193585. lajstromszámú szabadalom • Eljárás mikroorganizmusok és makroorganizmusok sejtkultúráinak tenyésztésére alkalmas szilárd táptalajok előállítására

193585 csal jól levehetők és a táptalaj felülete nem károsodik, 4. példa Az A és C oldatokat az 1. példa szerint ál- 5 Htjuk elő. A B oldat előállításához 4,125 g N,N’-metilén-bisz-akrilamidot 500 ml 0,85%­­os vizes nátrium-klorid oldatban oldunk, 60°C-ra felmelegítjük, hozzáadunk 470 g ak­­rilamidot és a teljes oldódásig keverjük. Ek- '0 kor leszűrjük és a térfogatot 0,85%-os vizes nátrium-klorid oldattal 1000 ml-re egészítjük ki. A fenti oldatokból a reakciókeverék elké­szítését és a kopolimerizációt az 1. példában 15 leírtak szerint végezzük. A reakciókeverék ily módon az akrilamid és N,N’-meti!én-bisz-akrilamid monomereket 15,0 : 0,132 tömegarányban tartalmazza, és a keverék fiziológiás sóoldathoz viszonyított 20 tömegaránya l : 5. 11 A fenti poliakrilamid gélt Staphylococcus 209 P biomassza előállításához szükséges, szilárd táptalaj alapjaként alkalmazzuk. Az előállított poliakrilamid tárcsákat 0,85%-os nátrium-klorid oldatban mossuk és Hottinger­­-féle 200 mg% aminonitrogént tartalmazó tripszin-emésztési húsleves tápöldattal töme­gük 2,5-szörösére duzzasztjuk. A kész, szilárd táptalajt gőzben, nyomás alatt, 120°C hőmérsékleten 30 percig sterili­záljuk. Kontroll táptalajként agarizált Hottin­­ger-táptalajt (200 mg% aminonitrogén tar­talommal) és a 977466 számú szovjet szerzői tanúsítványban leírt eljárással előállított szi­lárd táptalajt alkalmazzuk. 1-1 60—63 mm átmérőjű tárcsára számítva 10-8 mikro­­ba/1 ml Staphylococcus-t inokulálunk. A kö­vetkező 2. táblázatban összefoglaljuk a ka­pott eredményeket, azaz megadjuk a különbö­ző táptalajokon kapott Staphylococcus bio­massza mennyiségeket. 12 2. Táblázat Staphylococcus biomassza mennyisége mg/cm "ben E példa szerint előállított táp­talajon 1. példa szerint előállított táp­talajon 977466 számú szovjet szer­zői tanúsítvány szerinti táp­talaj on Agarizált táptalaj on 2,01 1,57 1 ,50 1,55 A példa szerinti poliakrilamid-gél duzzasztás utáni összetétele a következő: Akrilamid-N,N -metilén-bisz-akri1-amid kopolimer 6,0 tömeg% Hottinger-féle tripszin-emésztési­-húsleves oldat 94,0 tömeg% 5. példa A poliakrilamid gélt az 1. példában leírtak szerint állítjuk elő és Verticilium dahliae gom- 50 ba tenyésztéséhez szükséges, szilárd táptalaj alapjaként alkalmazzuk. A poliakrilamid-gél tárcsákat 0,85%-os nátrium-klorid oldattal átmossuk, majd sókeverékes folyékony tápol­datban tömegük 3,5-szörösére duzzasztjuk. 55 Sterilizálás után a kész táptalajt a gom­bakultúrával beoltjuk. Kontrollként agari­zált, sókeverékes tápoldattal átitatott, 1. pél­da szerint előállított táptalajt alkalmazunk, qq Az inkubálást 28°C hőmérsékleten végezzük. A példa szerint előállított, szilárd táptala­jon a gombák a tenyésztés harmadik napján igen intenzív szaporodást mutattak karakte­risztikus morfológiai és kultúratulajdonsá­gok mellett, míg hasonló szaporodás a kont- 65 roll-táptalajokon csak a tenyésztés ötödik napján volt megfigyelhető. 6 példa Az 1. példa szerint elkészített reakcióke veréket egy reaktorba öntjük és a képződő poliakrilamid-gélből két lapos csíkot alakítunk ki. Ezek egyike 180 x 100 x 0,8 mm méretű, a másik 180 x 100 x 2,5 mm méretű, és ez utób­bin 3 x 1,0 mm-es üregeket képezünk ki sakk­tábla-szerű elrendezésben, egymástól 1 — —1,5 mm távolságra. A sterilizációt 40 percig végezzük, majd a két csíkot az 1. példában le­írt összetételnek megfelelő reakciókeverék­kel átitatjuk, és oly módon helyezzük egymás­ra, hogy zárt üregek alakuljanak ki a makro- és mikroorganizmusok tenyésztése számára. Ezt követően 40 perc után egy egységes blokk alakul ki, amelyet úgy választunk részekre, 7

Next

/
Oldalképek
Tartalom