163467. lajstromszámú szabadalom • Eljárás fibrinolitikus aktivitású proteáz izolálására

163467 Sephadex G—25 oszlopon szűrik, majd az aktív eluátu­­mot liofizálják. 1 A 3 281 331 sz. USA-beli szabadalmi leírás eljárást közöl fibrinolitikus hatású proteáz előállítására, amit oly módon végeznek, hogy az Aspergiilus oryzae, Aspergillus flavus vagy Absidia coerulea nyers enzim­keverékeinek oldatából a hatóanyagot 5,5 pH-értéken CM-Cellulose. vagy CM-Sephadex oszlopon abszorbeál­ják, puíferral 7 pH-értéken isluálják, majd dialízis után liofílizálják, vagy pedig a hatóanyagot tanninnal ki­hatású, toxikus mellékhatások nélkül terápiásán alkal­mazható proteáz előállítására, oly módon, hogy az Aspergillus ochraceus tenyészetéből tanninos kicsapás­sal izolált nyers enzimkeveréket vizes pufferoldattal 5 extraháljuk, a hatóanyagtartalmú extraktumot kevéssé térhálós dextrán dietilaminoetil-származék vagy dietila­­minoetil-cellulóz (DEAE-Sephadex vagy DEAE-Cellu­­lose) anioncserélőn szűrjük, a hatpanyagtartalmú szür­­letből a hatóanyagot vízzel elegyedő szerves oldószerrel 10 kicsapjuk, a csapadékot vákuumban szárítjuk, vízben oldjuk, majd (Sephadex G—75 vagy Sephadex G—100) térhálós dextrángélen kromatografáljuk és a proteáz­­tartalmú frakciókat liofilizáljuk. csapják, 6 pH-értéken DEAE-Cellulose oszlopon adszor­­beálják és a sókoncentráció fokozatos növelése mellett puíferral eluálják. A Chemical Abstracts 54, 17549 d referátuma egy eljárást ismertet, amely szerint Aspergillus ochraceus kor- 15 pakultúráját 0,75%-os nátriumklorid oldattal extrahál« Ják, és a hatóanyagot az alábbi művelet-sorral tisztítják: kalciumacetát és ammóniumszulfát oldattal kicsapást végeznek, ammóniumszulfáttal extrahálnak, kálium­­cianid oldattal szemben dializálnak, rivanollal kicsapást 20 végeznek, Amberlite IRC—50-en kromatografálnak, acetonnal és rivanollal kicsapást végeznek, Amberlite IRC 50-nel ismételten kromatografálnak, acetonnal frakcionált kicsapást végeznek* majd etanol tartalmú oldatból kristályos alakban egy proteolitikus enzimet 25 nyernek ki. A Chemical Abstracts 56, 5103 b referátumban az Aspergillus ochraceusból nyert proteáz preparátum tisztítását írják le. A termék fibrinolitikus hatására vonatkozóan azonban nem közölnek adatokat. A tiszti- 30 tás során az alábbi műveleteket alkalmazzák: kisózás, oldósueres frakcionálás, kalciumfoszfátgéles adszorpció, ezeket a műveleteket a találmány szerinti eljárásban nem alkalmazzuk. A Chemical Abstracts 65, 4548 e referátum egy fér- 35 mentációt ismertet, amelyhez Aspergillus ochraceus törzset alkalmaznak. A fermentáció során ellenőrzik a proteolitikus aktivitás csökkenését. Proteázok elkülö­nítésére azonban nem tettek kísérletet. Az összes ismert eljárások a fibrinolitikus hatású 40 proteázoknak Aspergillus oryzae, Aspergillus terricola, Aspergillus flavus, Aspergillus áwamori vagy Absidia cöerülea gombákból történő izolálására vonatkoznak. A leírt módszerek a proteázok különböző molekula­szerkezete és az ebből adódó specifikus fizikokémiai 45 tulajdonságai következtében a fibrinolitikus hatású enzimnek csak á megadott penészgombafajból történő izolálására használhatók. Némely módszer ezenkívül csak részlegesen tisztított proteázpreparátumot eredményez, ami terápiás fel- 50 használhatóságukat korlátozza. A találmány célja eljárás kidolgozása fiziológiás körülmények között optimális fibrinolitikus hatású, nagytisztaságú proteáz gazdaságos izolálására Aspergil- 55 lus ochraceusból. Az így kapott proteáz a terápiában külsőleg és parenterálisan toxikus mellékhatások nélkül alkalmazható. • A találmány feladata az Aspergillus ochraceus nyers enzimkeverékéből nagytisztaságú fibrinolitikus hatású proteáz izolálása. Mindenekelőtt szükség volt ehhez egy olyan módszerre, amellyel a proteáz a fibrinolitikusan inaktív proteázoktól, ballasztfehérjéktől és zavaró színezékek mellől gazdaságosan izolálható. . A találmány tárgya eljárás nagy tisztaságú fibrinolitikus A nyers enzimkeverék tisztítását úgy végezzük, hogy a nyers preparátumot, melynek proteolitikus aktivitása kb. 1 CE/mg, 6,5—7,5 pHrértékű trisz-HCl-pufferral vagy 6,5—7,5 pH-értékű 0,05—0,1 mólos ammónium­­acetát puíferral szobahőmérsékleten többször kikeverjük és ily módon a hatóanyagot tökéletesen feloldjuk. Centrifugálással (15000 g) tiszta, sötét színű, hatóanyag­tartalmú, az oldhatatlan inaktív részektől elkülönített oldatot állítunk elő. Fenti hatóanyagtartalmú extraktumot előnyösen 0—4 C°-on 0,5—0,9 mekv./g kapacitású kevéssé tér­hálós dextrán dietilaminoetil-származék vagy dietil­­aminoetil-cellulóz anioncserélő oszlopon szűrjük. Ezt követően az ioncserélőt az extraháláshoz használt pufferral mossuk. , Az anioncserélővei végzett kezeléssel a ballaszt­fehérjéket, a fibrinolitikus terápiához nem megfelelő proteázokat, valamint a színezékek legnagyobb részét megkötjük. A fibrinolitikus hatású proteázok nem adszorbeálódnak; ezeket a fenti módon kapott ható­­anyagGldatból háromszoros mennyiségű, —20 C°-ra lehűtött, vízzel elegyedő szerves oldószerrel, előnyösen etanollal kicsapjuk és vákuumban szárítjuk. A hatóanyagtartalmú anyagot lehetőleg kevés vízben feloldjuk és kromatografáljuk oly módon, hogy az oldatot előnyösen 0— +4 C°-on 7—11 ml/g víz­felvevőképességű térhálós dextrángéllel (Sephadex G—75 vagy G—100) töltött oszlopra visszük, majd az oszlopot vízzel eluáljuk. Az eluálásnál kapott frakciók proteoli­tikus aktivitását megmérjük. Az aktív frakciókat liofilizáljuk. Száraz fehér por alakjában tiszta fibrinoli­tikus hatású proteázt kapunk, amelynek proteolitikus aktivitása kb. 15 CE/mg. A találmány szerinti eljárás lehetővé teszi, hogy az Aspergillus ochraceusból kapott nyers enzimkeverékből egyszerű technikai segédeszközökkel fiziológiás körül­mények között aktív, nagy tisztaságú, fibrinolitikus hatá­sú proteázt izoláljunk. A találmány szerinti eljárás haladó jellegét igazolják az elért hozamok. A tisztítás első fázisában (extrahálás, szűrés, a hatóanyag kicsapása) a hozam az 1. példában az aktivitások alapján 73,4%. A tisztítás második fázi­sában (gélkromatográfia és a hatóanyagtartalmú eluá­­tum liofilizálása) az 1. példában a hozam az aktivitások alapján 55,6%. Kb. 11-szeres töményítésnél a két tisztí- 60 tási fázisban az összes aktivitás-hozam 40,8%. A talál­mány szerint izolált fibrinolitikus enzimek elektroforézis­­sel egységesek. A fibrinolitikusan aktív proteáz külsőleg vagy paren­terálisan alkalmazva, terápiás körülmények között 65 semmiféle toxikus mellékhatást nem okoz. ■ \ ' V

Next

/
Oldalképek
Tartalom