192088. lajstromszámú szabadalom • Eljárás felületaktívanyag-hiány következtében fellépő légszomj kezelésére alkalmas gyógyszerkészítmény előállítására

1 192.088 2 lin, Haideiberg, New York, 1965) által közölt mód­szerrel határoztuk meg. Összehasonlító anyagként ká­­lium-dihidrogén-foszfátot alkalmaztunk. A koleszte­­roltartalmat kolorimetrikus módszerrel határoztuk meg, miközben a koleszterol mellett a koleszterol-ész­­tert is meghatároztuk (s = ± 4%). A neutrális lipideket a 2. Arzneibuch der DDR, IA 1.1 irodalomban meg­adott triglicerid-meghatározással határoztuk meg. A proteintartalmat a HESSE és LIND NER által meg­adott eljárás (Zeitschrift für Alig. Mikrobiologie 11 (1971), 585-594; ugyanitt 15 (1975) 559-561) alapján határoztuk meg, az eljárás nagyon megfelelő a vizes emulziók protein tartalmának a meghatározá­sára (s = ± 3%). Az egyes foszfolipidek meghatározá­sát rétegkromatográfiás elválasztással P. CENTER és mtsai munkája szerint (J. of Chromatography 206 (1981), 200—204) kolorimetrikusan (N. TOLLNER és D. EBERHAGEN: „Untersuchung und Bestim­mung der Lipide im Blut"; Springer-Verlag Berlin, Heidelberg, New York, 1965) végeztük el (s = ± 3% a főkomponensekre), összehasonlító anyagként ká­­lium-dihidrogén-foszfát szolgált. A foszfolipid eluciós vesztesége a szóráson belül van. A szabad zsírsavtartal­mat rétegkromatográfiás elválasztással és gázkroma­tográfiával végzett elucióval határoztuk meg (s=±10%). ■ A találmány szerinti készítménnyel megváltozik a vizes fázis felületi feszültsége. A felületi feszültség mérése és a hiszterézis görbe felvétele ATF 01 Wil­­helmy típusú mérleggel történt (gyártó: E. Biegler gyár 301 Mauerbach, Österreich) ismert eljárással. Kezdeti 5 ul Eredmény 1. ábra 2. ábra 3. ábra 4. ábra 5. ábra ordináta: abcissza: anyagmennyiség: 60 mg foszfolipid/ml 2. példa szerinti anyag 3. példa szerinti anyag 9. példa szerinti anyag 10. példa szerinti anyag 18. példa szerinti anyag felületi feszültség relatív felület A találmány szerinti eljárással előállított készítmény nagy hatékonyságot mutatott az in vivo állatkísérle­tekben és kivétel nélkül kompatibilis volt az intretrac­­heális alkalmazásnál. A bizonyításokat a következő állatkísréletekkel vé­geztük: 1. A felületaktlv-anyag hatása a felnőtteknél fellé­pő légszomj megbetegedésekre (II. táblázat, 9. ábra) A felületaktív-anyagnak a felnőtteknél fellépő lég­szomj megbetegedésre kifejtett hatását tengerimalaco­kon vizsgáltuk. Az akut légzési elégtelenség létrehozása előtt álta­lános érzéstelenítéssel légcsőmetszést végeztünk el, az A. carotis-ba katétert vezettünk vérvétel céljából és az állatokat állandó nyomású, tiszta oxigénnel lélegeztet­tük. Az akut légszomj megbetegedést úgy értük el, hogy az állatoknál a felületaktív-anyagot nyolcszor bronchiálisan kimostuk meleg fiziológiás konyhasó oldattal. A mosási térfogat megfelelt az állatok vitál­­kapacitásának. A mosási folyamat végén az állatoknál tapasztalt arteriális oxigénnyomás 60 mmHg azaz 60. 133,322 Pa alatt volt, annak ellenére, hogy a belégzést + 30’cm H20 maximális nyomással, 8 cm H20 PEP- vel (Positive-Enexpiratory-Pressure) és tiszta oxigén­5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 nel történt. Az utolsó tüdőmosás után 10-40 perccel az állatok fele a légcsőbe csepegtetve 1-1 ml felületak­tlv-anyagot kapott. A vérgáz elemzéseket az egyes fe­lületaktlv-anyag beadagolások után 5, 15 és 30 perc­cel végeztük el. Abszolqt hasonló körülmények között az optimális felületaktlv-anyag az arteriális oxigén­nyomás közvetlen növekedéséhez, átlagosan 200 mmHg azaz 200.133,322 Pa növekedéshez vezet, 2. A felületaktlv-anyag hatása a kifejletlen tüdőre (II. táblázat, 6, 7 és 8. ábra) A felületaktív-anyagnak a kifejletlen tüdőre kifej­tett hatásának vizsgálatához a terhesség 27. napján hiszterotómiával (ossz. terhességi idő: 31 ± 1 nap) ki­fejletlen nyúl-újszülötteket hoztak a világra. Az álla­tokon közvetlenül a megszületés után légcsőmetszést hajtottunk végre, és egy részük légcsövecskéken ke­resztül a légcsőbe csepegtetve átlagosan 60 ul felület­aktlv-anyagot kapott. Az egyhasi állatok kezeletlen testvérei szolgáltak kontrollként. Ezt követően az ál­latokat egy állandó nyomású plethysmográfba (38°C) helyeztük és tiszta oxigénnel lélegeztettük, a légzési nyomást és a légzési térfogatot folyamatosan regiszt­ráltuk. A primer adatokból elvégeztük a mellkas-tüdő teljesítmények kiszámítását. Néhány kísérletnél a szü­letés után minden állatot 10—15 percig lélegeztettünk és csak ezután kapták meg az állatok egy része légcső­­vön keresztül becseppentve a felületaktív-anyagot. 3. A fiatal patkányokon végzett kompatibilitási vizsgálat a légcsőbe cseppentés után. (II. táblázat) A fiatal patkányokon végzett kompatibilitási vizs­gálatokat a terápiái dózis (200 mg foszfolipid/kg test­súly) és a háromszoros terápiái dózis tartományban végeztük el. Patkányonként (kb. 50 g testsúly) 10—30 mg foszfolipidet alkalmaztunk. A kompatibilitást vizs­gálathoz mind nőstény, mind hím állatokat használ­tunk, de egy kísérletnél csak azonos nemű patkányo­kat (n= 10) választottunk ki. Módszer: 10 db kb. 50 g-os patkány (hím és nőstény) éterrel narkotizáltunk, majd ezt követően elvégeztük a nyak­metszést és a légcső enyhe kipreparálását. A prepará­lás után fokoztuk az éteres narkózist, de csak annyira, hogy az állatok továbbra egyenletesen lélegezzenek. Egy (veit 20-as csövecskével egyenként 10—30 mg foszfolipid/0,3 ml fiziológiás konyhasó oldatot injek­táltunk. Az injektálás után a vágást összevarrtuk. A megfigyelési idő két hét volt, amikoris 72 óra eltelté­vel megállapítottuk a végső leletet. Vizsgálati sorozat­ként (50—60 állat) öt kontroll állatot alkalmaztunk, amelyeknek egyenként 0,3 ml fiziológiás konyhasó olatot injektáltunk. A készítmény emulgeálásának és a stabilitásának további javítását érhetjük el, ha foszfolipidfrakciót adunk hozzá. A foszfolipidfrakciót a következőkép­pen állítjuk elő. A megszárltott, találmány szerinti és már korábban megadott összetételű anyagot feloldjuk lipid-oldószerben, előnyösen kloroformban, miköz­ben 1 ml Iipid-oldószerre0,1 —I.Oganyagot számítunk és ezután a foszfolipidfrakciót acetonos kicsapással előállítjuk. A kicsapást —20—20°C, előnyösen 5°C hőmérsékleten végezzük. A kloroformos hatóanyag­oldatnak az acetonhoz viszonyított térfogata 1:1— 1 £ 4

Next

/
Oldalképek
Tartalom