196237. lajstromszámú szabadalom • Eljárás humán növekedési előhormon előállítására

1 196 237 2 a gen a mikroorganizmus szaporodásakor repiiká­­lódik és amely mikroorganizmusból ezután ismert módszerekkel újra izolálható. Ily módon további kísérletekre, módosításra és más vektorokba vagy ugyanazon vektorokon belül más lokuszokha való beépítéshez folyamatosan rendelkezésünkre áll a gén. A gén kifejezésére a klónozott gént megfelelő orientációban és leolvasási fázisban oly módon építjük be egy szabályozó szakaszba, hogy az a prokarióta gén leolvasása során olyan kimer pro­tein szintézisét eredményezze, amely tartalmazza a klónozott génben kódolt aminosav-sorrendet. A kimer protein megfelelő helyen való hasítására, azaz az aminosav-sorrend felszabadítására külön­böző specifikus protein hasítási technikát használ­hatunk, a hasított fehérjét ezután ismert módsze­rekkel tisztítjuk. A szabályozó szakaszhoz képest megfelelő helyzetben lévő kiónozott gént tartal­mazó és kifejeződő transzfer vektor előállítására vonatkozóan lásd. Polisky és munkatársai (Proc. Nac. Acad. Sei, USA, 73, 3900, 1976), Itakura és munkatársai (Science, 198, 1056, 1977), továbbá Villa—Komaroff és munkatársai (Proc. Nat. Acad. Sei, USA, 75, 3727,1978), Mercercau—Pu­­ijalon és munkatársai (Nature, 275, 505, 1978), és Chang és munkatársa (Nature, 275, 617, 1978) közleményeit és a 933035 számú, Ruttcr és mun­katársai által leírt egyesült államokbeli leírást. A fenti irodalomban ismertetettek a jelen leírás részét képezik. A Science 198 1056 (1977) cikke szerint a 14 aminosavból álló szomatosztatin génjét szintetizál­ták, ésagéntpBR322 plazmidon É.coli ß-galakto­­zidáz génjével fuzionálták. Az E. colinak a kimer plazmid DNS-sel végzett transzformálásával olyan polipeptid szintetizálódott, mely magában foglalta a szomatosztatinnak megfelelő peptidet is. A gént úgy alakították ki, hogy az N-terminá!is végen Met fejeződjön ki, később specifikus hasítás miatt. A 868853 sz. belga szabadalmi leírás baktériu­mokban kifejeződésre alkalmas mRNS tisztítását ismerteti. Klónozást végeztek humán korion szo­­matomammatropin (pHCS— 1) és humán növeke­dési hormon esetén (pHGH—1)? a klónozást pMB—9 és Eco Rí, illetve pBR322 és HindlII alkalmazásával végezve. A cikk nem tesz említést növekedési előhormonról. A Nucleic Acid Research 6 915 (1978) cikke patkány prolaktin gént tartalmazó rckombináns DNS előállítását és analízisét ismerteti. A klóno­zást pBR322-vel (PstI) végzik, de kifejezésről nem tesznek említést. Az előállítás során kis valószínű­séggel keletkeznek ugyan növekedési hormont termelő transzformánsok, növekedési előhormon termelésről azonban nincs ismertetés. A 867424 sz. belga szabadalmi leírás patkány preproinzulin és részben patkány növekedési elő­hormon és humán növekedési hormon gén tisztítá­sára, klónozására és jellemzésére vonatkozik, kife­jeződést azonban nem végeznek. Egy emlős fehérjét, például a humán pre-növe­­kedési hormont, ha rekombináns dezoxjribonukle­­insav technikával kívánunk előállítani, úgy először az emlős gén izolálására oly módon, hogy a kióno­zott gént hibridizációs próbaként használjuk fel. Ezen felül felhasználhatjuk a klónozott gént hibri­dizációval azonos vagy rokon gének függetlenül izolátumainak azonosítására vagy homológiájuk megállapítására. A genetikai kód természetéből adódóan klónozott gén megfelelő leolvasási fázis­ban transzlatálva (átfordítva) kizárólag annak az adott aminosav-sorrendű fehérjének a termelését fogja irányítani, amelynek a genetikai kódja en­nem megfelel és sohasem másét. A humán pre-növekedési hormont meghatározó kiónozott gént többféle úton használhatjuk fel. Ha kifejeződő transzfer vektorba építjük be, úgy a clónozott gént hordozó vektorral transzformált gazda mikroorganizmus a humán pre-növekedési hormont fogja szintetizálni. A transzformált gaz­dasejt növekedésekor növekedési előhormon szin­tézise kimer protein alakjában történik meg. Ha a kimer protein prokarióta szakasza egy kiválasztott vagy más módon megvalósuló gazdasejt fehérjé­nek úgynevezett szignál szakasza, úgy a kiválasztás vagy a más módon való megvalósulás bekövetke­zik, a növekedési előhormont tartalmazó kimer fehérje tisztíthatósága és stabilitása pedig nagy­mértékben növekszik. Abban az esetben, ha a prokarióta rész rövid, úgy a prokarióta sejtből való kiválasztást maga az előszekvencia segítheti elő, abban az esetben, ha ez az előszekvencia a prokari­óta sejtben az curkarióta sejtben meglévő funkció­hoz hasonló szerepet tölt be. A klónozott gént felhasználhatjuk továbbá részleges homológ szek­venciákat tartalmazó genetikai anyag izolálására, hibridizációs módszerekkel. Ily módon izolálhatok más emlős fajok növekedési hormonjainak génjei, mivel élettani szempontból vizsgált hasonlóságuk hiánya ellenére a hatásos hibridizációhoz elegendő mennyiségű hasonló szekvenciák szerepelnek ben­nük. A különböző állatfajok növekedési hormon­jai mezőgazdasági és állatorvosi célokra használha­tók. Egyetlen ember növekedési hormonját meg­határozó gén hibridizációs technikával izolálható abból a célból, hogy analizálhassuk, és kezelhes­sük az adott specifikus növekedési zavart. A klónozott és a humán növekedési előhormont meghatározó gént különböző módszerekkel fel­használjuk a növekedési előhormon előállítására. A növekedési előhormon használható, mivel is­mert enzimatikus és kémiai módszerekkel növeke­dési hormonná alakítható. Például oldható enzim­készítménnyel lehasíthatjuk az előszekveniát, ahogy azt Blobel és munkatársai (lásd fent) leírják a szignálpepticlek specifikus eltávolítása kapcsán. A találmány szerinti eljárás értelmében klóno­zunk egy humán növekedési előhormont meghatá­rozó bázis-szekvenciát tartalmazó cDNS moleku­lát. A klónozott cDNS szerkezetét nukleotid-szek­­vencia analízissel bizonyítjuk. A genetikai anyag eredeti forrása az emberi agyalapi mirigy daganatos szövete, amelyet műtéti úton kapunk. A genetikai anyagot előnyösen egyetlen ember sejtjeiből izoláljuk és az emberi tumorból származó gén klónozására speciális tech­nikát használunk. A sejtekből hírvivő ribonukleinsavat izolálunk és kromatográfiával és üiepítéssel részlegesen tisz­títjuk. Az aktív frakciókat oly módon azonosítjuk, hogy vizsgáljuk sejtmentes fehérjeszintézist végző rendszerijén a frakciók körülbelül 200 aminosav-5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 6

Next

/
Oldalképek
Tartalom