202274. lajstromszámú szabadalom • Eljárás BepI restrikciós endonukleáz előállítására Brevibacterium epidermidisből

3 HU 202274 B 4 szacharóz, 0,2M EDTA és 0,1% brómfenolkék. A rendszerből vett néhány m1 mintát agaróz gélen elektroforetizálunk. A gél etidium-bro­­midot tartalmaz, melynek jelenlétében a DNS csíkok UV-fényben láthatóvá válnak. Enzim­aktivitást jelez, ha egységes esik helyett el­különülő fragmensek láthatók. Az enzimet tartalmazó egyesitett eluátumot PC pufferral szemben dializáljuk. Az ezt követő tisztítás során PC pufferral ekvilibrált 3x25 cm-es DEAE cellulóz oszlopot alkalmazunk, az elvá­lasztás lineáris gradiens elücióval történik PC pufferben 0,0-0,5 NaCl-ot adagolva. A vizsgálatok alapján a 0,25-0,30M NaCl-dal nyert frakciókat gyűjtjük össze, ezeket is­mét dializáljuk. Végül 1,5x15 cm-es Pll fosz­­focellulóz oszlopon választjuk el a 0,05-0,12M NaCl-dal eluált aktív frakciót, ezt tároló puf­ferral szemben dializáljuk, mely egyben kb. háromszoros töményitést hoz létre. A nyert BepI enzim hozama 380 egy­­ség/9 nedves sejt. Az enzim nem igényel Na­vagy K-ionokat, Mg2* igénye kb. lOmM, pH optimuma 7,4, hőoptimuma 25-30 °C. A fentiekben alkalmazott táptalajok és pufferek összetétele a következő: YTA táptalaj: Bacto tripton 10 g, Bacto élesztőkivonat 5 g, NaCl, Bacto agar 15 g, csapviz ad. 1 liter. YTB táptalaj: mint YTA, agar hozzáadása nélkül. PC puffer: 0,01M pH=7,4 kálium-foszfát puffer, 0,lmM EDTA, 0,01M 2-merkapto-etanol. tároló puffer: 0,05M KC1, 0,01M pH=7,5 Tris-HCl puf­fer, 0,lmM EDTA, l,0mM ditiotreitol, 200 ug/nil marhaszérum al­bumin, 50% glicerin. 2. példa A felismerőhely igazolása Ismert módon elvégezzük pBR 322 plaz­­mid hasítását az azonosnak vélt EnuDII en­zimmel, az új BepI enzimmel, illetve kettős hasítást végzünk az előbbiekkel. A kapott fragmensek mindhárom esetben azonosak. (1. ábra). 3. példa Brevibacterium epidermidis MIMNG (NCAIM B) P 001019 törzset az 1. példa sze­rint tartunk fenn és tenyésztünk. A fer­­mentlé centrifugálásával nyert nedves sejt­tömegből az enzimet az alábbi módon tisztít­juk: 28 g nedves sejtmasszához 42 ml 0,01M pH=7,4 Tris-HCl puffert adunk, mely 0,01M 2- 5 -merkapto-etanolt tartalmaz. A sejteket ult­rahanggal (MSE készülék 20x30 másodperc) feltárjuk, a sejttörmeléket ultracentrifugá­­lással (35 000 rpm, 60 perc) eltávolítjuk. A nyers sejtkivonathoz olvadó jégfürdöben 10 lassú kevertetés mellett streptomicin-szulfá­­tot adunk 5% végkoncentrációig. A keverte­­tést 60 percen át folytatjuk, majd a keletke­zett csapadékot centrifugálással (12 000 rpm 20 percig) eltávolítjuk. A felülúszót egy éj- 15 szakán át PC pufferral szemben (1. példa szerinti összetétel) dializáljuk. A tisztítás következő lépéseként Hepa­­rin-sepharose oszlopon (1,6x15 cm-es) törté­nő kromatografálást végzünk. Az eluens PC 20 puffer, mely 0,0-l,0M NaCl-ot tartalmaz. Az enzimaktív frakciókat a 0,095-0,225M NaCl­­-os tartományban találjuk. A frakciókat egyesítve PC pufferral szemben dializáljuk. Befejező lépésként omega-aminopentil-agaróz 25 (1,6-3,0 cm) oszlopos tisztítást végzünk, ahol az eluens hasonlóan PC pufferben NaCl gra­diens. Az aktiv frakciók megjelenése a 0,250 és 0,410M NaCl koncentrációk között várható. A mintákat egyesítés után tároló 30 pufferral szemben dializáljuk, melynek ösz­­szetétele az 1. példa szerinti. A kapott enzim hasítási helyén Maxam­­-Gilbert szekvenálással ellenőrizzük (Methods Enzymol. 5, 499-560 1980) és eredményét a 35 2. ábrán mutatjuk be. A hasítás helye a CGCG szakasz közepe. 40 45 50 55 60 4. példa Brevibacterium epidermidis MIMNG (NCAIM B) P 001019 törzset 6 havonkénti átoltással YTA táptalajon tartunk fenn. Egy ferde agar tenyészetet lemosunk 5 ml AGK táptalajjal és a szuszpenzióval beoltunk 300 ml AGK táptalajt 1 literes Erlenmeyer lombikban. A tenyésztést rázatással (350 rpm) 27 °C-on 18 órán át folytatjuk, majd a fermentléből a sejtanyagot centrifu­gálással leválasztjuk (4000 rpm, 30 perc). A nyert biomassza 29 g, ezt az 1. vagy 3. példa szerint feldolgozva, azonos ismérvekkel jellemezhető BepI enzimet nyerünk. Az AGK táptalaj összetétele: aszparagin 1 g glukóz 5 g kukoricalekvárpor 2 g KH2PO4 2 g KH2PO4 MgSOi 0,05 g 0,01 g csapviz 1 liter. 4

Next

/
Thumbnails
Contents