142183. lajstromszámú szabadalom • Eljárás új antibiotikumok előállítására

142.183 5 állításánál is a felszín alatti, aerob tenyésztési mód­szert alkalmazzuk. Korlátolt mennyiségek készíté­sére rázólombikbart és palackban foganatosított fe­lületi tenyésztés is használható. Azonfelül, mint is­meretes, ha a tenyésztés nagy tartályokban törté­nik, akkor a tartályok beoltására célszerűen a szer­vezetnek vegetatív formáját használják, az antibioti­kum termeíésében kifejezett lemaradásnak és a be­rendezés ezzel járó gyenge kihasználásának elke­rülésére. Ehhez képest kívánatos a, szervezet vege­tatív oltványának előállítása oly módot«, hogy a tenyésztő közeg aránylag csekély mennyiségét olt­juk be a szervezet spóralakj avail és ha fiatal, aktív, vegetatív oltványt biztosítottunk, akkor a vegetatív oltványt aszeptikusán visszük át a nagy tartályokba. A közeg, melyben a vegetatív oltványt előállítjuk, azonos lehet az antibiotikum termelésére használt közeggel, vagy attól különböző lehet. Streptomyces erythreus, M5—12559 törzs, kb. 25 C° és kb. 37 C° közötti •hőmérsékleteken jól te­nyészthető. Optimális antibiotikum-termelés akkor lép fel, ha tenyésztő közeg -hőmérsékletét kb. 26— 30 C°-on tartjuk. Amint az antibiotikumok felszín alatti tenyész­tésénél szokásos, steril levegőt, fúvatunk át a táp közégén. A szervezet hatásos tenyésztése és hatásos, antibiotikum-rtermelés céljából; az erythrimycinnek tartályban való termelésénél a tápközeg térfogat­egységenként percenként 0,1 térfogategység leve­gőt fúvatunk be. Hatásosabb tenyésztés és antibio­tikum-termelés biztosítható, ha a befúvatott levegő percenként, a tenyésztő közeg térfogat-egységenként legalább 0,4. Az antibiotikum termelési sebessége és az anti-f biotikum hatásosságának töménysége könnyen ellen­őrizhető a mikroorganizmus tenyésztési • periódusa alatt. E célból a tenyésztő közegből próbákat ve­szünk és meghatározzuk ezeknek antibiotikus haté­konyságát, oly szervezetekkel szemben, melyek az antibiotikumokkal szemben fogékonyak. Ilyen pl. a Staphylococcus aureus (S. aureus) és Mycobacte­rium tuberculosis (M. tuberculosis). Ily meghatá­rozások sikeres elvégzése céljából a tenyészet-pró­bákból sorozatos hígításokat készítünk, a felhígí­tott próba részlegeket megömlesztett nutriens agár­hoz adjuk, az agart Petri-csészében megdermeszt­jük, a csészét S. aureus vagy M. tuberculosis fia­tal tenyészetével beoltjuk és meghatározzuk a te­nyészet azon maximális hígítását, mely a nutriens agáron a szervezetnek fejlődését teljesen megszün­tetni képes. .. Az antibiotikum előállítását zavarosság mérési próbák is követhetik, amilyenek más antibiotiku­mok előállításánál szokásosak. Az antibiotikum-termelés rendesen legnagyobb a tenyésztő közeg beoltását követő kb. 2—5 nap alatt a felszín alatti tenyésztés és kb. 5—10 nap alatt a felületi, vagy rázólombikos tenyésztés esetében. A találmány szerinti antibiotikus vegyületek a tenyésztő közegből kivonatolható vagy adszorpciós módszerekkel különíthetők el. Az előbbieknek az ipari termelésnél adunk előnyt, mert kevesebb időt igényelnek és olcsóbbak. Az antibiotikus vegyületnek a tenyésztő közeg­ből való kivonásánál a vízzel keverendő, poláros pzerves oldószereket részesítjük előnyben. Ezek közé tartoznak a zsírsavak alkilészterei, pl. etilacetát és amilaeetát; klórozott szénhidrogének, pl. etilén­kiorid és etiléndiklorid; vízben gyengén oldható alkoholok, pl. butanol és amilalkohol; vízben gyen­gén oldható ketonok, pl. metiliamilketon; és éterek, etiléter és dibutiléter. Más hasonló tulajdonságú oldószerek is használhatók. A tenyésztő talaj szerves oldószeres kivonatában foglalt antibiotikus anyagot célszerűen vákuumban kiszáradásig bepárologtatjuk, amikor is az antibio­tikumot nyers állapotban kapjuk. Egy változat sze­rint az antibiotikus anyag a tenyésztő talajtól úgy különíthető el, hogy a szűrt tenyésztő talajt ad­szorbeáló szerrel hozzuk érintkezésbe. Adszorbeáló szerek adszorpciós kromatográfiai úton való tisztí­tására is sikerrel felhasználhatók, mimellett adszor­bensekként aktivált timföldet, szilikagelt, magné­zium-alumínium-szilikátot és más eféléket haszná­lunk. Az antibiotikumot az dszorbenstől oly poláros oldószerrel mosható ki könnyen, mely az antibiotikus vegyületet oldja. Aktív szén nem alkalmas, külö­nösen nem kromatográfiai oszlopban, mivel a'szén erősen adszorbeálja az antibiotikumot úgy, hogy az adszorbeált anyag csak nehézségek árán mosható ki. Azonban aktív szén sikeresen haszinálahtó az anti­biotikumnak közvetlenül a tenyésztő talajból való adszorbeávására,: ha a szenet előzetesen valamely szerrel, pl. ecetsavval vonjuk be oly célból, hogy csökkentsük a szénnek az antibiotikummal szem­beni lekötő képességét. Ha csupán kivonási eljárást használunk az- anti­biotikum kinyerésére, akkor az antibiotikumnak a kivonat-oldatból való kinyerésének célszerű-módja az, hogy az oldatot az oldószer zömének elpárolog­tatásával besűrítjük, majd az antibiotikumot az oldószerből oly keverhető oldószer hozzáadásával ki­csapjuk, melyben az antibiotikum-gyengén, oldható. Az antibiotikus anyagot, mely nyers, de szilárd, sőt néha kristályos alakban is kicsapódik, azután tovább tisztítjuk, egy vagy több oldószerből vagy ezek ele­gyéből való átkristályosítás útján. Alkalmas oldó­szerek e célra, többek között, a vizes aceton, a vizes metanol, a vizes etanol stb. Az erythromycinnek bázisa alakjában való elkü­lönítésének jelenleg előnyösnek tartott módja sze­rint, a leszűrt tenyésztő közeget kb. pH 9—pH 10 értékig lúgosítjuk, majd alkáliacetáttal, pl. amil­acetáttal extraháljuk. Az amilacetátban feloldott erythromycin-bázist azután vízzel extraháljuk, melynek pH-ját 6,5 alatt fekvő értékre, célszerűen kb. pH = 5-re beállítottuk. A vizes kivonatot pl.' vákuumban való elpárologtatással, a kezdődő kicsa­pódásig besűrítjük, azután kb. pH = 9,5-ig lúgo­sítjuk, amikor is az erytromycín-bázis szilárd, szo­kásos kristályalakban kiválik. A 'bázist szűréssel vagy centrifugálással elkülönítjük és átkristályosí­tással tisztítjuk. Az erythromycinnek sav hozzáadására keletkező sói úgy állíthatók elő, hogy eryth.romycinbázis vizes oldatát egyenértékű savval kezeljük és az oldatot vákuumban beszárítjuk. Egy másik; megoldás sze­rint az erythromycin-bázisnak szerves oldószeres oldatát kezeljük a savval vagy ennek oldatával és az erythromycinsőt közvetlenül az oldatból kicsap­juk. Ha a sót erős sav hozzáadásával képezzük, akkor a savnak az antibiotikumhoz való hozzáadása közben figyelemmel kell lennünk arra, hogy lokáli-

Next

/
Thumbnails
Contents