Szemészet, 2001 (138. évfolyam, 1-4. szám)

2001-03-01 / 1. szám

Szemészet

A különböző konzerválási módszerek hosszú távú klinikai eredményei hasonlóak: 327 beteg többéves követése szerint a szövetkultúrában tartósított corneák hasonlóan jó posztoperatív eredményeket mutattak, mint a nedves kamrában tároltak.6 Tehát - más nagyszámú beteganyag adatai alapján is - a donor cornea konzerválási módszerének nincs kihatása a szaruhártya túlélésére.14

Összefoglalva a középtávú módszer (Optisol, Likorol) előnye az egyszerű előkészítés, a kisebb fertőzésveszély, a chondroitin-szulfát- és dextrántartalommal elkerülhető corneaduzzadás, valamint az, hogy az epithelium 5-7 napig ép marad. A középtávú módszer hátránya a kis anyagcsereaktivitás, a rövid tárolási idő (maximum 10 nap), nem utolsósorban pedig az, hogy ezek a folyadékok drágák.

A középhosszú távú módszer (IMDM, Inosol) előnye a fiziológiás anyagcsere-aktivitás, a 2 héten túli konzerválási időtartam és a módszer olcsósága. Hátránya, hogy bonyolultabb előkészítést igényel, nagyobb a fertőzésveszély, a felhasználás előtt dehidrálás szükséges, és az epithelium a

2. hét elejére legtöbbször leválik.

Saját szembankunk gyakorlata, ajánlása és kísérleteink eredménye alapján a néhány napra (átlagosan 7 nap) előre tervezett műtétek esetében a középtávú konzerváló oldatokat (Optisol, Likorol), a hosszabb távra (3 hét) előre tervezett műtéteknél a sejttenyésztő médiumokat javasoljuk szaruhártya-tartósításhoz. Mindkét módszer esetében a cornea állapota és felhasználhatósága az endotheliumsejtszám alapján önmagában nem, csak a morfológiai szerkezettel együtt értékelhető.

Köszönetnyilvánítás

A közlemény az Egészségügyi Tudományos Tanács támogatásával készült.

Irodalom

1. Allarkhia L, Robin S.M., Mindrup E.A., Lindstrom R.L.: Eye banking: The Minnesota experience. Ann Ophtalmol 22, 286-292

(1990) .

2. Andersen ./., Ehlers .V..' Corneal transplantation using 4-week banked donor material. Long-term results. Acta Ophthalmol 65, 293-299 (1987).

3. Archer D.B., Trevor-Roper P. D.: Organization and administration of Westminster-Moorfields Eye-Bank. Br J Ophtalmol 51, 1-12 (1967).

4. Baumann G., Fries U., Schnaudigel O.E.: Viability of corneal endothelium after long term storage at +4 degrees C in Optisol. Ophtalmologe 91, 624-627 (1994).

5. Borderie V, Laroche L., Vedie E, Lopez M.: Penetrating keratoplasty after graft preservation in organ culture at +37 degrees centigrade. 1- year results. Fr J Ophtalmol 18, 570-577 (1995).

6. Böhnlce M.: Donor tissues tor keratoplasty. Report of experiences by the Hamburg cornea bank. Klin Monatsbl Augenheilkd 198, 562-571

(1991) .

7. Campos M., Szerényi K., Lee M., McDonnell J.M., Lopez PM., Mcdonnell P.J.: Keratocyte loss after corneal deepithelization in primates and rabbirs. Arch Ophthalmol 112, 254—260 (1994).

8. Engelmann К., Bednarz J., Böhnke M.: Endothelzell-transplantation und Wachstumsverhalten des humanen kornealen Endothels. Ophthalmologe 96, 555-562 (1999).

9. Frueh B.E., Böhnke M.: Corneal grafting of donor tissue preserved for longer than 4 weeks in organ-culture medium. Cornea 14, 463^166 (1995).

10. Hagenah M„ Carstens D„ Böhnke M„ Winter R.: Development of endothelium cell density using fresh and organ cultured tissue 5 years after penetrating keratoplasty. Ophthalmologe 94, 90-93 (1997).

11. Kim K., Edelhauser H.F., Holley G.P., Geroski G.H., Lynn M., Walsh G.E.: Optisol stored corneal endothelial permeability. Am J Ophtalmol 117, 385-393 (1994).

12. Less J.H., Bourne W.M., Musch D.C., Sugar A., Gordon J.F.,

Reinhart W.J., Meyer R.F., Patel D.I., Bruner W.E., Cano D.B.: A randomized, prospective, double-masked clinical trial of Optisol vs DexSol corneal storage media. Arch Ophthalmol 110, 1404-1408

(1992).

13. Lindstrom R.L., Kaufman H.E., Skelnik D.L., Laing R.A., Lass J.H., Musch D.C., Trousdale M.D., Reinhart W.J., Burris T.E., Sugar A.: Optisol corneal storage medium. Am J Ophthalmol, 114, 345-56

(1992) .

14. Maguire M.G., Stark W.J., Gotisch J.D., Stulting R.D., Sugar A., Fink N.E., Schwartz A.: Risk factors for corneal graft failure and rejection in the collaborative corneal transplantation studies. Collaborative Corneal Transplantation Studies Research Group. Ophtalmology 101, 1536-1547 (1994).

15. Means T.L., Geroski D.H., Hadley A., Lynn M.J., Edelhauser H.F. : Viability of human corneal endothelium following Optisol-GS storage. Arch Ophthalmol 113, 805-809 (1995).

16. Módis L, Berta A.: Szaruhártya-átültetés és corneakonzerválás. Háziorvos Továbbképző Szemle 3, 59-61 (1998).

17. Módis L„ Boytha Zs., Berta A.: A corneakonzerválás módszertani kérdései. Szemészet 137, 109-111 (2000).

18. Módis L., Szálka A., Berta A., Takács L„ Balázs K., Nagy A.: A Debreceni Szembank. Szemészet 132, 141—143 (1995).

19. Musch D.C., Meyer R.F., Sugar A.: Predictive factors for endothelial cell loss after penetrating keratoplasty. Arch Ophtalmol 111, 80-83

(1993) .

20. Pels L, Schuchard Y: Organ culture and endothelial evaluation as a preservation method for human corneas. In: Brightbill F. S., ad. Corneal Surgery. Mosby Co, St. Louis, Mo 93—102 (1986).

21. Redbrake C„ Frantz A., Salia S.: Korrelation zwischen Glucose- und Laktatkonzentrationen in der humanen Hornhaut und im Organkulturmedium. Klin Monatsbl Augenheilkd 213, 93-96 (1998).

22. Redbrake C., Salia S., Frantz A.: Changes in human donor corneas preserved for longer than 4 weeks. Cornea 17, 62-65 (1998).

23. Senoo T, Joyce N.C.: Cell cycle kinetics in corneal endothelium from old and young donors. Invest Ophthalmol Vis Sei 41, 660-667 (2000).

24. Shimazaki J., Yamada M., Tsubota K.: Corneal transplantation with donor corneas stored in moist chamber and chondroitin sulfatecontaining medium. Cornea 12, 104-108 (1993).

25. Stocker F.W., King E.H., Lucas D.O., Georgiádé N.A.: Clinical test for evaulating donor corneas. Arch Ophtalmol 84, 2-7 (1970).

A szerző levelezési címe: Dr. Módis László Debreceni Egyetem Orvos- és Egészségtudományi Centrum, Szemészeti Klinika 4012 Debrecen, Nagyerdei körút 98.

E-mail: lmodis@dragon.klte.hu

Módis László