182500. lajstromszámú szabadalom • Eljárás homogén interferon előállítására

5 182500 6 állítására vonatkozó eljárást az jellemzi, hogy 1. vizes interferon-oldatot oktilcsoportokkal mó­dosított szilíciumdioxid-mátrix-alapú, acetát­­pufferrel (pH=7,5) pufferolt oszlopon gyors folyadék-kromatografálásnak vetünk alá, és acetát-puffer és kis szénatomszámú alkohol — előnyösen n-propanol — 0%-tól lineárisan emel­kedő alkanol-koncentráció grádiensű elegyével eluáljuk ; 2. az előző lépésnél kapott interferon-tartalmú frakciókat gliceril-csoportokkal módosított szi­­líciumdioxid-mátrix-alapú, acetát-pufferrel (pH=7,5) pufferolt oszlopon gyors folyadék­­kromatografálásnak vetjük alá, és acetát-puf­fer és kis szénatomszámú alkanol — előnyösen n-propanol — lineárisan csökkenő alkanol­­koncentráció grádiensű elegyével eluáljuk ; majd 3. az interferon-tartalmú frakciókat oktil-csopor­­tokkal módosított szilíciumdioxid-mátrix-ala­pú, piridin-hangyasav pufferrel (pH=4) puf­ferolt oszlopon gyors folyadék-kromatogra­fálásnak vetjük alá, és piridin-hangyasav puf­fer és kis szénatomszámú alkanol — előnyösen n-propanol — lineárisan emelkedő alkanol-kon­centráció grádiensű elegyével eluáljuk. Oktil- vagy gliceril-csoportokkal módosított, porózus Si02-mátrix bázisú (a részecskék mérete : 10 g, az átlagos pórusméret : 100 Â) HPLC-oszlopok a kereskedelemben kaphatók, például az EM Labo­ratories of Elmsford, N. Y., USA, által előállított Lichrosorb RP—8 és Lichrosorb-diol elnevezésű termékek. Oktil-csoportokkal módosított porózus Si02-oszlopokat az E. S. Industries, Marlton, N. Y., USA, Chromegabond C—8 elnevezéssel hoz for­galomba. A fent megadott oszlopokhoz alkalmas HPLC- rendszert a 4 116 046 sz. Amerikai Egyesült Alla­­mok-beli szabadalmi leírás ismertet. A találmány szerinti eljárás foganatosításakor a szennyezett nagymolekulájú peptid oldatát elő­nyösen vizes puffer-oldat jelenlétében a szóban forgó fehérje szempontjából alkalmas pH-érték mellett az oszlopon átengedjük. Ezt általában nyo­mással, előnyösen 3,4 és 340 at közötti nyomással végezzük. Az oszlop anyagán adszorbeálódott fe­hérjét utána lépésenként, vízzel elegyedő oldószer­ből előállított gradienssel eluáljuk. Alkalmas oldó­szerek például az alkanolok, így n-propanol, 2-pro­­panol, etanol, metanol, terc-butanol, továbbá cik­likus éterek, mint amilyen a dioxán. Az eluátumot önmagában ismert módon frakcionálj uk, amikoris az egyes frakciók aktív fehérje tartalmát nagyon érzékeny indikátorok segítségével határozzuk meg. Egy erre a célra alkalmas rendszert például Bohlen és társai, (Anal. Biochem. 67, 438 (1975) ír le. Ta­nácsos a cél-fehérje jelenlétét biológiai kimutatásra alkalmas módszerrel ellenőrizni. A tisztítandó fehérje jellegétől függ, hogy a két oszlop-típus (a normál elosztásos kromatográfiához és a fáziscserés kromatográfiához alkalmas oszlopok) közül melyiket válasszuk, és milyen sorrendben alkalmazzuk az oszlopokat. Azt találtuk, hogy például humán leukocitákból származó interferon esetében a legjobb eredményeket akkor érjük el, ha a szennyezett interferon-oldatot először oktil­csoportokkal módosított Si02-mátríx bázisú osz­lopon (fáziscserés kromatográfia) átengedjük mint­egy 7,5 pH-jú puffer-oldat, előnyösen 1 mólos nátriumacetát-ecetsav puffer alkalmazásával, majd növekvő n-propanol-gradienssel eluálunk, utána a gyűjtött aktív frakciókat 0,1 mólos nátriumacetát­­puffer alkalmazásával gliceril-csoportokkal módo­sított Si02-mátrix bázisú oszlopon keresztül en­gedjük, és az aktív anyagot csökkenő n-propanol­­gradienssel eluáljuk, végül az elkülönített inter­feron-komponenseket mintegy 4,0 pH-jú puffer­­oldat (előnyösen 1 mól piridin és 2 mól hangyasav elegye) alkalmazásával oktil-csoportokkal módosí­tott Si02-mátrix bázisú oszlopokra visszük és nö­vekvő n-propanol-gradienssel eluáljuk. Ilyen mó­don a három elkülönített humán leukocita inter­feron (a, ß y) külön-külön bontható tovább, ami­koris a kromatogramban élesen egymástól elkülö­nülő csúcsok jelennek meg ; ezek a homogén fehér­jék. Az egész tisztítási eljárással, az inkubáció so­rán nyert folyadéktól a második oktil-módosított oszlopon végzett kromatográfiai lépésig, a tisztaság a 60 000—80 000-szeresére növekszik. A humán leukocitákból származó interferon tisztítására alkalmas foganatosítási mód szerint a 2. lépésben kapott és a csúcskoncentrációkat tartalmazó frakciókat egyesítjük, az n-propanol el­távolítása céljából n-hexánnal extraháljuk és a 3. lépés foganatosítása előtt az n-hexán nyomaitól megtisztítjuk. A humán leukocitákból a találmány szerinti el­járással előállított interferon-fajtákra jellemző a felsorolt HPCL-oszlopokon megjelenő éles csúcs; továbbá a poliakrilamid-gélen nátriumdodecil­­szulfáttal (NaDodS04) 2-merkaptoetanol jelenlé­tében végzett gél-elektroforézis során egyetlenegy' keskeny sávot mutatnak. A gélt extrahálva egyet­lenegy' éles, vírus elleni aktivitású csúcsot kaptunk, amely azonos volt a fehérje sávval. A tiszta inter­feronfajták specifikus aktivitása MDBK-sejtek (szarvasmarha epitéliás vesesejtjei) esetén 2,6—4,0xl08 egység/mg, az Ag 1732 sz. humán sejtsor esetében 1,5—4xl08 egység/mg. A moleku­lasúly mintegy 16 000 és 21 000 között van (lásd: 4. táblázat). Az aminosav-elemzés eredményeit az 5. táblázatban adjuk meg. Az interferonoknak vírus elleni, tumor elleni, nö­vekedésgátló és immun-szuppresszív tulajdonsá­gai vannak. Ezek az aktivitások klinikailag kimu­tathatók voltak még viszonylag szennyezett, 1 “Zó­nái kevesebb interferont tartalmazó készítmények napi 1—10' 106 egység dózisban történő beadása esetén is. A találmány szerint tisztított, homogén interferon-készítmények az ismert interferon-ké­szítményekhez hasonlóan alkalmazhatók, a dózis az elért tisztasági foknak megfelelően módosul. Az interferon-fajták önmagukban vagy egymással keverve adagolhatok, továbbá oly'an készítmények formájában, amelyet a tisztítási eljárás megszakí­tásával nyerünk, és amely több interferon-fajtát, de interferon-inaktív fehérjét már nem tartalmaz. A találmány szerinti tisztítási eljárás — bár itt csak a humán leukocitákból származó interferonok példájával ismertetjük — alkalmas egyéb inter­feronok, például humán fibroblasztokból származó 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 4

Next

/
Oldalképek
Tartalom