191603. lajstromszámú szabadalom • Diagnosztikai reagens és eljárás hidrofil latexrészecskéket tartalmazó szuszpenziók előállítására

191 603 12 arányban hígíljuk. 0,5 0,5 ml hígítótt szuszpcnzió-1)07, J00-I00 juin T4-szét um-szabvány-olda tot és 100-100 jum T4-/3-Gal konjugátum-oldatot adunk (a T4-szabvány-oldatok T4-tartalma különböző, de mindegyik ismert). Az elegyet szobahőmérsékleten 30 percen át inkubáljuk állandó rázás közben, míg egy azonos T4-tartalmú kontroll-elegyet inkubálás közben állni hagyunk. Utána a szuszpenzíót centri­fugáljuk és a szabad fázist tartalmazó szűrlclet el­választjuk. A kötött fázis, azaz a solid-face-anti-anti­­testekhez kötött T4 -j3-Gal-konjugátum a csapadékban van. Az enzimaktivitás meghatározásához a csapadé­kot feleslegben vett szubsztrátumoldatban szuszpen­­dáljuk. A szubsztrálumoldat összetétele az alábbi: 450 mg/( p-nitro-feniI-j3-ga!aktozid (gyártja: Sigma cég) 100 mmól nátrium-klorid 10 mmól magnézium-klorid 10 mmól trisz-puffer/HCl 0,4 tf% merkapto-etanol pH = 7,3. Az extjnkciót önmagában ismert módon, 405 nm hul­lámhosszon mérjük. A mechanikai keverés (rázás) nélkül lebegő állapotban tartott minta jele mint­egy 11 %-kal gyengébb volt. Miután a fenti módon a T4 kalibrációs görbéjét meghatározzuk, ugyanezzel a módszerrel további meghatározásokat végeztünk, amelyekhez ismert T4- tartalmú etalonszérum helyett 100-100 jum ismeret­len T4-tartalmú mintákat használtunk. A kötött fázis extinkcióját szintén a csapadék szubsztrátum­­oldattal készített szuszpenziójában mértük. Megállapítottuk, hogy a hidrofil latexrészecskék kiválóan alkalmasak antitestek és antigének hordozó­jaként, az immunaktivitást nem csökkentik. Ezért a latexrészecskék solid-face enzim-immunotesztek során hordozóként igen előnyösen alkalmazhatók. Megállapítottuk továbbá, hogy a hidrofil latexrészecs­­kck a pufferközegben hosszú időn keresztül lebegő állapotban maradnak, azaz sűrűségük megközelítően egy. Emellett a hidrofil latexrészecskék jól centrifu­gálhatok és újból szuszpenzióba vihetők anélkül, hogy az immunreaktivitás csökkenne. 11 15. példa Enzim-immuno-assay (EIA) emberi tireotropin (TSHj meghatározásához Az. emberi szérum TSH-szintjének meghatározása a pajzsmirigy megbetegedésének diagnosztikálásában nagy jelentőséggel bír. Elsődleges hipotireozis a bazális TSH-koncentráció erős emelkedésében (10— 100 juU TSH/ml) mutatkozik. Ugyanakkor a hiperti­­reozist biztonsággal ki lehet zárni, ha a szérumban a TSH bazális értéke (0,5—3 juU/ml) TRH (Thyroidea­­releasing-hormon) beadása után nem emelkedik. Amennyiben a TSH-érték legalább 2,5 juU/ml érték­kel, de 25 juU/ml-nél kisebb mértékkel emelkedik, a pajzsmirigy anyagcseréje nagy valószínűséggel zavar­talan. Amennyiben a többé-kevésbé emelt bazális értéktől 25 juU/ml-nél nagyobb mértékben emelkedik a TSH-s/.int, rejlett preklinikus hipotireoz.isre lehet következtetni. A 'ISII meghatározására már i mertek enzim-immuno-assay-k (Clinica Chemica Acta 67, 263-268 (1976), Enzyme labelled immuno­assay of hormones and drugs, szerkesztő: S. B. Pal, Walter de Gruyter, Berlin—New York, 1978. 327— 2- 370., o. Analytical Biochemistry 96,419 -425 /1979/). Az imsert meghatározási módszerek azonban igen hosszú inkubálási időt igényelnek (5 napig is terjedő időt), nem eléggé érzékenyek (5 juU/nil). vagy végre­hajtásukhoz drága műszerek (fluorométer vagy luminométer), valamint az elegyek keveréséhez külön heverőberendezések szükségesek. A találmány szerint előállított hidrofil latex­részecskék alkalmazása lehetővé teszi a TSH foto­­metrikus meghatározását csupán 2 és 1/2 nap inkubá­­;ási idő után. A meghatározás a kettős antitest elvá­­’asztásának technikája szerint történik. Ennek során a második antitestet a hidrofil iatexrészecskékhez kötjük. A kötött enzim aktivitását a B/F-elválasztás után mérjük. A latexrészecskék — a vizétől alig külön­böző fajsúlyúk következtében — az enzimreakció alatt lebegő állapotban maradnak, a szokásos keverés tehát felesleges. Amennyiben igen hígított latex­­szuszpenziót használunk (és ez a részecskék magas kötési kapacitása miatt minden további nélkül lehet­séges), az enzimreakció utáni centrifugálás is elhagy­ható, mert a fotometrikus mérés a híg szuszpenzión keresztül is elvégezhető. Az immunológiai tesztekhez szokásosan használt ismert latexek ellentétben a hidrofil, antitestekkel megrakott polimetil-metakrilát-részecskék centrifugá­lás után könnyen újból szuszpenzióba vihetők. Ugyanazon okból az enzimmel jelölt antigén nemfaj­lagos adszorpciója (kötött aktivitás primer antitest nélkül) igen csekély. A kísérlet végrehajtása 0,2 ml TSH-etalont (nemzetközi referencia készít­mény MRC 68/38 TSH-mentes szérumban) ismert anti-TSH-antiszérum (pl. a tengerimalacé) vízzel vagy alkalmas puffernd készített 1:150 000 arányú hígí­tásának 0,1 ml-jével együtt inkubálunk. 12 óra eltel­tével az elegyhez pipettával adunk glükózoxidáz­­hoz kovalens kötéssel kötött 1,5X10 9 g TSH mennyiségnek megfelelő enzim-konjugátumot 0,1 ml oldatban. További 12 óra után 0,1 ml latexszuszpen­­ziót adunk az elegyhez. A hozzáadott latexszuszpenzió 0,1-1 mg/ml met­­akrilát-latexet tartalmaz. A Iatexrészecskékhez előző­leg kovalens kötéssel (a 11. példában leírt módon) 1000 mg száraz latexre számítva 5 — 150 mg olyan proteint kötöttünk, amely kecske-antiszérumból tengerimalac-IgG ellen nyer immuno-globulin-frak­­cióból származott. Egy óra elteltével centrifugáljuk az egészet, és a csapadékot 1 ml alkalmas pufferoldatta! mossuk, amikoris a latexrészecskék újból szuszpenzióba mennek. A csapadékot még többször mossuk, a felül­úszó részt kiöntjük. Mindegyik elegyhez a glükózoxidáz szubsztrátumá-5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 7

Next

/
Oldalképek
Tartalom