Fogorvosi szemle, 2017 (110. évfolyam, 1-4. szám)

2017-03-01 / 1. szám

FOGORVOSI SZEMLE 110. évf. 1.SZ. 2017. 13 valamint megvizsgáljuk teljes fejlődési potenciáljukat először in vitro, majd in vivo. Jelen vizsgálataink egy­értelműen megerősítik a korábbi megfigyeléseket. Az emberi fogbélből izolált, őssejt tulajdonságokkal is ren­delkező kultúránkban legalább 19 passzázsig, átülte­tésig, a sejtek szaporodási képessége nem csökkent, s ugyanazt a fibroblaszt jellegű morfológiát mutatták, mint az alacsony passzázsszámú tenyészetek, hason­lóan a patkány fogbeléből készült tenyészetekben. Mivel a fog eredetű őssejtek mesenchymalis ere­detű őssejt jellemzőket mutatnak [12, 27], differenciál­tatásuk és lehetséges hasznosításuk egyik legkézen­fekvőbb irányát a csont jelenti. Valóban, a megfelelő farmakológiai indukció hatására a humán fog eredetű MSC sejtekből in vitro oszteogén/odontogén fenotípusú sejtek differenciáltathatók, melyek polarizált sejttestek­kel és mineralizációs gócok felhalmozódásával jelle­mezhetők [12, 15, 16, 19, 23, 27], Jelen tanulmányunk is egyértelműen mutatja, hogy a humán DPSC sejtek in vitro körülmények között, oszteogén irányban köny­­nyen differenciáltathatók, az ilyen módon kezelt kultú­rákban 21 napos kezelést követően jelentős mennyisé­gű minerális depozit figyelhető meg, míg szokványos tenyésztő médium alkalmazásával ez a változás nem történik meg. A dentális implantátumok széleskörű elterjedésé­vel megnőtt az igény a minél gyorsabb és minél haté­konyabb rögzülést biztosító, jól kontrollálható eljárások iránt. Ebben a tekintetben fontos megfigyelésünk, hogy korábbi vizsgálati eredményeinket [5] megerősítve kimutattuk, a patkány farokcsigolyába ültetett implan­tátumok jól rögzülnek, s ez a rögzülés a kitépési erő mérésével jól reprodukálhatóan, kis szórással nem­csak minőségi, de mennyiségi tekintetben is jól kö­vethető. Az őssejtekkel történő szövetregenerációs eljárások sikerei a szervezet különböző szöveti sérüléseinél al­kalmazva biztató lehetőségeket vetítenek elő a fogá­szati implantológia irányában is. Jelen kísérleti felál­lásban kapott eredményeink között kiemelkedik az az megfigyelés, hogy a nagy mennyiségű, nem-differentált DPSC sejtek nem segítik hanem inkább hátráltatják a ti­tán implantátumok osszeointegrációját ebben a kísérleti modellben. Az a megfigyelésünk viszont biztató, hogy oszteogén elődifferentálással ez a hátráltató tényező ki­küszöbölhető. Ez egyúttal azt is jelenti, hogy állatkísér­letes modellünkben az oszteogén tényezők egyér­telműen az osszeointegráció elősegítése irányában hatnak. Bár az irodalomban számos megfigyelés fel­lelhető a DPSC sejtek, fogbél eredetű sejtek csontkép­ződést elősegítő hatása mellett [25, 30], azt is meg kell figyelnünk, hogy ezek a hatások nagy mértékben füg­genek a sejtforrás fajától, a sejtek állapotától, a bevitt sejtmennyiségtől, illetve a párhuzamosan alkalmazott oszteogén szerkezeti elemek és bioaktív anyagok al­kalmazásától [22, 24, 28]. Köszönetnyilvánítás Vizsgálataink elvégzéséhez a Magyar-Francia Állam­közi TÉT-Balaton Program (TÉT_12_FR-2-2014-0010) és az OTKA-NKTH CK80928 kutatási támogatás nyúj­tott fedezetet. Irodalom 1. Aboody K, Capela A, Niazi N, Stern JH, Temple S: Translating stem cell studies to the clinic for cns repair: Current state of the art and the need for a rosetta stone. Neuron 2011 ; 70: 597-613. 2. Bianco P, Riminucci M, Gronthos S, Robey PG: Bone marrow stro­mal stem cells: Nature, biology, and potential applications. Stem cells 2001; 19:180-192. 3. Bjorklund LM, Sanchez-Pernaute R, Chung S, Andersson T, Chen IY, McNaught KS és mtsai: Embryonic stem cells develop into func­tional dopaminergic neurons after transplantation in a parkinson rat model. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 2002; 99: 2344-2349. 4. Bjornson CR, Rietze RL, Reynolds BA, Magli MC, Vescovi AL: Turning brain into blood: A hematopoietic fate adopted by adult neural stem cells in vivo. Science 1999; 283: 534-537. 5. Blazsek J, Dobo Nagy C, Blazsek I, Varga R, Vecsei B, Fejerdy P és mtsai: Aminobisphosphonate stimulates bone regeneration and enforces consolidation of titanium implant into a new rat cau­dal vertebrae model. Pathology oncology research: POR 2009; 15: 567-577. 6. Blum B, Bar-Nur O, Golan-Lev T, Benvenisty N: The anti-apop­­totic gene survivin contributes to teratoma formation by human embryonic stem cells. Nature biotechnology 2009; 27: 281-287. 7. Branemark PI, Adell R, Breine U, Hansson BO, Lindstrom J, Ohls­­son A: Intra-osseous anchorage of dental prostheses. I. Experi­mental studies. Scandinavian journal of plastic and reconstruc­tive surgery 1969; 3: 81 -100. 8. Clarke DL, Johansson CB, Wilbertz J, Veress B, Nilsson E, Karl­strom FI és mtsai: Generalized potential of adult neural stem cells. Science 2000; 288: 1660-1663. 9. Galli R, Borello U, Gritti A, Minasi MG, Bjornson C, Coletta M és mtsai: Skeletal myogenic potential of human and mouse neu­ral stem cells. Nature neuroscience 2000; 3: 986-991. 10. Grinnemo KH, Kumagai-Braesch M, Mansson-Broberg A, Skott­­man H, FIao X, Siddiqui A és mtsai: Fluman embryonic stem cells are immunogenic in allogeneic and xenogeneic settings. Repro­ductive biomedicine online 2006; 13: 712-724. 11. Grinnemo KH, Sylven C, Hovatta O, Dellgren G, Corbascio M: Immunogenicity of human embryonic stem cells. Cell and tissue research 2008; 331: 67-78. 12. Gronthos S, Mankani M, Brahim J, Robey PG, Shi S: Postnatal hu­man dental pulp stem cells (dpscs) in vitro and in vivo. Proceed­ings of the National Academy of Sciences of the United States of America 2000; 97: 13625-1330. 13. Hipp J, Atala A: Sources of stem cells for regenerative medicine. Stem cell reviews 2008; 4: 3-11. 14. Javazon EH, Beggs KJ, Flake AW: Mesenchymal stem cells: Par­adoxes of passaging. Experimental hematology 2004; 32: 414- 425. 15. Kadar K, Király M, Porcsalmy B, Molnár B, Racz GZ, Blazsek J és mtsai: Differentiation potential of stem cells from human den­tal origin - promise for tissue engineering. Journal of physiology and pharmacology: an official journal of the Polish Physiological Society 2009; 60 Suppl 7: 167-175. 16. Kadar K, Porcsalmy B, Király M, Molnár B, Jobbagy-Ovari G, Somogyi E és mtsai: Humán fogbél eredetű őssejtek izolálása,

Next

/
Thumbnails
Contents