168378. lajstromszámú szabadalom • Eljárás orgotein kromotográfiás elkülönítésére egy lépésben

7 168378 8 valamint a kiindulási oldatba így nem kerülnek be más típusú sók vagy szerves anyagok. Az oldhatatlan sejt-alkotórészek — melyek az ép sejt mintegy 2 súly%-át képezik - eltávolítása után az elroncsolt vörös vérsejtek oldható fehérjeinek oldatát úgy érintkeztetjük valamilyen kromatográfiában hasz­nált adszorbenssel, hogy azon az orgotein adszor­beálódjon. Ha az elkülönített extraktum vagy a hígított vörösvérsejt-elegy ionerőssége nagyobb, mint mintegy 0,01 mól, szükségessé válik ionerősségük csökkentése, hogy biztosítható legyen az orgotein specifikus ad­szorpciója az ioncserélő gyantán. Az ionerősség csökkentését legkedvezőbben hígítás vagy dialízis útján érjük el, az utóbbi esetben vízzel vagy előnyö­sen kis ionerősségű pufferrel, különösen előnyösen kromatográfiás elkülönítés során használt pufferrel, azaz foszfáttal szemben végzett dialízis útján. Minthogy az oldott sók nagy mértékben befolyá­solják az orgotein adszorbeálhatóságát a kromatog­ráfiás adszorbensen, a kromatográfiai műveleti lépéshez használt oldható fehérjeoldat kis ionerőssé­gű kell hogy legyen, (kisebb mint mintegy 0,01 mólos), vagyis 0,001-0,005 mólos oldat előnyös. Ha az oldat ionerőssége nagyobb, az esetben az ionerős­ség könnyen csökkenthető hígítás vagy egyszerű, vízzel vagy mintegy 1-5 X 10~3 mól ionerősségű pufferrel, előnyösen a kromatográfiás elkülönítés során használt pufferrel, azaz foszfáttal szemben végzett membrán-dialízis útján. A kiindulási oldat ionerősségét biztosító só pontos jellege nem kritikus paraméter. A foszfát-sók előnyö­sek, minthogy a kívánt, mintegy 6 körüli pH-érték ezekkel a pufferekkel könnyen fenntartható a kívánt alacsony ionerősség mellett. A találmány szerinti eljárás foganatosítására elő­nyös pH mintegy 6, azaz 5,7—6,3, beleértve a kromatográfiás adszorbensen történő orgotein­adszorpciós lépést is. Azonban a szelektív eluálási lépés jobban függ a pH-értékétől, mint az adszorpciós műveleti lépés. Ezért — bár ez nem előnyös — az oldható fehérjék kiindulási oldatának a pH-értéke lehet valamivel kissebb és nagyobb is, azaz pH 4 és pH 8 között mozoghat. Ilyen esetekben a kromatográfiás adszorbenst a minta felvitele előtt ki kell egyen­súlyozni majd a mintegy pH 6 értékű eluálási pH-értéket be kell állítani, mielőtt hozzákezdenénk az orgotein szelektív eluálásához. A találmány szerinti eljárás foganatosítására hasz­nált kromatográfiai adszorbens enyhén bázikus cso­portokat tartalmazó ioncserélő gyanta, mely savas ionok (anionok) megkötésére hajlamos. Ilyen típusú ioncserélő gyanták az ismert cellulóz-és poliszacharidbázisú ioncserélő gyanták, így többek között a (rövidszénláncú)-alkilamino-(rövidszén­láncú)-alkil-cellulózok, azaz például a dietil-amino­etil-cellulóz (DEAE), a trietil-arnino-etil-cellulóz (TEAE), a dietil-amino-etil-Sephadex és az úgyneve­zett QAE-Sephadex (kvaterner amino-etilezett térhálósított dextrán-gyanta), ahol az utóbbiak a Pharmacia svéd cég termékei. Az említett gyanták adszorpciós kapacitása általában mintegy 1,0-5 milli­ekvivalens/g. Például a DEAE-cellulóz kapacitása 1,0 milliekvivalens/g (száraz súly); a DEAE-Sephadex kapacitása 3,5±0,5 milliekvivalens/g; és a TEAE-Se­phadex kapacitása 0,55-0,75 milliekvivalens/g lehet. Az említett gyanták közül előnyösek a DEAE-cellu­lóz, a TEAE-cellulóz, és a térhálósított, dietil-ami­no-etil-csoportokat tartalmazó dextrán-gyanták, kü-5 lönösen a DEAE-cellulózok előnyösek. A rostos DEAE-cellulózok előnyösek az átfolyási sebesség következtében, minthogy az nagyobb, mint a kismé­retű granulátum esetén. Azonban az utóbbi cellulóz­változat felbontóképessége valamivel nagyobb. 10 Az orgotein elkülönítése az ioncserélő gyanta szelektív eluálása útján történik. A találmány szerinti eljárás értelmében az orgoteint más fehérjékkel alko­tott elegyéből ioncserélő gyantából készült oszlopon adszorbeáljuk; a hemoglobint és a többi nem adszor-15 beálódott fehérjét az oszlopból kimossuk; majd az orgoteint az oszlopból szelektíven euláljuk; és a lényegében tiszta orgoteint tartalmazó eluátum-frak­ciókból az orgoteint elkülönítjük. Bár ezek a műveleti lépések rendszerint kapcsolódnak a gyantához mint a 20 kromatográfiás oszlop alapjához, szakember számára nyilvánvaló, hogy az említett lépésekkel egyenértékű változatok is alkalmazhatók, így például a gyanta szuszpendálható az oldható fehérjék kiindulási oldatá­val. 25 A használt ioncserélő gyanta mennyisége - bár nem kritikus — hat az elkülönített orgotein termelési hányadára és tisztaságára. Előnyösen mintegy 0,25—0,5 ml gyantát haszná­lunk az ép vörös vérsejtek egy milliliterjének vagy 30 mitegy 100 mg extrahált fehérjének a kezelésére, azzal számolva, hogy a kiindulási szövet mintegy 15% oldható fehérjét tartalmaz. A gyantának a fehérjéhez viszonyított nagyobb aránya (térfogat/súly) semmifé­le előnnyel nem jár. 35 Minthogy a hemoglobin és a mioglobin az oldható fehérjék kiindulási oldatából az ioncserélő gyantán nem adszorbeálódnak alacsony izoelektromos pont­juk következtében, eltávolításuk az oszlopból más nem adszorbeálódott fehérjékkel együtt meglehetősen 40 egyszerű vizes eluálószerrel, előnyösen olyan eluáló­szerrel végzett mosás útján, melynek a pH-értéke mintegy 6. Az orgotein eluálásának megelőzésére a használt vizes közeg ionerőssége kisebb kell hogy legyen, mint mintegy 0,01 mól. Ezen műveleti lépés 45 során vizet vagy előnyösen a fentiekben ismerte­tett puffert, különösen előnyösen foszfát-puffert használunk. Gyakran az oszlop üres térfogatának többszöröse szükséges az oszlopból a hemoglobin és más, nem adszorbeálódott fehérjék eltávolítására. A 50 hemoglobin távozása könnyen észlelhető, minthogy az oszlopot elhagyó folyadék hatására elszíneződik. Amennyiben a hemoglobint és a többi, nem adszorbeálódott fehérjét az oszlopból tökéletesen eltávolítottuk, a következő lépés az orgotein elkülöní-55 tése a többi adszorbeálódott fehérjétől oly módon, hogy lényegében tiszta orgoteint tartalmazó eluátu­mot kapjunk. Ez végezhető az orgoteinnek az oszlop­ból végzett szelektív eluálása útján mintegy pH 6, azaz 5,7—6,3 értékű pH-ra beállított vizes eluálószert 60 használva és az ionerősséget úgy változtatva, hogy az adszorbeálódott fehérjék egymás után eluálódjanak. Lényegében tiszta orgotein egy lépésben végezhető, kromatográfiás elkülönítésére vonatkozó találmá­nyunk döntő jellemzője, hogy az adszorbeálódott 65 fehérjék eluálása egymás után menjen végbe, azaz

Next

/
Thumbnails
Contents