154641. lajstromszámú szabadalom • Eljárás egy aszpergillopeptidáz előállítására

154641 8 verés után a keveréket szobahőmérsékletén 30 percig állni hagytuk, majd centrifugáltuk. A kicentrifugált folyadékot ezután gyapoton át­szűrtük; A tiszta szűredék extinkeióját Zeiss spektrofotométerrel mértük 280 m." hullámhossz- 5 nál. Az aszpergillopeptidáz ARL 1 pH optimu­mát 5,0—5,5-nek, a proteáz I-ét kb. 7,0—7,5-nek találtuk. Az aszpergillopeptidáz ARL l-nek az aktivi­tását szintetikus szubsztrátumokkal, nevezetesen 10 nátrium-tozil-L-arginin-etilészterrel és N-acetil­-L-tirozin-etilészterrel szemben egy pH-stat-tal (Radiometer model SBR 2/SBU 1/TTT 1) vizs­gáltuk. A kísérletet 30 C°-on és 7,4 pH-nál haj­tottuk végre. 0,05 mólos nátronlúgot használ- 15 tunk reagensként, ami megfelel 0,25 mikromól savképződés érzékenységnek a műszer 1 osztás­részére. Az egyik vizsgálati oldat 0,5 millimól nátrium-tozil-L-arginin-etilésztert és 0,2 mg en­zimet tartalmazott 10,0 ml vízben, a másik vizs- 20 gálati oldat pedig 0,1 millimól N-acetü-L-tiro­zin-etilésztert és 0,2 mg enzimet 10,0 ml 10°/<ros etanolban. 10 percen belül nem lehetett kimu­tatni a vegyületek hidrolízisét. Érdemes meg­jegyezni, hogy a két vegyület jó szubsztrátum 29 proteáz I számára. Az aszpergillopeptidáz ARL 1 ultraibolya színképe jellemző az aromás aminosavakat tar­talmazó proteinekre, a termék jól oldódik víz­ben, sóoldatban és pufferoldatokban. Száraz 30 porként több mint egy évig állandó enzimes hatékonyságának, azaz vérlemezkék ragadós­ságát és tömörülését megakadályozó képessé­gének elvesztése nélkül. Hasonlóképpen vizes oldatai állandók 4 C°-on hónapokig és 37 C°- 35 on több mint 24 óra hosszat enzimes aktivitá­suk elvesztése nélkül. Meghatároztuk a proteáz I és az aszpergillo­peptidáz ARL 1 intravénás toxicitását. Az LD50-et him fehéregereken 17,5, illetve 9,5 4C mg/kg testsúlynak találtuk. Mai ismereteink szerint az ADP (adenozin­difoszfát) döntő szerepet játszik a vérlemezkék ragadási és tömörülési mechanizmusában, és ezért kulcshelyzetet foglal el olyan folyamatok- 45 ban, mint a trombózis. Az ADP-nek ez a tulaj­donsága in vitro is kimutatható különféle el­járásokkal, ezek némelyike alkalmas az ADP ha­tást zavaró anyagok tanulmányozására is. Így két in vitro rendszerben tanulmányoztuk az A 50 enzimkeverék befolyását nyúl vérlemezkéinek az ADP keltette tömörülésére. Az egyik rendszerben a vérből centrifugálás­sal és mesterséges közegben való szuszpendálás- 55 sal elkülönített mosott lemezkéket használtunk. A másik rendszerben a lemezkéket természetes környezetükben — a plazmában — hagytuk, a vörös vérsejteknek centrifugálással való eltá­volítása után. Mindkét rendszerben a zavaros- 60 ság vagy az optikai sűrűség változásaként re­gisztráltuk ADP hozzáadása után a tömörülést, és megfigyeltük, hogy hogyan módosítja az aszpergilloproteáz-készítmény előző hozzáadása in vitro az ADP-re való reagálást. 65 Egy harmadik használt módszerben az aszper­gilloproteázt in vitro hozzáadás helyett az állat­ba fecskendeztük vérminták gyűjtése és lemez­kékben dús plazma készítése előtt. Többször az enzim befecskendezése előtt fotometriailag meg­határoztuk a lemezkék; tömörülését az ADP hoz­záadásának hatására, és minden változást az elő­kezelési értékekhez képest a beadott enzimnek tulajdonítottunk. Pufferolt sóoldatban szuszpendált mosott nyúl­-vérlemezkék használata esetén az ADP kal­ciumionok hozzáadására a lemezkék jelentős tö­mörülését okozta. A folyamat időbeli menetét az optikai sűrűségnek 1 percnyi időközökben való leolvasásával követtük. Azt találtuk, hogy kb. 10 perc elmúltával volt a legnagyobb a tö­mörülés, és nem figyeltünk meg további növe­kedést később sem. Á 15. percben észlelt (meg­határozott kalcium és ADP koncentráció által kiváltott) maximális tömörülési értékeket össze­hasonlítva azt találtuk, hogy A enzimkeverék-T^készítmények kis koncentrációban (10"'—10-5 /ig/ml) való előzetes hozzáadása hatásosan gá­tolja az ADP hatását. E hatásnál rövid látens időszak mutatkozott, de az egyszer létrejött gát­lást nem fokozta a hosszabb előinkubáció. Az ADP okozta tömörülés gátlására nincs szükség kalciumionokra, ami kitűnt abból, hogy a gátlás létrejött a kalciumot kelátkomplexként hatáso­san megkötő etiléndiamintetraecetsavat tartal­mazó közegben is. Az enzim e gátló hatásának további jellemzőjeként megfigyeltük, hogy ha egyszer érvényre jutott, az enzimmel kezelt vér­lemezkék ismételten moshatók voltak anélkül, hogy elvesztették volna az ellenállásukat hozzá­adott ADP-vel szemben. Amikor A enzimkeveréket adtunk in vitro plazmában szuszpendált mosatlan lemezkékhez, kitűnt, hogy ez az enzimkészítmény is ellen­állóvá tesz további ADP adagokkal szemben, bár a szükséges koncentrációk lényegesen nagyob­bak voltak, mint a fent említett rendszerben. Egy rövid látens időszak az enzim hatásában ebben a rendszerben is mutatkozott. Amikor az A enzimkeverék-készítményt int­ravénásán adtuk az állatnak, annak hatása az ezt követően vett lemezkékben dús plazmamin­ták ADP okozta tömörülésére csak a beadás után 24—48 órával volt megfigyelhető. A lá­tens időszakra vonatkozó in vivo és in vitro ész­leletek e különbözőségének az okát nem ismer­jük. Az ADP okozta tömörülés gátlása, ha egy­szer beállt, 3—4 napig fennmaradt. A gátlás a készítmény ismételt befecskendezésével meg­hosszabbítható volt. Az enzimkészítmények az emberekre való hatását is tanulmányoztuk, eddig 28 betegen, közülük egyeseknek normális, a legtöbbnek azonban patologikusán megnövekedett volt a tömörülési értéke (normális érték 37%). A tömö­rülést úgy határoztuk meg, hogy a plazmamin­tákat reprodukálható aggregáló hatásnak tet­tük ki meghatározott időre, majd a plazmamin­tákat megszűrtük. A trombocitás számát elekt-4

Next

/
Thumbnails
Contents