192585. lajstromszámú szabadalom • Eljárás tisztított, detoxikált endoxint és egy mikroorganizmus piridin-pldható kivonatát tartalmazó gyógyszerkészítmény előállítására

1 192 585 2 és 1 ml kloroform-metanol 4 : 1 keveréket adunk min­den csőhöz, amely művelet tiszta oldatot eredményez. Az oldatokat egyesítjük, és az oldószert forgó bepárló­­ban lepároljuk. A maradékot nagyvákuumban szárítjuk és liofilezzük, 45 mg nyers A lipidet nyerve. Ebből az anyagból 20 mg-ot hideg (0 °C) acetonnal kezelünk, ultrahanggal kezelünk, és az oldatot Whatman 1. gravi­tációs szűrőberendezéssel szűrjük 5 °C hőmérsékleten, 13 mg nyers, detoxikált endotoxin marad szárítás után. 6. PÉLDA — Tisztított, detoxikált endotoxin előállí- 10 tása. 110 g LH-20-100-at (Pharmacia, 25-100 mikron részecskeméret) keverünk össze 600 ml kloroform-me­tanol 2 : 1 keverékkel, majd az egészet 30 percig állni hagyjuk. Az így nyert zagyot 25 x 1000 mm-es üveg 15 kromatográfiás oszlopba (BRL Laboratories) helyezzük, amelyen nyomáshoz illeszkedő szerelvény található. Ami­kor az oszlop töltése befejeződött, az oszlopot Teflon nyomásálló csővezeték segítségével 1SCO 132 Model szi­vattyúval kötjük össze. 400 ml kJorofoím-metánol 4:1 20 arányú keveréket szivattyúzunk át az oszlopon 3 ml/perc sebességgel. 100 mg nyers, detoxikált endotoxint, ame­lyet a 4. példával összhangban állítottunk elő, viszünk fel az oszlopra 2,5 ml kloroform-metanol keverékben, minta­vevő hurok segítségével. Az áramlást 1 ml/percre csők- 25 kentjük és miután!. 50 ml eluátumot összegyűjtöttünk, a kimenő folyadékáramot frakciógyűjtővel kapcsoljuk össze. 4 ml-cs frakciókat szedünk és a tisztított, detoxi­kált endotoxin frakciókat a frakciók vékonyréteg-kroma­tográfiás analízisével határozzuk meg (E. Merck,0,25 mm 30 vastag, futtató: kloroform-metanol-víz-ammónium-hid­­roxid 50 :25 :4:2). A tisztított, detoxikált endotoxin frakciókat egyesít­jük és az oldószert bepárlással eltávolítjuk, így 30 mg tisztított, detoxikált endotoxin marad fehér porként. 35 7. PÉLDA — Tisztított, detoxikált endotoxin előállí- ' tása. 33 g DEAE-cellulózt (Whatman DE-32) szuszpendá­­lunk 150 ml jégecetben és csendesen rázzuk 10 percen át, zagy-szerű port nyerve. A keveréket egy éjszakára félre- 40 tesszük. A zagyot ezután 25 x 400 mm-es oszlopba öntjük, a csap nyitogatásával hagyjuk ülepedni, és a felesleges sa­vat ezután lecsapoljuk. Az oszlopot 2000 ml metanollal, majd 200 ml kloroform-metanol 4 :1 keverékkel mossuk. 100 mg nyers, detoxikált endotoxint, amelyet a 4. példá­val összhangban állítottunk elő, viszünk rá az oszlopra 3 inl kloroform-metanol 4 :1 keverékben vagy kloroform­­-metanol-víz 80 :20 :1 keverékben. Az oszlopot 350 kló- ^ rofonn-metanol 4 :1 keverékkel, majd 300 ml metanol-víz 99 : 1 keverékkeleluáljuk. Lineárisgrádienst létrehozó ké­szüléket használva az oszlopot 2000 ml lineáris gradiens­sel eluáljuk, 100 % metanollal kezdve,és0,2 mól/liter me­­tanolos ecetsav oldattal fejezve be. Az oszlopot 6 ml/perc gg sebességgel eluáljuk és 15 ml-es frakciókat gyűjtünk. Minden második frakciót analizálunk teljes foszfor-tarta­lomra Bartlett, G. R. eljárása szerint \Biol. Chem. 234, 466-471 (1959)]. A frakciókat összegyűjtjük és forgó bepárlóban bepároljuk közel száraz állapotig, majd 10 ml klorofonn-metanol 2 :1 keverékben és 40 ml 0,001 mó­los ecetsav-oldatban felvesszük választótölcsérben. Az al­só réteget elkülönítjük, Whatman 2. szűrőpapíron átszűr­jük és szárazra pároljuk, 19,2 mg tisztított, detoxikált endotoxint nyerve. 8. PÉLDA 23 db 8-10 hetes nőstény C3HeBFeJ egeret injekció­zunk intraperitoneálisan 105 petefészek teratokarcino­­ma sejttel. 24 óra múlva 5 egeret injekciózunk egyszer 5 0,2-0,5 ml izotóniás konyhasó-oldattal, amely 50 mikro­­gramm TDE-t tartalmaz, és 6 egeret injekciózunk egyszer 0,2—0,5 ml izotóniás konyhasó-oldattal, amely 300 mik­­rogramm PK-t és 50 mikrograxnm TDE-t tartalmaz. Vé­gi! 12 egeret injekciózunk egyszer 0,2-0,5 ml só-oldat­tal, ez a kontrol-csoport. 21 nap után az 5 db TDE-vel injekciózott egérből 4 a tumor teljes visszafejlődését mu­tatja, és a 6 db TDE-vel és PK-val injekciózott egérből 6 db mutatja ugyanezt az eredményt. Másrészt viszont a kontrol-csoport 12 egeréből 10 elpusztul a 21. napig, és a maradék kettő is a rákos sejtek jelenlétének bizonyí­tékait mutatja. 9. PÉLDA 45 db 8—10 hetes nőstény C3HEJ egeret injekciózunk 105 petefészek teratokarcinoma sejttel. 24 óra múlva 15 egeret injekciózunk egyszer 0,2 -0,5 ml izotóniás konyhasó-oldattal, amely 1400 mikrogramm PK-t tartal­maz, és 15 egeret injekciózunk egyszer 0,2-^,5 ml izo­­töniás só-oldattal, amely 300 mikrogramm PK-t és 50 mikrogramm TDE-t tartalmaz. Végül 15 egeret injek­ciózunk egyszer 0,2-0,5 ml izotóniás só-oldattal, ez a kontrol-csoport. 30 nap után 5 db egér a PK-val injek­ciózott 15 egérből a tumor visszafejlődését mutatja, és még él. Másrészt 14 db egér a kontrol-csoport 15 ege­réből elpusztul, a megmaradt 1 egér viszont a tumor vi rszafejlődését mutatja. Szabadalmi igénypontok 1. Eljárás tumor-gátló hatású gyógyászati kompozíció előállítására, azzal jellemezve, hogy- valamely mikroorganizmusból pirídínnel kivonatot ké­szítünk,- valamely bakteriális endotoxinból extraktumot készí­tünk, — előnyösen metanol-kloroform-eleggyel —,az extrak­tumot savval kezeljük, majd a zsírsavakat egy, a zsírsa­vakat oldó, de az endotoxint nem oldó oldószerrel - előnyösen acetonnal — kivonjuk, és a maradékot kro­matográfiásan tisztítjuk, így tisztított, kimutatható mennyiségű 2-keto-3-dezoxi-oktanoátot nem tartalma­zó, 375—475 runól/mg foszfort és 1700-2000 nmól/ mg zsírsavat tartalmazó, detoxikált endotoxint ka­punk,- a piridin-oldható kivonatot'és a tisztított* detoxikált endotoxin hatásos mennyiségét 1 :1 és 100 :1 közötti arányban összekeverjük, és gyógyászatilag alkalmas hordozó-, hígító- és/vagy egyéb segédanyagokkal össze­keverve gyógjríszati kompozícióvá alakítjuk. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a tisztított piridin-oldható kivonatként M. bovis BCG-ből, M. phlei-ből, M. smegmatisból, M. kansasii-ból, 60 Nocardia rubra-ból, Nocardia asteroidesből, Propionibac­terium acnes II. típusból vagy Corynebacterium parvum­­ból nyert kivonatot alkalmazunk. 3. Az 1. vagy 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jelle­mezve, hogy tisztított piridin-oldható kivonatként olyan 65 kivonatot alkalmazunk, amely 3—20 tömeg % fehérjét 5

Next

/
Oldalképek
Tartalom