmi leírás ismerteti. E típusba tartozik például az Amberlite XAD-2 kereskedelmi nevű gyanta. A fermentlé átbocsátása után a gyantát 95 : 5 térfogatarányú metanol-víz eleggyel eluáljuk, az eluátumot frakciókba gyűjtjük, és meghatároz­zuk az egyes frakciók biológiai aktivitását. A meg­határozáshoz mikroorganizmusként Sarcina lutea-t 7

Next

/
Thumbnails
Contents