197732. lajstromszámú szabadalom • Eljárás naftotiazepinon származékok és az azokat tartalmazó gyógyászati készítmények előállítására

197732 elő. (Ill) általános képletű vegyületként pl. az alábbi haiogenidek alkalmazhatók: 2- (dimet il-amino) -etil-klór id; 2- (dimetil-amino) -etil-bromid; 2- (dietil-amino) -etil-klórid; 2- (dipropil-amino) -etil-klorid és 3- (dimetil-amino) -propil-klorid. Az (I) általános képletű vegyületek és gyógyászatilag alkalmas savaddíciós sóik ka 1 - ciumantagonisták — közelébbről kalciumcsa­­torna-blokkolók — és ezért iskémia kezelésé­re és vérnyomáscsökkentésre alkalmazhatók. Ezenkívül az (I) általános képletű vegyü­letek bizonyos esetekben az alábbi AtPase­­-teszt szerint kalmodulin-antagonista aktivi­tást mutatnak; ez szintén kedvező hatás. Az (I) általános képletű vegyületek hasz­nos farmakológiai hatásait melegvérű állato­kon az alábbi standard módszerekkel ha­tározzuk meg. Vérnyomáscsökkentés spontás hipertenzív patkányon Minden teszthez 6—6 hím SH patkányt alkalmazunk. Az állatok testsúlyát feljegyez­zük. Nem érzéstelenített és befogva tartott patkányok farkán a szisztólás vérnyomást (Hgmm) mérjük (a gyógyszer beadása előtt 6 kontroll meghatározást végzünk). A pat­kányokat előzetesen 5—10 percen át 32—34°C- on melegítjük. A szisztólás vérnyomást el­­zárásos karmantyúval mérjük. A teszt-vegyületet a patkányoknak oráli­san adjuk be 5% teszt-vegyületet tartalmazó akácia-gumi-készítmény formájában. A pat­kányok vérnyomását a teszt-vegyület orális beadása után órákon át mérjük. A teszt-ve­gyület vérnyomáscsökkentő hatása jelzi az antihipertenzív hatóanyagként való alkal­masságot. A kapott eredményeket az I. táblázat tar­talmazza. Tengerimalac-ileum assay — tónikus kontrakció 300—400 g testsúlyú hím tengerimalaco­kat elkábítunk és elvéreztetünk. Az állatok hasát felnyitjuk és a terminális ileumból 10— 15 cm-t óvatosan eltávolítunk, megtisztítunk és alábbi összetételű Tyrode-oldatba helye­zünk: NaCl (8 g/l), KCI (0,2 g/1), MgCl2 (0,2 g/l), CaCI2 (0,2 g/l), NaH2P04 (0,05 g/ /1), NaHC03 (1,0 g/l) és glükóz (1 g/l). Az oldatot 37°C-on tartjuk és 95% oxigén­ből és 5% szén-dioxidból álló gáz alá helyez­zük. Ileumdarabokat üvegbotra helyezünk és a külső longitudinális izomrétegen levő mezen­­terikus csatlakozás hosszában lapos vágást ejtünk. A hosszanti izmot az alatta levő kör­alakú izomtól enyhe vágással elválasztjuk [Rang, H.P.: Annals of N.Y. Academy of Sciense Vol. 144 576 (1964)]. A szövetet egyik végén a szövettartóhoz rögzítjük, míg másik végét fonál segítségével erő-transz­­ducerrel kötjük össze és 37°C-on tartott, 95% 6 9 oxigénből és 5% szén-dioxidból álló gáz alá helyezett Tyrode-oldatban felfüggesztjük. Kez­detben 500 mg-os feszítést alkalmazunk és a szövetet az értékelés megkezdése előtt 60 percig egyensúlyra hagyjuk beállni. Ebben az időszakban 16 percenként megmossuk. Min­den készítményt 16 perces időközökben 2 per­cen át annyi kálium-kloriddal kezelünk, hogy a fürdő K"^ koncentrációja 2 percig 80 mMK legyen, majd friss oldattal mossuk. A K+­­-ionokkal való „kihívások“ közötti 16 perces szünetet a kísérlet alatt megtartjuk. A K+ „kihívásra“ való reagálások stabilizálódása után a teszt-vegyületet (potenciális kalcium­­-bemenet antagonista) a K+ kezelés előtt két perccel és a 2 perces kezelés alatt be­adagoljuk a fürdőbe, majd a fürdőt tisz­títjuk és friss oldattal mossuk. A teszt során a potenciális antagonistát logaritmikusán nö­vekvő dózisokban adagoljuk (10-4 M érté­kig). A teszt-vegyületnek az izom tónikus kont­rakcióját gátló hatását tekintjük a kalcium­­csatorna-blokkoló aktivitás mértékének. IC50 értéknek azt a koncentrációt tekintjük, amely­ben a teszt-vegyület az izom tónikus kont­rakcióját 50%-kal gátolja. A kapott eredményeket a II. táblázat­ban foglaljuk össze. Calmodulin (CaM) — antagonista aktivitás (AtPase teszt) A Calmodulin (CaM)-antagonista akti­vitást a CaM-aktivált Ca2+-Mg2+-AtPase-ak­­tivitás gátlása alapján, az alábbi teszttel ha­tározzuk meg. CaM-deficiens eritrocita-membránok ké­szítése Eritrocita-membránokat patkányból Luthra és tsai módszerével készítünk [Bio­­chim. Biophys. Acta 418:180 (1976)] Töltött eritrocitákat 0,172 mólos trisz-HCl pufferrel (pH=7,6) háromszor mosunk. A „buffy-coat“ frakciót óvatosan eltávolítjuk. Az ejitrociták hemolízisét oly módon indukáljuk, hogy 20 ml 50%-oseritroeita-szuszpenzióhoz (0,172 mólos trisz-HCl-pufferben, pH=7,6), 280 ml desz­tillált vizet adunk. Ezután 27,000 g mellett 30 percen át centrifugáljuk; pellet alakjában kapjuk az eritrocita-membránokat. A pelletet l millimól etilénglikol-bisz-(tó-amino-etil - -éter)-N,N,N’,N’-tetraecetsavat (EGTA) tar­talmazó 20 millimólos trisz-HCl-pufferrel (pH=7,6) háromszor mossuk és a követke­ző mosásnál az EGTA-t elhagyjuk. Csaknem fehér „kísértetek“ alakjában eritrocita-memb­ránokat kapunk, amelyeket 18—18 millimólos hisztidin-imidazol-pufferrel (pH=7,l) egyszer mosunk, a kapott CaM-deficiens eritrocita­­-membrán-pelletet a fenti pufferban szusz­­pendálva kb. 2 mg/ml végső fehérje-koncent­rációt nyerünk. Ca2+-Mg2+-AtPase assay Az AtPase assay lényegében a Gopinath és Vincenzi által leírtaknak felel meg [Bio-10 5 !0 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65

Next

/
Oldalképek
Tartalom