177804. lajstromszámú szabadalom • Eljárás hormonok és gyógyszerek teljes mennyiségének meghatározására

3 177804 4 enzimatikusan hidrolizáljuk, majd a hormont vagy gyógyszert antitesttel reagáltatjuk és ezután a hormon vagy gyógyszer mennyiségét radioimmunológiai mód­szerrel határozzuk meg, azzal jellemezve, hogy immo­­bilizált antitestet alkalmazunk. Az antitestet előnyösen polimer-gélbe zárjuk. Poli­mer-gélként előnyösen akrilamid-polimer vagy akril­­amid-kopolimer jön számításba. Az immobilizált antitestek találmány szerinti alkal­mazásával az antitestek védetté válnak az enzimmel szemben. Az antitest olyan polimer-mátrixba van zárva, amelybe az enzim nagy mérete miatt nem tud behatolni. Ezzel az egyszerű és elegáns megoldással a találmány szerinti eljárás során az enzim denaturálásának lépése elhagyható. Az eljárás így lényegesen kevesebb munkát és időt igényel. Az eljárás univerzálisan alkalmazható különböző rendszerekre, mivel a specifikus enzim-dena­­turáció elmarad. Különösen jelentős a találmány sze­rinti eljárás az automatizálás lehetőségét tekintve. A találmány szerinti eljárás a legkülönbözőbb olyan hormonok és gyógyszerek meghatározására alkalmas, amelyek a szérumban vagy plazmában részben-speci­­fikus vagy aspecifikus kötőfehérjékhez vannak kötve. Számításba jönnek a pajzsmirigy-hormonok, különösen a tiroxin és trijódtironin, a szteroid-hormonok, mint a kortizol, tesztoszteron, progeszteron, ösztron, ösztradiol, és ösztriol, valamint a szívglikozidok, mint a digitoxin és digoxin. Továbbá vitaminok is meghatározhatók, kü­lönösen a B12 vitamin és a fólsav, valamint olyan gyógy­szerek, amelyek erősen kötődnek fehérjékhez, mint pél­dául a véralvadás gátlók, dikumarol, fájdalomcsillapí­tók, szalicilátok és triciklusos antidepresszívumok. A meghatározás kivitelezésénél a hormont vagy gyógyszert tartalmazó szérumot vagy plazmát olyan enzim-oldattal hozzuk össze, amely a kötőfehérjét hidro­­litikusan hasítja. Az enzim kiválasztása a specifikus kö­tőfehérje szerint történik. Rendszerenként a következő enzimek jönnek előnyösen számításba: Aminopeptidáz, bromelin, karboxipeptidáz, kimotrip­­szin, elasztáz, leucinaminopeptidáz, lipáz, pankreatin, papain, pepszin, pronáz, proteáz, proteináz, termolizin és tripszin. Olyan hormonok meghatározásánál, mint a tiroxin és kortizol különösen alkalmasak az olyan pro­­teolitíkus enzimek, mint a proteináz, pronáz és pepszin. A próba reakcióját az enzim-oldattal termosztált kö­rülmények között, 35 °C-on vagy szobahőmérsékleten végezzük. A fehérjék enzimatikus hidrolíziséhez szük­séges idő az alkalmazott enzimtől függ, 15 perctől 4 óra hosszat tarthat, sok esetben 15—30 perc. A fehérjék hidrolízise után a próbát jelzett indikátor­­hapténnal összekeverjük és az immobilizált antitestre felvisszük. A felvitelt több csatornás, dugattyús pumpa segítsé­gével végezzük. A pumpa visszafelé-menetben a reak­­cióelegyet az immobilizált antitestet tartalmazó oszlopra szívja. A jelzett, illetve a nem jelzett, meghatározandó anyag és az immobilizált antitest közötti reakcióhoz bizonyos időre van szükség. Ennek eltelte után az antitesthez kötött és szabad hap­­tén elválasztását vízzel vagy puffer oldattal történő elucióval végezzük. A meghatározandó anyag koncentrációjának mércéje az eluátumban mérhető, illetve meghatározható az osz­lopon megkötött radioaktivitás. A radioimmunológiai elv például D. S. Skelley et al. [Clinical Chemistry, 19,146 (1973)] munkájából ismert. Esetenként alternatív meghatározási módszerek is számításba jönnek, mint a fluorimmunológiai megha­tározás vagy az enzimatikus jelölés segítségével végzett meghatározás. Az antigének szintézisét, azaz az antiszérumok előál­lítását előnyösen házinyulak immunizálásával végezzük. Az antitestek izolálása és immobilizálása ismert [lásd például D. S. Skelley et al.; Clinical Chemistry, 19, 146 (1973)]. Az antitestek immobilizálását előnyösen úgy vé­gezzük, hogy az antitestet tartalmazó oldatot bekeverjük a monomer oldatba, gyökös polimerizációt végzünk, majd a polimerizátumot szétaprítjuk, mossuk és szárít­juk. Monomerként előnyösen akrilamidot alkalmazunk. A mátrix előnyös variációihoz jutunk, ha akrilamid és különböző funkciós csoportokkal rendelkező akril­­származékok, előnyösen akrilsav, metakrilsav és metak­­rilamid, kopolimerizációjával állítjuk elő a mátrixot. Kopolimerek alkalmazásával különösen a mátrix hidro­­fobitása és töltése befolyásolható és ezáltal az antitest­nek a meghatározandó hormonokkal és gyógyszerekkel való reakciója is befolyásolható. A polimer-mátrix pórus-nagyságát a monomer kon­centrációjának variálásával befolyásolhatjuk. Körül­belül 20%-os monomer koncentráció esetén a pórus nagyság 7—10 Angstrom. Ioncserélő polimer-mátrix alkalmazása is előnyös. Az ioncserélővel elérhető puffer-hatás a meghatározandó próba pH értékének megváltoztatására használható. Előnyös rendszerhez jutunk, ha az akrilamid mellett 20—60% akrilsavat és/vagy metakrilsavat tartalmazó kopolimert állítunk elő körülbelül 20%-os monomer ol­datból kiindulva és a savcsoportoknak legalább egy ré­szét alkáli- vagy alkáli földfém-sóvá alakítva. A találmányt részletesebben a következő példák se­gítségével világítjuk meg. 1. példa Tiroxin meghatározása pronázzal történő enzimatikus hidrolízissel Az antigént tiroxin-etilészterből kiindulva szintetizál­tuk és karbodiimid segítségével albuminhoz kapcsoltuk. Az antitestet házinyulak immunizálásával állítottuk elő. Az antitestet ezután polimer-gélbe zártuk. 2,9 mól/li­­ter akrilamid-monomer koncentrációt alkalmaztunk. Egy tételhez 5 gramm akrilamidot és 1,25 gramm N,N'­­-metilén-bisz-akrílamidot főzőpohárban, 24 ml 7,2 pH- értékű foszfát-pufferban oldottunk fel. 1 ml foszfát-puf­­ferban levő antiszérum hozzákeverése után a reakciót 0,15 mg riboflavinnal és 0,10 ml N,N,N',N'-tetrametil­­-etilén-diaminnal indítottuk be, és a reakcióelegyet ultra­ibolya fénnyel besugároztuk. A 45 perces besugárzási idő alatt a hőmérsékletet 50 °C alatt tartottuk. A keletkezett gélmasszát végül aprítottuk, desztillált vízzel mostuk és szárítottuk. A null-szérum előállítása oly módon tör­ténik, hogy 1 ml szérumot 2 mg/ml koncentrációjú pronáz-oldattal 30 percig reagáltattunk, majd az elegy­­hez 2 gramm ioncserélő gélt (Amberlite 400) adtunk. 50 ixl, 100 ml-enként 18 jxg tiroxint tartalmazó null-5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 2

Next

/
Oldalképek
Tartalom