203583. lajstromszámú szabadalom • Eljárás bakteriális fertőzések ellen védő emberi monoklonális antitest-készítmények és ezeket tartalmazó gyógyszerkészítmények előállítására

HU 203583B állnak, amelyek Öregei életképes E. coli vagy S. mar­­cescens szerotípusok keverékét tartalmazzák az üreg felületére rögzítve poli-L-lizinnel (PLL). Rövi­den, 50 pj PLL-t (1 pg/ml, PBS-ben oldva) adunk mindegyik üregbe 30 percig szobahőmérsékleten. A lemezeket háromszor mossuk PBS-sel, és vagy PBS- t, vagy 50 pl kevert baktérium szuszpenziót (OD 664)0,2) adunk hozzá minden egyes üreghez. A lemezeket 37 'C hőmérsékleten inkubáljuk 60 per­cen át, és háromszor mossuk fiziológiás sóol­­dat/0,02% Tween 20 keverékkel (só/T), hogy eltávo­­lítsuk a nem rögzített baktériumokat. Különböző antigén-lemezeket alkalmazunk az átvizsgálásban, beleértve a következőket: 1.) E. coli 01 szerotípus (ATCC 23499) és 04 szerotípus (ATCC 12791) ke­veréke; 2.) Serratia marcescens 07,015,016 és 018 szerotípusok keveréke (a törzsek tipizálására vonat­kozó összes referenciát a Communicable Disease Center-ból (CDC), Atalanta, GA) kaptuk; és 3.) mikrotitráló lemez baktériumok nélkül. Az ELISA eljáráshoz a vizsgáló üregeket először 200 pl alábbi keverékkel blokkoljuk: 5% (tömeg/tér­­fogat) száraz, sovány tejpor, 0,0001 t/tf% „Anti-fo­­am A” (a Sigma Chemical Co., St. Louis, Missouri, USA, által forgalomba hozott habzásgátló) és 0,01 t/tf% „Thimerosal” (Sigma Chemical Co., nát­­rium-etil-merkuri-tioszalicilát) 500 ml PBS-ben; üyeu módon akadályozzuk meg a nem fajlagos fe­hérje-kötést. 1 órás, szobahőmérsékleten végzett inkubálás után a lemezeket háromszor mossuk 200 pl/üreg mennyiségben só/T oldattal. Mindegyik üreghez 50 pl alábbi keveréket adunk. 0,1% Tween 20 és 0,2% szarvasmarha szérum albumin PBS-ben, ezt az oldatot a továbbiakban PTB-nek nevezzük. A tenyésztő lemezek üregeiből származó felülúszókat replika módszerrel átvisszük az antigén és a kontroll lemezek (50 pl/üreg) megfelelő üregeibe, és szoba­­hőmérsékleten 30 percen át inkubáljuk. A felülú­szókat azután eltávolítjuk, a lemezeket ötször mos­suk só/T oldattal, és 50 pl biotinilezett kecske anti­­humán immunglobulint (lg) (TAGO, Na 9303040, 1:250 arányban PTB-ben hígítva) adunk minden egyes üregbe. 30 perces, szobahőmérsékleten vég­zett inkubálás után a biotinilezett reagenst eltávo­lítjuk, az üregeket ötször mossuk só/t oldattal, és 50 pl előre elkészített „Avidin” biotinüezett torma­­peroxidáz komplexet (amely a „Vectastain ABC Kit” részeként a Vector Laboratories Inc., Burlin­game kalif ornia cégtói szerezhető be) adunk minden egyes üreghez. 30 perc szobahőmérsékleten végzett inkubálás után a Vectastain ABC reagenst eltávolít­juk, az üregeket ötször mossuk só/T oldattal, és 101 pl szubsztrátumot (0,8 mg/ml orto-fenüén-dia­­min dihidroklorid 100 mmól/1 citrát puff erben, pH 5,0+0,03% H202 ionmentesített vízben, közvetle­nül a lemezre helyezés előtt összekeverve egyenlő térfogat arányban) adunk minden egyes üreghez. 30 perces, sötétben végzett inkubálás után 50 pl 3 n H2S04-et adunk minden egyes üreghez, hogy leál­lítsuk a reakciót. Azokat a tenyészet felülúszókat, amelyek a lemezeket fedő baktériumokkal reaktí­vak, a 490 nm-nál mért abszorpcióval mutatjuk ki, a mérést Dynatech MR 580 micro ELISA leolvasóval végezve. Hat transzformációból kapott tenyészet felülú-15 szókat elemzünk a fenti módszerrel, végeredmény­ben egy olyan üreget (7D7) azonosítunk, amely akti­vitással bír E. coli és S. marcescens szerotípusú le­mezeken, de nem rendelkezik aktivitással a kontroll lemezeken. Meghatározzuk egymást követően EL­ISA mérésekben egyedi E. coli szerotípusokkal, hogy ez az üreg olyan antitestet tartalmaz, amely re­aktív legalább az E. coli szerotípusokkal: 08 (ATCC 23504) és 075 (ATCC 12798), de nem reaktív a 04, 06K2,08:K8,09:K9 vagy 022X13 szerotípusokkal (ATCC 12791,19138,23501,23505 illetve 23514). Ez az üreg továbbá tartalmaz olyan antitestet, amely reaktív a S. marcescens 012,013és015 sze­­rotípusaival, de a S. marcescens további 20 ismert LPS szerotípusával nem. D. Fajlagos antitest-termelő sejtek klónozása A 7D7 üregben levő sejteket több (négy) klónozá­si menetnek vetjük alá, amíg mindegyik, fenti EL­ISA módszerrel mért klónozó felülúszó pozitív re­akciót ad E. coli 08 és 075 és S. marcescens 012,013 és 015 szerotípusokra. Soha sincsen arra példa, hogy bármelyik klónozó felülúszó elkülönülést mutatna reaktivitási spektrumában, ez azt sugallja, hogy a 7D7 üregből származó tenyészet felülúszó valódi nemzetségek közötti kereszt-reaktivitással bír a be­mutatott E. coli és S. marcescens szerotípusokra, és nem tartalmaz egynél több sejtvonalat (mindegyik egyedi szerotípus reaktivitást mutat). Asejteket ha­tárhígítással klónozzuk kerek fenekű, 96 üreges le­mezeken, tápláló sejtek távollétében. A tápközeg Is­­cove tápközegből áll, amely 15% (térfoga t/ térfogat) FBS-t, L-glutamint (2 mmól/1), nátrium-piruvátot (1 mmól/1), penicillint (100 nemz. egység/ml), és sztreptomicint (100 pg/ml) tartalmaz. A tenyésze­tet minden harmadik napon tápláljuk a felülúszó felének helyettesítésével friss tápközeggel. Általá­ban az üregek megfelelő lifoblasztoid-sejt sűrűséget érnek el a lemezre helyezéstől számított 2-3 héten, hogy elemezni lehessen anti-E. coli és S. marcescens szerotípus fajlagosságra. így ebben a kísérletben klónozott, transzformált humán sejtvonalhoz jutunk, amely folyamatos (nem-pusztuló) és humán monoklonális antitestet választ ki egy determináns ellen, amely a bemuta­tott E. coli és E. marcescens szerotípusok felületén van. A jelen szabadalmi bejelentés benyújtása előtt a folytonos transzformált humán sejtvonalat, ame­lyet 7D7-ként azonosítunk, elhelyeztük az Ameri­can Type Culture Collection-nál (Rockville, Mary­land) ATCC CRL 9009 letéti számon. E. A nemzetségek közti kereszt-reaktivitás to­vábbi jellemzése A klónozott 7D7 sejtvonalból származó antites­tet megvizsgáljuk további nemzetségek közötti ke­reszt-reaktivitásra, standard immunfoltképzési technika módosított formájának segítségével. Részletesebben, a K. pneumoniae, E. aerogens és E. cloacae baktériumokra való kereszt-reaktivitást vizsgáljuk baktériumok foltját behálózott nitrocel­­lulóz papírlemezre helyezve, a baktériumokat tar­talmazó lemezt az említett antitestekkel reagáltat­­va, és az antitest reakciókat alkálikus foszfatáz/nit-16 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 9

Next

/
Oldalképek
Tartalom