153497. lajstromszámú szabadalom • Eljárás a Theileria nemhez tartozó protozoák szaporítására

153497 vételére1 , Theileria annulata esetében a vér szét­kent állapotban való 'mikroszkópiai vizsgálata útján kimutatható Theileria annulata agamon­toík alapján ismerhetjük fel, imíg Theileria parva esetében renddszerint a láz-reakció másodiktól negyedik napjáig terjedő idő .(klb. a kullan­csokkal való fertőzés után 15—17 nappal) a leg­alkalmasabb időpont erre a célra. A tenyésztés céljaira szolgáló gazdasejt-kul­túra vételének: legjobb módszere az, hogy az állatból vett sejtekből szuszpenziót készítünk, ezt centrifugáljuk, a fertőzött sejtekben gazdag réteget különválasztjuk és újból szuszpendáljuk a kultúra^közegben. A kultúra-közeg az állati sejtek szaporítására általaiban alkalmazott szo­kásos tápanyagokat tartalmazhatja. Célszerűen ökör-szérum, triptózfaszfátlé és Eagle-féle alap­tápközeg (vö. Eagle H., Science 1955, 122, 504) keverékét alkalmazzuk, előnyösen az aminosav­tartalom és vitamintartalom megnövelésével. A protozoákkal nem fertőzhető sejtszövet­-kultúra előállítása céljából a fiatal hörcsögök veséjéből vett „BHK 21" sejtkultúrát tripszin hozzáadásával újra szuszpendáljuk a kultúra­-közegben és azután hozzáadjuk a protozoáikat is tartalmazó gazdasejt-kultúrához. Kezdetben a közel ml-enként 3—9-10" gazdasejtet és 0,7— 3,0-10,55 BHK 21 sejtet tartalmazhat. Az így kapott vegyes kultúrát célszerűen az egyréteges módszerrel olthatjuk tovább, alkalmazhatunk azonban más átviteli módszereket is, ha bizto­sítjuk a kultúra szaporodásának megfelelő fizi­kai és kémiai feltételeket. A,protozoák szaporodását oly módon biztosít­hatjuk, hogy a vegyes kultúrát 37 C° és 40 C° közötti hőmérsékleten inkubáltatjük, majd soro­zatosan újabb kultúra-közegekbe visszük át a szaporított vegyes sejtkultúrát. Ezeket az át­viteleket célszerűen minden harmadik vagy ne­gyedik napon végezzük. A találmány szerinti eljárás körülményei között a sejtpopuláció a benne levő protozoákkal együtt Ikb. 24—48 órán ként kétszereződik meg. A pusztulás és keze^­lési vesztésiégek beszámításával a tenyésztés har­madik vagy negyedik napjáig az eredeti popu­láció kb. megnégyszereződik. Az inkubáció első vagy második napján a szupernatáns szuszpenzió fcb. felét vagy harma­dát dekantálhatjuk és friss tápközeggel pótol­hatjuk, a jelenlevő elroncsolódott sejtek eltávo­lítása céljából. A deikantált szupernatáns folya­dék egyes esetekben jelentős mennyiségben tar­talmazhat fertőzött gazdasejteket is; ilyen eset­tekben ezeket összegyűjtjük és — külön a The­leria parva 'esetében — külön tenyésztésre hasz­nálhatjuk fel. Amikor az edény falain már egy egysejtes réteg képződött, ezt mechanikai úton, vagy pedig kémiai kezeléssel, pl. etiléndiamin­-N,,N,N',N'-tetraecetsawal (EDTA) és tripszin­nel, szedhetjük le onnan. A kezdeti inkubációs szakasz után a fertőzet­len gazdasejték fokozatosan eltűnnek és a kul­túra rendszerint 'magától beáll kb. 30—50% BHK 21 sejtből és 50—70% bovinsejtből (ez utóbbiak csaknem mind fertőzöttek) álló össze­tételre. A Theileria agamont-részecskék száma a gazdasejtekiben sejteriként rendszerint kb. 2 és 20 között, átlagosan klb. 15 körül van. A 'vegyes sejtkultúra további kultúrákra való 5 eloltását mindaddig folytathatjuk, míg elegendő mennyiségű protozoa nem áll rendelkezésre. A találmány szerinti eljárással kapott protozoák megtarthatják antigén-tulajdonságukat és attól függően, hogy hányszor lettek újabb kultúrák-10 iba sorozatosan átoltva, részleges vagy teljes el­gyengülést szenvedhetnek, antigén-jellegük pe­dig egyes esetekben átalakulhat. így pl. a T. an­nulata vegyes sejtku'ltúrájá önmagában, vagy az ebből nyert protozoák felhasználhatok az ál-15 latok immunizálására a T. annulata által be­következő ezutáni fertőzéssel szemben. A T. parva tenyésztett szövetnkultúrája viszont im­munitást nyújt a T. parva szövet-kultúrájával vagy a T. annulata szövet-kultúrájával történő 20 fertőzés ellen. A találmány lényege tehát oly eljárás a Thei­leria fajú 'protozoák tenyésztésére, amelynek értelmében az említett protozoa spóráit tartal­mazó gazdasejteket tenyésztünk egy e pro'tozaá-25 val nem fertőzhető sejtszövet-kultúra, pl. az újszülött hörcsögök veseszövetéből tenyésztett BHK 21 sejtszövet-kultúra egyidejű tenyésztése mellett, tápanyagokat tartalmazó vizes közegben tenyésztett vegyes kultúra alakjában. £0 A találmány további tárgya a Theileria fajú élő protozoákat .tartalmazó antigén^amyag elő­állítása, a protozoákkal nem fertőzhető sejt­szövet-kultúrával együtt tenyésztett gazdasejt­-kultúrában, vizes tápközegben tenyészttett ve^­c5 gyes kultúra alakjában. Ez ismert műveletekkel, pl. a 3. példában le­írt módon történhet. Végül a találmány tárgyát képezi a fentebb leírt antigén-anyagot tartalmazó vaccina elő-40 állítása, az, immunreakeió kiváltására 'megfelelő adagolásban kiszerelt alakban is, A találmány szerinti eljárás gyakorlati kivi­teli módjait közelebbről az alábbi példák szem­léltetik. 45 1. példa: Gazdasejt-kultúra előállítása. 50 Egy fertőzés iránt érzékeny, jóminőségű 'kelet­afrikai fajtájú borjúból, amelyet T. annulata (Tova törzs) schizontáit tartalmazó vérrel való beoltás útján fertőztünk, a .betegség aktív szaka­szában vért vettünk vénanpunlkció útján. A 100 55 ml vér-mintához 10 iml 1000 meg/ml tömény­ségű heparin oldatot adtunk <és az elegyet 5 percig centrifugáltuk 1400 g-nek megfelelő for­dulatszámmal. A ibőrszerű bevonatréteget el­különítettük és egy 5 ml-es centrifuga-csőbe 60 vittük, majd 5 percig centrifugáltuk 900 g-nek megfelelő fordulatszámmial. A bevonatréteget megint elkülönítettük és 20 'ml tápközegben szuszpendáltuk. Itt és a' következő példákban leírt eljárások 65 során oíy tápközeget alkalmaztunk, amely 10 tf. 2

Next

/
Thumbnails
Contents