Szemészet, 2013 (150. évfolyam, 1-4. szám)

2013-09-01 / 3. szám

New electrophysiotagical appliance to detect visual loss

midazolamból (Dormicum) premedikációként, s ha szükséges, ketaminnal (Calypsol) altatunk. Szükség esetén további kis dózisokkal tartottuk fenn a gyermekek nyugalmi állapotát. így a narkózisnak az ERG és a VEP paramétereire gyakorolt hatása minimális, és eltörpül az előnyei mellett: objektív adatot kapunk a retina és a látópálya működéséről, a fundus vizsgálata gyorsabban, pontosabban elvégezhető, mint egy síró, mozgó kisgyermeknél, akinek esetleg még nystagmusa is van. Szükség esetén ugyanazon rövid narkózis alatt megtörténhet a szkiaszkópia is és még ultrahangvizsgálatra is lehet ugyanakkor idő, lehetőség.

Következtetések

Tapasztalataink szerint a HHPS, illetve az MGF-ingerléssel kapott ERG- és VEP-vizsgálatok jó megegyezést mutatnak a felnőttek vizsgálatánál alkalmazott standard módszerek eredményével.

A szemészeti elektrofiziológiai vizsgálatok csecsemő- és kisgyermekkorban, valamint nem kooperáló felnőtteknél az új módszerekkel könnyen elvégezhetők. Segítik a differenciáldiagnózist, felmérik a látópálya funkciókárosodásának mértékét, kimutatják a szisztémás betegségek szemtüneteit. Alkalmasak a terápia hatásának, vagy a betegség progressziójának felmérésére. Műtéti indikációt jelenthetnek, és igazságügyi-jogi vonatkozása is lehet a vizsgálatoknak.

Bár az eddig elvégzett vizsgálatok megalapozzák e módszerek rutinszerű alkalmazásának jogosultságát, statisztikai analízist nem végezhettünk. Nem altathatunk egészséges csecsemőket kontrollértékek nyerésére! A tapasztalatokat

féloldali patológiás folyamatok esetén az ép szem válaszai alapján szereztünk.

Egy másik oka annak, hogy nincsenek statisztikailag megalapozott normál kontrollértékeink, a retina érési folyamataiban található különbség. Az irodalmi adatok nemcsak arra utalnak, hogy a retina különböző sejtjeinek más az érési folyamata, hanem számolnunk kell a késői érési folyamat lehetőségével is (12, 15). Minden hónapra vonatkozó normatív adatok és a variabilitásuk meghatározása jelenleg nem elérhető, és nem is a célunk.

Köszönetnyilvánítás

A szerzők köszönetüket fejezik ki Majer Katinak a felvételek során végzett lelkiismeretes munkájáért. A kísérleteket támogatta TÁMOP-4-2.2.A- 11/ 1/KONV-2012-0052 és OTKAHungary grant: 68594-Irodalom

1. Arndt CF Derambure R Defoort-Dhellemmes S. Outer retinal dysfunction in patients treated with vigabatrin. Neurology 1999; 52: 1201-5.

2. Bach M, Brigell MG, Hawlina M, et al. ISCEV standard for clinical pattern electroretinography (PERG): 2012 update. Doc Ophthalmol 2013; 126: 1-7.

3. Brecelj J. From immature to mature pattern ERG and VER Doc Ophthalmol 2003; 107: 215-24.

4. Coupland SG, Janaky M. ERG electrode in pediatric patients. Comparison of DTL fiber PVA gel and non-corneal skin electrodes. Doc Ophthalmol 1989; 71: 427-33.

5. Dawson WW, Trick GL, Litzkov CA. Improved electrode for electroretinography. Invest Ophthalmol Vis Sei 1979; 18: 988-91.

6. Fiorentini A, Trimarchi C. Development of temporal properties of pattern electroretinogram and visual evoked potentials in infants. Vision Res 1992; 32: 1609-21.

7. Friendly DS. Development of vision in infants and young children. Pediatr Ophthalmol 1993; 40: 693-703.

8. Fulton AB, Hansen RM. The development of scotopic sensitivity. Invest Ophthalmol Vis Sei 2000; 41: 1588-96.

9. Fulton AB, Hansen RM, Westal CA. Development of ERG responses: The ISCEV rod, maximal and cone responses in normal subjects. Doc Ophthalmol 2003; 107: 235-241.

10. Hammarrenger B, Leporé F Lippi S. Magnocellular and parvocellular developmental course in infants during the first year of life. Doc Ophthalmol 2003; 107: 225-33.

11. Harding GFA, Robertson KA, Edson AS. Visual electrophysiological effect of a GABA transaminase blocker. Doc Ophthalmol 1999; 97: 179-88.

12. Hoyt GS, Jastrzebski G, Marg E. Delayed visual maturation in infancy. BrJ Ophthalmol 1983; 69: 127-30.

13. Janáky M. Sztriha L, Pelle Zs. Deák A, Benedek Gy. Gyermekkorban végzett szemészeti elektrofiziológiai vizsgálatok. Gyermekgyógyászat 1992; 43: 383-392.

14. Kriss A, Jeffrey В, Taylor D. The electroretinogram in infants and young children. J Clin Neurophysiol 1992; 9: 373-93.

15. Madrid M, Crognale MA. Long-term maturation of visual pathways. Visual Neurosci 2000; 17: 831-7.

16. Magoon EH, Robb RM. Development of myelin in human optic nerve and tract. Arch Ophthalmol 1981; 99: 655-9.

17. Marmor MF Fulton AB, Holder GE, et al. ISCEV Standard for full-field clinical electroretinography. (2008 update) Doc Ophthalmol 2009; 118: 69-77.

18. Moskowitz A, Sokol S. Developmental changes in the human visual system as reflected by the latency of the pattern reversal VER Electroenceph Clin Neurophysiol 1983; 56: 1-15.

19. Odom JV, Bach M, Brigell M, et al. ISCEV standard for clinical visual evoked potentials. (2009 update) Doc Ophthalmol 2010; 120: 111-119.

20. Spencer RL, Harding GF Examining visual field defects in the pediatric population exposed to Vigabatrin. Doc Ophthalmol 2003; 107: 281-7.

21. Tremblay F Parkinson JE. Alteration of electroretinographic recordings when performed under sedation or halogenate anesthesia in a pediatric population. Doc Ophthalmol 2003; 107: 271-9.

22. Wongpichedchai S, Hansen RM, Кока В. Effects of halothane on children’s electroretinograms. Ophthalmology 1992; 99: 1309-312.

Levelezési cím

Dn Janáky Márta, Szeged, 6720-427, Korányi fasor 10-11. E-mail: janaky.marta@med.u-szeged.hu