194307. lajstromszámú szabadalom • Eljárás nagy kópiaszámú plazmidvektorok előállítására

1 194 307 2 ja, egy nagyobb molekulasúlyú RNS szlntetízálódflc, amely már nem képes repllkádós represszorként mű­ködni. Ennek eredménye a nagyobb kópiaszám. A spontán pontmutádóval — ami célzottan Is létre­hozható - a plazmld sejtenként! kópiaszámát mint­egy 20-30-szorosra (~1000) sikerült növelni. Ez a pontmutádó a pBR322-n kívül minden olyan plaz­mld sejtenként! kópiaszámának jelentős növelésére is alkalmas, amely a pBR322-vel azonos repllkádós régióval rendelkezik. Azt találtuk azonban, hogy ha a G—T pontmu­­tádót az eredeti pBR322 plazmldban hozzuk létre, az nem létképes. Ennek oka, hogy a plazmld anti­biotikum rezisztenciát meghatározó génjein - Ap = = béta-laktamáz és Tt = membrán fehéije(k) - a nagy kópiaszám következtében mindkét fehérje szin­tézise fokozódik, és az utóbbi (a tetraciklin-rezisz­­tenclát okozó membránfehérje) ebben a mennyiség­ben már letális a sejt számára. Ugyanez a probléma jelentkezik a pBR322 minden az eredeti tetraciklin­­rezisztencia gént változatlan formában tartalmazó származéka esetében. Előbb ismertetett kísérletünkben azért nem ta­lálkoztunk ilyen nehézséggel, mert olyan plazmi­dokkal dolgoztunk, amelyekben a pBR 322 plazmid BamHl-EcoRI helyére idegen DNS fregmentumokat klónoztunk, és ezzel ínaktiváltuk a tetraciklin-re­­zisztencia gént. A megoldás tehát a pBR322 plazmld­ban vagy azonos repllkádós régióval rendelkező szár­mazékában létrehozott olyan változtatás, amely inaktiválja vagy mérsékli a tetraciklin-rezistenda gén működését. Ennek megfelelően a találmány sze­rinti eljárás egy előnyös foganatosítás! módja szerint a pBR322, származékai vagy ezzel azonos repllká­dós régióval rendelkező plazmidok a tetraciklin­­rezisztendát okozó membránfehérje termeléséért felelős gént nem, inaktivált vagy csökkentett műkö­dést biztosító formában tartalmazó származékain, a represszor RNS-t kódoló génszakaszon a represszor termelését módosító pontmutáclót hozunk létre. Különösen előnyösen, a pBR322, ennek származé­ka vagy más, de azonos repllkádós régiót tartalmazó plazmld DNS-ben a pBR322 számozása szerint 3074. pozícióban a GC bázispárt TA-ra cseréljük irányí­tott mutádóval vagy bármely, a későbbiekben is­mertetésre kerülő pHC plazmid megfelelő, mutádót tartalmazó részének kicserélésével a kívánt plazmid ettől a mutációtól eltekintve teljesen azonos régió­jával. Mint már említettük, a GC—TA pontmutádót a pBR322 vagy ezzel azonos repllkádós régióval ren­delkező plazmidnak olyan származékán kell létrehoz­ni, amely nem, inaktivált vagy csökkent mértékű fehérjeszintézist biztosító formában tartalmazza a tet­­raciklln-rezlsztendát biztosító membránfehéijét kó­doló gént. Különösen előnyös a tetraciklin-rezisz­­tenciát biztosító DNS, vagy akár ezén túlmenően egészen a repllkádós origóig teijedő pBR322 rész eltávolítása és szintetikus eredetű pollllnkene történő helyettesítése, ami az így a plazmidba épített restrik­­dós endonukleáz hasítási helyek következtében Igen kibővíti a kapott plazmidok alkalmazhatóságának lehetőségeit. A pHC314, pHCll2 és pHC624 vektorok konstruk­ciója Az előzőekben Ismertetett kísérletekben kapott pHC plazmidok további átalakítása során, azért, hogy .ezekből különböző restrikdós endonuldeázok­­kal képzett DNS fragmentumok beépítésére alkalmas vektorokat alakítsunk ki, pollUnkereket inszertiltunk a pHC81 plazmidba. Az EcoRI endonukleázzal 11- nearizált pHC81 plazmld DNS-t bakteriális alkalikus foszfatázzal defoszforDált, EcoRI enzimmel emész­tett rrvx plazmid DNS [Seed, B.: Nucleic Adds Research, 11 2427-2446 (1983)] fragmentumokkal llgáltuk és a ligátummal E. coll HB101 sejteket transz­formáltunk. Az Ap rezlsztens baktérium kolóniákból plazmid DNS-t izoláltunk és azokat EcoRI és PstI restrikdós endonukleázokkal hasítva gélelektroforé­­zissel analizáltuk. A további átalakításhoz azt a plaz­­midot választottuk (pHC314, 3. ábra), amelyiket az EcoRI 2300 és 110, a PstI pedig 1580 és 820 bázis­páros fragmentumokra hasít. Ebből a plazmidból a csak egy EcoRI helyet tartalmazó pHC312 kialakí­tása a következő módon történt: BamHI restrikdós endonukleázzal hasítottuk a plazmidot, majd a li­neáris molekulát Hinfl enzimmel részlegesen emész­tettük. A DNS fragmentumokat 1,2%-os agaróz gél­ben elválasztottuk és izoláltuk a gélből a 2010 bp-os fragmentumot. A molekulalák BamHI és Hinfl en­zimek hasítására képződött egyesszálú részeket tar­talmazó végeit a DNS polimerázl enzim Klenow szubfragmentumával tompa végekké alakítottuk, majd T4 Indukált polinukleotid Ugázzal cirkulari­­záltuk. HB101 sejtekbe transzformálva a ligáit DNS-t egyedi kiónokat izoláltunk és a további munkához kiválasztottuk a BamHI endonukleázzal nem hasít­ható, EcoRI-gyel linearizálható, Hinfl hasítására pe­dig 1495 és 516 bp-os fragmentumokra darabol­ható pHC312 plazmidot (4. ábra). Tompa végű DNS fragmentumok klónozására alkalmas, nagy kópia számú vektor kialakítsam a pHC312 plazmi­dot EcoRI és HindlII restrikdós endonukleázokkal hasítottuk és agaróz gélből izoláltuk az 1980 bp-os nagy fragmentumot. Ehhez EcoRI és HindlII enzi­mekkel emésztettnAN7 plazmid [Seed, B.: Nucleic Adds Research, 11 2427-2446 (1983)] DNS-t ke­vertünk és polinukleotid ligázzal összekapcsoltuk a molekulákat. A ligáit mintával E. coli HB101 sejte­ket transzformáltunk és egyedi, Ap rezisztens bakté­rium kiónokból plazmld DNS-t izoláltunk. Az így elő­állított plazmid DNS (pHC624, 5. ábra) nem tartal­maz Gál hasítási helyet, a pHC312 plazmidtól elté­rően azonban Smal, Sáli és BamHI restrikdós endo­nukleázokkal linearizálható. A kísérletekben a következő anyagokat és módsze­reket alkalmaz tűk: Baktérium törzsek és plazmidok: pBR322 amp, ter [Bolivar, F., Rodriguez, R. L., Greene, P. J., Betlach, M. C., Heynecker, H. L., Boyer, H. W., Crosa, J. H., Falkow, S.: Gene, 2 95 (1977)]. pBR329 ampr, chlr, tetr [Covarrubias, L., Bolivár, F.: Gene, í 7, 79-89(1982)].____ Á wVX és wAN7 plazmid DNS preparátumok az SZBK Biokémiai Intézetben készültek [Seed, B.: Nucleic Adds Research, 11, 2427-2446 (1983)]. A használt restrikdós endonukleáz, T4 indukált polinukleotid kínáz és polinukleotid Ugáz prepará­tumokat az MTA SZBK Biokémiai Intézet munkatár­sai készítették a közölt tisztítási eljárásokat alkalmaz­va [Roberts, R. J.: Nudeic Adds Res. 11 rl35-rl37 6 10 15 ( 20 25 30 35 40 45 50 55 60 3

Next

/
Oldalképek
Tartalom