202558. lajstromszámú szabadalom • Eljárás neuronotrófiás faktor kinyerésére és ilyen hatóanyagot tartalmazó gyógyászati készítmény előállítására

HU 202558B tűk az inkubáló közeg eltávolításával és négyszeri gyors öblítéssel jéghideg PBS-sel. A 3H-dopajnint mindegyik tálból extraháltuk kétszer 0,5 cm3 0,4 mól/1 Ha04-tal, víz és abszolút etanol 3:1 térfo­gatarányú elegyében, 15-15percig.Akinyerés95% felett volt. A radioaktivitás méréséhez 10 cm3 Ins­­tagel n-t (folyékony szcintillációs számláló közeg) adtunk hozzá, és Packard TriCarb (Model 460 C) szcintillációs számlálóval mértünk. Egyes minták­ból az inkubálás és a mosások után kivontuk a sejten belüli radioaktivitást 0,5 cm3 0,4 n perklórsawal, és nagynyomású folyadékkromatográfiával (HPLC) analizáltuk (C. Kotake és mts., J. Neurosci., 2,1307 /1982/); A Shum és mts.: J. Chromatog., 228,123 /1982/). A bevitt radioaktivitásnak több, mint 95%­­a abban a frakcióban jelentkezett, amely a dopamin retenciós idején eluálódott. A 14C-GABAspecifikusfelvételét A.Prochiantz és mts. (Nature, 293,570 /198 If) módszerével érté­keltük. 0,1 pmól/114C-GABA (225 mCi/nmól) hoz­záadásával 15 percig 37 °C-on inkubáltuk. A GABA katabolizmusát 10 pmól/1 amino-oxiecetsavval akadályoztuk meg. Szükség esetén 1 mmól/1 diami­­no-vajsavat is adtunk az elegyhez mint GABA-fel­­vételi inhibjtort. A mosási és extrahálási eljárások azonosak a 3H-dopamin felvételi vizsgálatoknál al­kalmazottak. A GABA azonosítását vékonyréteg­­kromatográfiás (TLC) módszerével végeztük (R.S. Lasher: Brain Res., 69,235 /1974/). A radioaktivi­tásnak több, mint 90%-a a hiteles GABÁ-val együtt vándorló foltban volt. 4. Asejttenyészet morfológiai értékelése, életké­pessége és biokémiai jellemzése A tálban feltapadó, életképes sejtek több, mint 98%-a mind 4, mind 8 nap után in vitro pozitívan immunreaktiv és RT97-es monoklonális antitestek­kel immuncitokémiaüag festhetők voltak. Sőt a te­nyészetben levő sejtek kevesebb, mint 1%-a a teljes vizsgálati idő alatt immunreaktóv volt GFAP ant­­szérumos festéssel szemben. Mindez azt mutatja, hogy a tenyészetben levő sejteknek több, mint 98%­­a neuronhoz tartozónak tekinthető. A tenyészetben levő dopaminerg neuronok vizuálisan meghatáro­zott száma azt mutatja, hogy ezek a sejtek azin vitro jelenlevő teljes sejtpopulációnak mintegy 0,1- 0,2%-át teszik ki. A vizsgált tenyészeben levő sejtek életképessége 4 napig nem változott in vitro. A 4. és 8. nap között azonban az életképesség 60-80%-ka csökkent. Ez nemcsak a morfológiai vizsgálatból tűnt ki, hanem az azt követő DNS-tartalom vizsgálatból és a dopa­minerg sejtek tálankénti számából is. Ez azt mutat­ja, hogy a középagyi idegsejtek életképessége az al­kalmazott tenyésztési körülmények között korláto­zott, és a tenyészetben jelenlevő, különböző típusú sejtek életképessége között nincs érzékelhető kü­lönbség (lásd 4. ábra). A 4. ábra diagramja az összes neuronok, a GIF- pozitív neuronok számának és a BZT-érzékeny do­­pamin-felvétel időfüggését mutatja. A tenyésztési közeget 1.106 sejt/2cm tenyésztő közeg 35 mm-es tálban mennyiségű középagyi sejttel oltottuk be. A 4. ábra jelzései a következők: DNS-tartalom tálanként (.-.); BZT érzékeny dopamin-felvétel (o-11 o); GIF-pozitív sejtek száma tálanként (üres hisz­­togram); BZT-érzékeny dopamin-felvétel 1000 GIF-pozitív sejtre számítva (vonalkázott hisztog­­ram). A sejtek életképességének meghatározásához hasonlóan a Tl-dopamin és a 4C-GABA specifi­kus felvétele is csökkent a tenyészetben 60-80%­­kal a 4. és 8. nap között in vitro. Ez is arra utal, hogy nincs látható különbség a jelenlevő, különböző típu­sú sejtek in vitro viselkedése között, és igazolja, hogy ezek a felvételi paraméterek megfelelően jel­zik a sejtek in vitro életképességét. 5. A tisztítási eljárás fő lépései után kapott anya­gok biológiai aktivitása Ennek meghatározására a tisztítás fő lépéséből származó, fagyasztva szárított anyag aliquot részeit közvetlenül a használat előtt az eredeti térfogathoz képest 1/10-nyi desztillált vízben újra szuszpenzál­­tuk. A fehérjetartalmat GX. Peterson (Anal. Bio­­chem., 83, 346 /1977/) szerint határoztuk meg. A mintákat ezután a tenyésztő közeggel felhígítottuk 0,45 pm-es Millex szűrőn átszűrtük, és 1 mg/cm3 marha szérumalbuminnal telítettük. A leszűrt anyag kívánt mennyiségét a felkenés napján hozzá­adtuk a középagyi sejtek tenyészetéhez. Azonos mennyiségű marha szérumalbumiat adtunk a kont­roll sejttenyészetekhez is. A közeget kétnaponként cseréltük, vagy a tisztítási lépésből származó anya­got (ill. a kontroll tenyészetek esetés az albumint) utánpótoltuk. Mindegyik fő tisztítási lépés utáni anyag - a nyers felülúszó kivonat a teljes homogeni­­zátum savas kicsapása után, a Sephadex G-150 osz­lopról eluálódó, 10 és 30 kilodalton közötti móltö­megű frakció és a TSK-CM-3SW oszlopról az 1 mól/1 ammónium-acetáttal eluálódó frakció nölveni tudta a tenyészetben levő, disszociált, fötális, közé­pagyi idegsejtek életképességét, vagyis túlélését és fejlődését. A nyers felülúszó frakció ill. az albumin (kontroli-tenyészet) morfológiai megjelenését mu­tatja az 5A és 5B. ábra a felkeoés napján (0. nap) hozzáadott tenyésztési közeggel in vitro végzett sejttenyésztés 8. napján. Az ábrák az egér fötális, középagyi sejtjeinek tipikus képét mutatják in vit­ro, 8 nappal azután, hogy hozzáadtunk 10 pg/cm3 albumint a kontroli-tenyészethez (5A ábra) és 10 pg/cm3 felülúszó kivonatot a teljes homogenizá­­tum savas kicsapása és dialízise utáni lépésből (5B. ábra). Ez a hatás bebizonyosodott az össz-DNS tarta­lom meghatározása, az egyes tálakban talált dopa­minerg sejtek száma (6. ábra), a 3H-dopamin és a 14C-GABA specifikus in vitro felvételének időfüg­gése alapján is. A 6. ábra a GIF-pozitív (azaz dopaminerg) sejtek számának és a tálankénti DNS-tarűd ómnak az érté­kelését mutatja az in vitro sejttenyésztés nyolcadik napján, 10 pg/cm3 albumin (kontroli-tenyészet, üres hisztrogramm) ill. a teljes homogenizátum sa­vas kicsapása és dialízise utáni felülúszó 10 p/cm3- ének (vonalkázott hisztogramm) hozzáadása után. Az értékek három analízis kőzépértékeit és (±) a középérték standard hibáját adják meg. A 7. ábra azt mutatja, hogy a fenti felülúszó hatása a dopa­min-f elvételre koncentrációfüggő. Ugyanezt észlel-12 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 7

Next

/
Oldalképek
Tartalom