174764. lajstromszámú szabadalom • Eljárás enzimatikus és biokémiai reakciók vizsgálatára

5 174764 6 rendszerhez hozzáadott enzimmolekulák legnagyobb része az oldatban levő szubsztráttal reagál. A mérések egyúttal azt is jelzik, hogy létezik ilyen optimum. Az előbb ismertetett példában a szubsztrát a 3 884 896 számú USA szabadalmi leírásban ismerte­tett típusú polipeptid, amely érzékeny trombinra és más pepiid-hidroláz típusú proteolitikus enzimekre. Ez a szubsztrát hidrolizálódilc az enzim jelenlétében, miközben kromofór termék képződik, amelyet spekt­rofotometriásán lehet mérni. Ez a szubsztrát csak akkor optimális a leírt elektromos kimutatásra, ha igen jól kötődik az elektódokhoz és jelentős része leválik az elektródról az enzimatikus hidrolízis során, aminek következtében a fémelektródok kapacitása je­lentősen megváltozik. Ezért a szubsztrátnak úgy kell kapcsolódnia, hogy az enzim által felbontandó kötése hozzáférhető legyen az enzim számára. A kísérletek azt mutatják, hogy a kimutatás optimumának elérésé­hez nem szükséges, hogy a szubsztrát az egész felüle­tet telítse. Az előbbi példában a szubsztrátumot a mérőberen­dezésben levő pufferoldathoz adjuk, azután a szubszt­rát adszorbeálódik a fémelektródokon. Ennek az eljá­rásnak egy másik változata szerint az elektródokat már a mérés előtt bevonjuk egy szubsztrátum-réteg­­gel, vagyis előzetesen preparált elektródokat haszná­lunk. A mérés során azt a kapacitásváltozást vizsgál­juk, amely akkor következik be, amikor ezeket az elektródokat bemerítjük az enzim oldatába. A szubsztrátumot tehát nemcsak adszopcióval, hanem például kémiai kötéssel is rögzíthetjük az elektród felületén. Az utóbbinak azonban az a feltétele, hogy a szubsztrát molekulák felbontandó kötése hozzáférhe­tő legyen az enzim számára, és az, hogy a szubsztrát molekula egy része vagy teljes egésze szabaddá váljék, amikor az enzim megtámadja a molekulát. A 6. ábra egy olyan példát mutat, amikor a mérő­­berendezést antigén-antitest kötés kialakulásával járó immunológiai reakció vizsgálatára használjuk. Hason­lóképpen az előbbi példához a 2 és 3 elektródok közötti kapacitást az 1 impedanciahíddal mérjük, amelynek szerkezeti felépítése azonos az 1. ábrán bemutatott impedanciahídéval. Az elektródok felüle­tei vagy kezdettől fogva preparálva vannak antigénnel, vagy pedig úgy járunk el, hogy az elektródokat az antigén oldatába merítjük, amikor is az antigén ad­szorbeálódik az elektródok felületére és akkor mérjük az elektródok kapacitását. Ezután az elektródokat antitesteket tartalmazó oldatba merítjük. Az antites­tek az adszorbeált antigénekhez kötődnek, így az elektródok felületén levő réteg megnövekszik, követ­kezésképpen a C, kapacitás csökken. A 6a ábra szem­lélteti a 4 pufferoldatba merített elektródokat. Ami­kor antigén molekulákat juttatunk a pufferba, (az ábrán S-sel jelölve) akkor az antigén molekulák addig adszorbeálódnak az elektródok felületén, amíg egyen­súly áll be az oldatban levő és az elektródok felületére adszorbeálódott antigén között, amint azt a 6b ábra mutatja. Végül E antitesteket adunk a rendszerhez, amint azt a 6c ábrán szemléltetjük. Az antitestek egy része az oldatban levő antigénekhez kötődik, más részük az elektródok felületén levő antigénekhez. Vé­gül itt is beáll az egyensúly, amint azt a 6c görbe mutatja. A 6d ábrán az elektródfelületek közötti so­ros Cj kapacitás van feltüntetve az idd függvényében, nevezetesen az antigének (S) és antitestek (E) hozzá­adása után. A görbének az antitestek hozzáadása utá­ni kezdeti meredekségét az antitestek koncentrációja szabja meg, így az ennek kvantitatív fokmérője. Az antitestek koncentrációját meghatározhatjuk az anti­testek hozzáadása után bekövetkező teljes kapacitás­változásból is. Ebben a példában olyan antigéneket használhatunk specifikus szubsztrátként, amelyek molekulái úgy ta­padnak az elektródokhoz, hogy az antitest molekulák hozzákapcsolódhassanak az antigén molekulákhoz, és az antigén-antitest réteg, amely ekkor képződik, kellő erősséggel kötődjön az elektódokhoz. Ha az antigén­antitest komplex elszabadul az elektród felületéről, akkor ez az eljárás az előbbi példában leírtak szerint megy végbe. Még az antitestek meghatározásánál is létezik egy optimális antigén-koncentráció, amely az oldatban le­vő és az elektródok felületén levő antigének között kialakuló egyensúlytól, valamint a kötetlen és kötött antigén, illetve antitest molekulák közötti egyensúly­tól függ. Ha a vizsgált anyag csupán az oldatban levő szubsztrátummal reagál, akkor az eljárást az alábbiak szerint hajtjuk végre. Ha olyan anyagot juttatunk a mérőberendezésben levő oldatba, amely csupán az oldatban levő szubszt­rátummal reagál, akkor a szubsztrát molekuláinak koncentrációja csökken. Az egyensúly fenntartása vé­gett az elektródok felületén adszorbeálódott szubszt­rát leválik az elektródról, aminek következtében az elektród felületén levő réteg csökken, ugyanakkor megnövekszik a Cs kapacitás, amint azt a 7d ábra mutatja. Az időegységre eső kapacitásváltozás, vagyis a görbe meredeksége a vizsgált anyag hozzáadásának időpontjában az illető vegyület koncentrációjának függvénye, így azt kvantitatív módon jelzi. Ugyanezt mondhatjuk a hosszabb idő után bekövetkező teljes kapacitásváltozásról is, amelyet tehát a vizsgált anyag koncentrációjának vagy aktivitásának kiszámításához használhatunk. A rendszerhez hozzáadott anyag a legtöbb esetben mind az oldatban levő, mind az elektródokon levő szubsztráttal reagál. A kapacitásváltozás akkor két folyamattól függ, de ekkor is kvantitatív fokmérője a rendszerhez hozzáadott anyag koncentrációjának vagy aktivitásának. A találmány szerinti eljárás egyik legfontosabb fel­használási területe szerin-proteázok meghatározása. E célból szubsztrátként egy szerin-proteázokra specifi­kus szintetikus bontható polipeptidet használunk. Ez előnyösen egy R.-NH-CH-CO-NH-CH-CO-NH-CH-CXJ-NH-Rs I I I r2 r3 (CH2)n-NH-R4 általános képletű vegyület vagy annak sója, ahol Rí hidrogénatomot, 1—12 szénatomos alkükarbonil-cso­­portot, 1—12 azénatomos egyenes láncú alkil-részt tartalmazó omega-amino-alkilkarbonü-csoportot, cik­­lohexil-karbonil-csoportot, 1—6 szénatomos egyenes láncú alkil-részt tartalmazó omega-ciklohexil-alkilkar­­bonil-csoportot,4-aminometil-ciklohexil-karbonil-cso­­portot, benzoil-csoportot, egy vagy több halogén­­atommal, metil-, amino- vagy fenil-csoporttal szubsz-3 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65

Next

/
Oldalképek
Tartalom