182231. lajstromszámú szabadalom • Eljárás spiro-imidazolidin- indolin-származékok előállítására

7 182231 8 valamely 1—4 szénatomos alkanolt (például metanolt vagy etanolt) vagy N,N-dimetil-formamidot alkalmaz­hatunk, adott esetben vízzel képezett elegyeik alakjában. Alkálifém-hidridek felhasználása esetén nem-vizes oldó­szereket — például dimetíl-szulfoxidot vagy N,N-di­­metil-formamidot — alkalmazhatunk. A reakciót előnyösen 20—40 C°-os hőmérsékleten vé­gezhetjük el és az imidazolidin-gyűrű nitrogénatomjain lejátszódó alkilezés minimális értékre való csökkentése céljából előnyösen viszonylag rövid idő alatt hajtjuk végre a reakciót. A (VI) általános képletű kiindulási anyagokat a szer­ves kémiából analóg vegyületek szintézisére ismert standard eljárásokkal állíthatjuk elő [Otomasu és tsai : Chem. Pharm. Bull. 23, 1431—1435 (1975)]. így például e vegyületeket az a) eljárással analóg mó­don állíthatjuk elő a megfelelő 1-helyettesítetlen-indo­­lin-2,3-dionbóI kiindulva. Utóbbi vegyületek a szerves kémiából jólismert eljárásokkal könnyen előállíthatók. A c) eljárásunk szerint valamely (VII) általános kép­letű vegyületet (mely képletben R3 jelentése valamely acil- vagy trí-[l—4 szénatomos]-alkil-szilil-csoport) am­­mónium-karbonáttal vagy karbamáttal reagáltatunk. Amennyiben R3 valamely acilcsoportot képvisel, je­lentése előnyösen 1—6 szénatomos alkanoilcsoport (pél­dául acetil- vagy propionilcsoport), fenilszulfonil-, p-to­­luol-szulfonil- vagy benzoil-csoport. Amennyiben R3 tri-(l—4 szénatomos)-alkil-szilil-csoportot képvisel, je­lentése előnyösen trimetil-szilil-csoport. Megjegyezzük, hogy c) eljárásunk a korábbiakban tárgyalt a) eljárás módosítása és ezért az a) eljárással kapcsolatban megadott reakció-körülmények között végezhető el. Hasonlóképpen az ammónium-karbonátot vagy -karbamátot kívánt esetben in situ képezhetjük. A (VII) általános képletű kiindulási anyagokat szo­kásos módszerekkel állíthatjuk elő. Eljárhatunk például oly módon, hogy valamely, az a) eljárás szerint egy in­­dolin-2,3-dion és hidrogén-cianid reakciójával előállított (IV) általános képletű hidroxi-nitrilt a megfelelő acil­­-halogeniddel vagy tri-(l—4 szénatomos)-alkil-szilil-ha­­logeniddel (például acetil-, propionil-, fenil-szulfonil-, p-toluol-szulfonil-, benzoil- vagy trimetil-szilil-klorid­­dal) reagáltatjuk szokásos módon. Az R3 helyén tri-(l—4 szénatomos)-alkil-szilil-csopor­­tot tartalmazó (VII) általános képletű vegyületeket oly módon is előállíthatjuk, hogy a megfelelő indolin-2,3- -diont valamely tri-(l—4 szénatomos)-alkil-szilil-cianid­­dal (például trimetil-szilil-cianiddal) reagáltatjuk 15— 40 C°-os hőmérsékleten nem-vizes oldószerben (pél­dául 1,2-dimetoxi-etánban). A d) eljárásunk szerint nitrocsoporttal helyettesített A-benzol-gyűrűt és/vagy R1 helyén nitrocsoporttal he­lyettesített benzilcsoportot tartalmazó (I) általános kép­letű vegyületeket a megfelelő, adott esetben egy helyet­tesitőt hordozó A-gyűrűt és/vagy egy adott esetben két halogénatomot tartalmazó R'-csoportot tartalmazó (I) általános képletű vegyület nitrálásával állítjuk elő. A nitrálást szokásos módszerekkel végezhetjük el, pél­dául salétromsavval, kénsav jelenlétében, 0—30 C°-os hőmérsékleten vagy füstölgő salétromsavval —20 C° és 10 C° közötti hőmérsékleten. Az ej eljárásunk szerint az A benzol-gyűrűn klór­vagy brómatommal helyettesített (I) általános képletű vegyületeket a megfelelő, helyettesítetlen A benzol-gyű­rűt tartalmazó (I) általános képletű vegyületék klóro­zásával vagy brómozásával állítjuk elő. A klórozást vagy brómozást szokásos módszerekkel végezhetjük el, így például elemi klór vagy bróm segít­ségével, adott esetben Friedel-Crafts katalizátor (például ferri-klorid, ferri-bromid vagy vaspor) jelenlétében, 10— 100 C°-os hőmérsékleten, előnyösen megfelelő hígító­vagy oldószerben (például kloroformos nitrobenzolos vagy ecetsavas közegben). A klórozást vagy brómozást továbbá szulforil-klorid vagy -bromid felhasználásával, adott esetben jód-katali­­zátor jelenlétében, előnyösen 10—100 C°-os hőmérsék­leten, megfelelő hígító- vagy oldószerben (például ecet­sav vagy kloroform) is elvégezhetjük. Az f) eljárásunk szerint az A benzol-gyűrűn és/vagy at R1 szubsztituensen hidroxilcsoportot tartalmazó (I) általános képletű vegyületeket a megfelelő, az A benzol­gyűrűn és/vagy az R1 szubsztituensen 1—4 szénatomos a’koxicsoportot tartalmazó (I) általános képletű vegyü­lt tek dezalkilezésével állíthatjuk elő. A reakciót önmagukban ismert módszerekkel végez­hetjük el, például valamely szerves tercier bázis (példá­ul piridin, kinolin vagy 1—4 szénatomos alkilcsoporttal helyettesített származékaik) és valamely ásványi sav (például sósav vagy hidrogénbromid) elegyével, előnyö­sen 80—150 C°-on. A szerves tercier bázist előnyösen fölöslegben alkalmazhatjuk, mikoris az oldó- és hígító­­szer szerepét egyaránt betölti. Az (I) általános képletű vegyületek gyógyászatilag al­kalmas sóit önmagában ismert módon egy (I) általános képletű vegyület és gyógyászatilag alkalmas kationt tar­talmazó bázis reakciójával állíthatjuk elő. Az (I) általános képletű vegyületek optikailag aktív formáit oly módon állíthatjuk elő, hogy egy racém (I) általános képletű vegyületet megfelelő optikailag aktív szerves bázissal (például optikailag aktív brucin, konin vagy 2-pipekolin) reagáltatunk, majd a diasztereomer sőpár tagjait szokásos módon elválasztjuk (például meg­felelő oldószerből — mint például 1—4 szénatomos al­­kanolból — történő frakcionált kristályosítással), majd a7. optikailag aktív antipódot a sóból megfelelő savval önmagában ismert módon történő kezeléssel (például vizes ásványi savval, mint például híg sósavval) fel­szabadítjuk. Az aldóz-reduktáz enzimre kifejtett gátló hatást az alábbi standard laboratóriumi teszttel határozzuk meg: Patkányokat streptozotocin adagolásával diabeteszes­­sé teszünk (ezt komoly glükozuria fellépése jelzi). Az ál­latokat 5 napon át a teszt-vegyülettel naponta kezeljük. Ezután az állatokat leöljük és szemlencséiket és ülő­idegeiket eltávolítjuk. Standard feldolgozás után a ma­radék szorbit-szintet minden szövetben poli-trimetil­­szilil-származékká történő átalakítás után gáz-folyadék­­kromatográfiás módszerrel meghatározzuk. Az in vivo mutatott aldóz-reduktáz-gátlást oly módon számítjuk ki, hogy a teszt-vegyülettel kezelt diabetikus patkány­csoport szöveteiben mért maradék-szorbit-szintet ösz­­szehasonlítjuk a kezeletlen diabetikus patkány-csoport­nál és kezeletlen normál patkány-csoportnál kapott érté­kekkel. 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 4

Next

/
Oldalképek
Tartalom