157970. lajstromszámú szabadalom • Eljárás antibiotikum-komplex előállítására

7 157970 8 A mikroorganizmust előnyösen folyékony táp­talajon, aerób körülmények között, 23—37 C°, célszerűen 28 C° hőmérsékleten, 60—160 óra idő­tartamon át tenyésztjük. A pH-érték az alkal­mazott fermentációs táptalaj függvényében 6—9 között váltakozhat. Szénforrásként glukóz, ke­ményítő, dextrin, különböző lisztek (szója-, ku­korica-, búzaliszt stb.), gabonaáztatólé, és más szokásosan használt anyagok alkalmazhatók. Nitrogénforrásként a fent említett nitrogén-tar­talmú komplex anyagokon kívül kazein, kazein­hidrolizátum, gyápotmagliszt és ammóniumsók (szulfátok, foszfátok, kloridok) és más egyébként szokásos anyagok alkalmazhatók. Az antibiotikum előállításához alkalmazott ás­ványi sók az alkalmazott táptalaj függvényében változnak. A kalciumkarbonát csaknem mindig jelen van, ezenkívül kloridok, szulfátok, foszfá­tok stb. (nátrium, kálium, magnézium, vas, réz, cink, mangán és kobalt kationokkai) adagol­hatok. A fermentációt végezhetjük Erlenmeyer-lom­bikokban, és különböző térfogatú laboratóriumi vagy üzemi fermentorokban. Ha a fermentáció befejeződött, az antibioitikum-komplexet alkal­mas oldószerrel megfelelő körülmények között extiaháliuk a tenyészfolyadékból, és kromatog­rafáló oszlopra való adszorbeáltatással szétvá­lasztjuk az antibiotikumokra. Az antibiotikum-komplex koncentrációjának meghatározását a tenyészfolyadékban, a mikro­organizmus növekedési periódusa alatt úgy vé­gezzük, hogy mintákat veszünk, a nedves micé­lium etanollal való extrahálásával. Az oldószer vákuumban való ledesztillálása után a maradé­kot megfelelő oldószer (etanol, metanol, dimetil­formarnid) minimális mennyiségében felvesszük, majd vízzel hígítjuk. Ezeket a mintákat az antibiotikum-komplex iránt érzékeny mikroorganizmusokra — például Rhabditis macrocera-ra és Saccharomyces carls­bergiensis-re — vizsgáljuk meg; ennek során a vizsgálandó mintából hígítás-sorozatot állítunk elő, és ezeket az antibiotikum-komplex ismert titerű oldataival hasonlítjuk össze. Hasonló módon titrálhatók a további tisztítási .műveletek során kapott minták. Fiziokémiai tulaj donságok. Az axenomicin - antibiotikum-komplex két iinyagból áll, amelyek fiziokémiai tulajdonságai hasonlók. Ezeket az anyagokait axenomicin A-nak és axenomicin B-nek nevezzük. Ezek sár­gásfehér amorf termékek; benzolban és petrol­éterben nem oldhatók; vízben, etilacetátban, acetónban és kloroformban nehezen oldhatók; etil-, metil-, és propil alkoholban oldhatók. Re­dukálják a Fehling-oldatot és az ammóniás ezüstnitrát-oldatot, és reagálnak tetrazolkékkel. A Mólish-reakció envhén pozitív. Az anilinfta­láttal aldózra és naftorezorcinnal ketózra muta­tó cseppreakciók negatívak. A ferriklorid-reak­ció negatív. Az axenomicin A elementáranalízis során' a következő értékeket adja: C 61,74%, H 8,52%, O 28,87%. A mólsúly 1451,3. A vegyület 127—142 C°-on olvad átlátszó téglavörös gél képződése 5 közben. [a]^°D = +10,5° <c = 0,9 metanolban), R/ = 0,49 pH 7-re pufferolt szilikagélben (n-bu­tanol: ecetsav: víz = 4:0,5:1). A metanolban felvett UV-sprektrumok ab-10 szorpciós maximumokat mutatnak 249, 254 és 330 nut-nál, és „vállat" 265—268 m,«-nál. A KBr-ban felvett IV-sprektramban a követ­kező hullámhosszúságoknál (^-ban) figyelhetők IS meg sávok: 2,94; 3,44; 5,78; 6,00; 6,16; 6,24; 6,88; 7,25; 7,41; 8,61; 8,85; 9,35; 10,00; 10,40; 10,95; 11,80; 12,50. Az axenomicin B elementáranalízise a követ-20 kező értékeket szolgáltatja: C 62,8%; H 8,58%; O 27,8%. A molekulasúly 1330,2. A vegyület 122—140 C°-on olvad. [a ] 2 3° D = +5 0 (c = 0,9 metanolban), R/ = 0,61 pH 7-re pufferolt szili­kagélen (n-butanol : ecetsav : víz = 4 : 0,5 :1). 25 A metanolban felvett UV sprektumok a kö­vetkező hullámhosszúságoknál mutatnak ab­szorpciós maximumokat: 249, 254 és 330 m/i; 265—268 rn^-nál „váll" figyelhető meg. A KBr-30 ban felvett IV-spektrumban a következő hul­lámhosszaknál jelennek meg sávok (^-ban): 2,94; 3,40; 5,82; 6,00; 6,16; 6,24; 6,86; 7,25; 7,41; 8,60; 8,85; 9,35; 10,00; 10,40; 10,98; 11,80; 12,50. 35 Féreggátló aktivitás A féreggátló aktivitást „in vitro" mértük kü­lönböző férgekkel, különböző kísérleti körülmé­nyek között. 40 Laboratóriumban fenntartott Rhabditis mac­rocerca-t élesztőkivonatos agáron tenyésztet­tünk, amelyet különböző koncentrációjú anti­biotikummal kezeltünk. 45 Megfelelő tenyésztés után meghatároztuk az MHD-t (a minimális antibiotikum-dózist), amely teljesen meggátolja a vizsgált mikroor­ganizmus kifejlődését. 50 Kísérletesen fertőzött egerekből vett Sypha­cia obvelatá-t és Hymenolepís nana-t 7,5 pH-ér­téfcre pufferolt nátriumklorid-oldatokba helyez­tünk. Különböző koncentrációjú antibiotikumot adagoltunk. Különböző érintkezési idők után 55 megvizsgáltuk, a két féreg-speciesből mennyi maradt még életben, és meghatároztuk az MID~t (minimális bénító dózist), azt a legkisebb anyagmennyiséget, amely a vizsgált organiz­mus „in vitro" mozgásának meggátlására ké-60 Pes ­A II. táblázatban a minimális gátló dózis és a minimális bénító dózis értékeit adjuk meg, amelyeket 4 órás érintkezési idő után határoz-65 tunk meg. 4

Next

/
Thumbnails
Contents