192960. lajstromszámú szabadalom • Eljárás lankacidin-termelés fokozására

5 192960 6 maximália hozamot. A táptalajban felhalmozódott lankacidi­­neket a szokásos módon, hagyományos eljá­rásokkal választhatjuk el, többek között a tenyészetet vagy annak szűrletét vízzel nem elegyedő oldószerrel, például egy ketonnal - például acetonnal, 4-metil-2-pentanonnal észterrel - például etil-acetáttal, etil-propio­­náttal -, vagy valamely szénhidrogénnel - például hexánnal vagy benzollal - extrahál­juk, előnyösen olyan oldószert használunk, amely semleges éB lipofil tulajdonságú. Az extraktumot vizes savoldattal és vizes lúgol­dattal mossuk, majd bepárolva nyers lankaci­­dint kapunk. A nyersterméket kívánt esetben szilikagélen, alumíniumon vagy hasonló ad­­szorbensen oszlopkromatográfiás módszerrel tovább tisztíthatjuk, a fenti irodalmi utalá­sokban leírt eljárások szerint. A kapott lan­­kacidineket az egyes összetevőkre is szétvá­laszthatjuk. A lankacidin 14-helyzetóben levő hidr­­oxilcsoportol szelektíven észtercsoporttá ala­kíthatjuk úgy, hogy a tenyészethez, vagy előnyösen annak szűrletéhez az ecetsav vala­mely 1-4 szénatomos alkohollal, glikollal vagy glicerinnel alkotott észterét adjuk. Az észte­rekre példaként az etil-acetátot, monoacetint vagy triacetint említhetjük. A 14-helyzetben levő hidroxilcsoportot a táptalajban levő en­zim észterezi, például a táptalajhoz etil-ace­­tátot adva a megfelelő 14-acetil-észter-Bzár­­mazék keletkezik. Az észterezést például úgy folytatjuk le, hogy a tenyészet szűrletéhez 1/4-2-szer annyi észtert adunk, mint a szűr­let, és a szűrletet addig keverjük, míg emul­ziót kapunk, rendszerint 1 perc - 1 óra hosszáig, 15-70 °C-on, előnyösen 20-40 °C­­-on, pH 4-9 értéken. A fenti módon kapott észterszármazékot ezt követően a már emlí­tett módszerrel választjuk el a reakcióelegy­­ből. A találmány szerinti eljáráBBal előállított lankacidineket daganatellenes vagy baktéri­umellenes szerként, vagy sertés dizentéria kezelésére alkalmas antibiotikumként használ­hatjuk. A találmány szerinti eljárást a követke­ző példákkal kívánjuk közelebbről megvilágí­tani. 1 1. példa (1) 25 ml, 1 vegyesX oldékony keményí­tőt, 2 vegyesX nyers szójalisztet, 1 vegyes% kalcium-karbonátot és 0,1 vegyes% szójaola­jat tartalmazó táptalajt 200 ml-ea lombikba mérünk és sterilezzük. A táptalajt egy kacs ferde agaron fenntartott Streptomyces rochei subsp volubilis (IFO-12 507) tenyészettel be­oltjuk és 28 °C-on 200 fordulat/perc sebes­séggel működő rázógépen 24 órán keresztül rázatjuk. A kapott tenyészetet a továbbiak­ban inokulumként használjuk. 25 ml, 10 vegyesX glicerint, 2 vegyes% Proflo-t (Treders Oil Mill Co., Amerikai Egye­sült Államok), 0,5 vegyesX kukoricalekvárt, 1 vegyesX Polypepton-t (Daigo Nutritive Che­micals, Ltd., Japán), 0,1 vegyesX vas-szulfá­tot és 0,01 vegyesX szójaolajat tartalmazó táptalajhoz különböző, az 1. táblázatban fel­sorolt koncentrációban ß-ciklodextrint adunk. A táptalaj pH-ját 20 vegyesX-os vizes nétri­­um-hidroxid-oldattal 7-re állítjuk. Az előző lépés szerint elkészített tápta­lajokból 20-20 ml-t 200 ml-es lombikba mé­rünk és sterilezzük. A táptalajt 1 ml inoku­­lummal beoltjuk, és 24 °C-on 96 órán keresz­tül 200 fordulat/perc sebességű rotációs rá­­zóri rázatjuk. A táptalajon felhalmozódott lankacidinek mennyiségét ismert módon [J. Antibiotics, 24, 1 (1971)) kvantitatíven meg­határozzuk. A lankacidinek mennyiségét az alábbi módon számítjuk ki a biológiai érték­­mérés adataiból: A fentebb leírt módon előállított lankaci­­dint metil-izobutil-ketonnal extraháljuk. Az extraktumot vékony réteg-kromatográfiás módszerrel futtatjuk (Bpot film, Tokyo Kaséi Co., Japán), futtattóelegyként etil-acetét és etil-éter 1:3 arányú elegyet használunk. A Sarcina luteaval (PCI-1001) kapott gátlási gyűrű átmérőjét a standarddal (ismert raeny­­nyiségű lankacidinnel) kapott gátlási zóna átmérőjével hasonlítjuk ÖBBze. Az eredményeket az 1. táblázatban foglaljuk össze. (2) 1 1, 9 mmól/1 /»-ciklodextrin jelenlé­tében kapott tenyészetet centrifugálunk. A felülúszót 1 1 4-metil-2-pentanonnal extrahél­­juk, vízzel mossuk, majd csökkentett nyomá­son bepároljuk. A koncentrátumhoz 100 ml n­­-hexánt adva 3 g csapadékot kapunk. 2,5 g így kapott nyersterméket 25 ml kloroform­­-etil-acetét (1:1) elegyben oldunk, majd 75 g szilikagélen (0,05-0,2 mm; Merck és Co., Ame­rikai Egyesült Államok) adszorpciós kroma­tográfiás módszerrel tisztítunk. Az oszlopon 250 ml étert folyatunk át, majd az anyagot egymást követően 1 1 éter­­-etil-acetát (1:1) eleggyel, 1 1 etil-acetáttal és etil-acetát-aceton (1:1) eleggyel eluáljuk. Az így kapott eluátumok tartalmazzák az an­­tibakteriális hatású frakciók többségét. A baktériumellenes hatással rendelkező frakciókat összegyűjtve és koncentrálva 1,4 g sárga port kapunk. A fenti nyerster­méket 0,5 kg szilikagélen (HF254; Merck és Co., Amerikai Egyesült Államok) vékonyréteg­­-kromatográfiás módszerrel a lankacidin-cso­­portot alkotó megfelelő egyes összetevőkre választjuk szét. A kromatogrammot etil-acetét-éter (1:3) futtatóeleggyel fejlesztjük ki, és etil-acetát­tal extraháljuk. Vizes mosás után az extrak­tumot szárítjuk, koncentráljuk, majd átkris­­tályosítjuk, ily módon 40 mg lankacidin C-t és 3,5 mg lankacidin A-t kapunk. A termékek olvadáspontja, fajlagos for­gatóképessége (c=l,0; etanol), ultraibolya ab­szorpciója (227 nm-nél) és elemanalizise pon-5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 4

Next

/
Oldalképek
Tartalom